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一種控制哺乳動物性別的方法

文檔序號:180220閱讀:385來源:國知局
專利名稱:一種控制哺乳動物性別的方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及一種控制哺乳動物性別的方法。
背景技術(shù)
傳統(tǒng)的性別控制有兩種方式,即受精之前控制和受精之后控制。前者是指受精之前,對精子進(jìn)行人為干預(yù),在受精之時(shí)就決定了后代的性別;后者是指對受精卵進(jìn)行性別鑒定,使其獲得所需性別的后代。這兩種性別控制方式存在缺點(diǎn)是1、資源浪費(fèi)。X和Y精子分離有一半的精子被淘汰掉,由此造成資源浪費(fèi)。胚胎性別鑒定需要將受精后發(fā)育到囊胚或桑椹胚的可移植胚胎取下少量細(xì)胞,進(jìn)行DNA體外擴(kuò)增,獲取雌雄信息,從而達(dá)到控制后代性別的一項(xiàng)技術(shù),如果按著自然的雌雄分配比例計(jì)算,有50%的胚胎被淘汰掉,又一次的造成資源和經(jīng)濟(jì)上的浪費(fèi)。
2、數(shù)量受限。①體內(nèi)受精一年只能獲得一頭良種后代;②體外受精雖然可以獲得多數(shù)已知性別的胚胎,但是由于受母性遺傳基因的影響,很難得到良種后代,因?yàn)轶w外受精過程需要到屠宰場取母牛的卵巢,在屠宰場里取來的卵巢基本上是淘汰母?;蛄淤|(zhì)母牛,所以做出的體外受精后代的遺傳基因受到很大影響;③通過超排獲得的性別鑒定胚胎數(shù)量有限。
3、價(jià)格貴不易被老百姓接受。經(jīng)過XY精子分離獲得的性控精液或性控胚胎一般比自然生產(chǎn)的高出二倍的價(jià)格,在生產(chǎn)中不易被老百姓接受。
哺乳動物體細(xì)胞克隆技術(shù)(mammalian somatic cell cloning)又稱體細(xì)胞核移植技術(shù)(somatic cell nuclear transfer),是指通過特殊的人工手段,即以顯微操作、電融合、復(fù)合活性化處理等技術(shù)為主線,將體細(xì)胞作為核供體,移入到成熟的、去核的、未受精的卵母細(xì)胞中,進(jìn)行體外重構(gòu)、體外培養(yǎng)、胚胎移植,從而達(dá)到擴(kuò)繁同種基因型哺乳動物種群的目的。
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell,MSC),最初是由Friedenstein發(fā)現(xiàn)的一類易于貼附于塑料培養(yǎng)板表面的細(xì)胞,后來的研究證實(shí)在不同的誘導(dǎo)條件下,具有向中胚層和神經(jīng)外胚層組織細(xì)胞分化的能力,如向成骨細(xì)胞、成軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞及支持造血的基質(zhì)細(xì)胞等分化的能力。常用的MSCs分離與培養(yǎng)方法有1、密度梯度離心法根據(jù)MSCs與其它細(xì)胞的密度不同而采用Percoll分層液將其分離出來;2、貼壁篩選法根據(jù)MSC具有在塑料組織培養(yǎng)瓶中貼壁生長的特性對其進(jìn)行分離,一般以4-12小時(shí)貼壁細(xì)胞為宜;3、流式細(xì)胞儀分選法根據(jù)MSCs細(xì)胞體積小,相對缺少顆粒的特性利用流式細(xì)胞儀對MSCs進(jìn)行分選;4、免疫磁珠分選法可以根據(jù)MSCs表達(dá)的某些細(xì)胞表面標(biāo)志進(jìn)行富集或根據(jù)其表面負(fù)表達(dá)的抗原進(jìn)行負(fù)分選,其效率和純度較高。
卵母細(xì)胞的去核是體細(xì)胞核移植技術(shù)的關(guān)鍵技術(shù)環(huán)節(jié)。McGrath(McGrath,SolterD.Nuclear transplantation in the mouse embryo by microsurgery and cell fusion.[J]Science.1983.2201300-1302),報(bào)道了一步去核法,即在注入核供體細(xì)胞的同時(shí)將細(xì)胞核吸引除去,此操作只需要一個(gè)顯微操作管。Shiga(Shiga K,F(xiàn)ujite T,Hirose K.Production of calves by transfer of nuclei from cultured somaticcells obtained from Japanese black bulls.[J].j Theriogenology.1999,52527-535),建立的一步擠壓除核法,是用顯微切割針在第一極體附近,將卵母細(xì)胞透明帶切開1/3(周長的1/3),調(diào)準(zhǔn)切口,使其與切割針成垂直方向,固定卵母細(xì)胞,調(diào)節(jié)顯微切割針,將切割針橫壓在卵母細(xì)胞的直徑部位,垂直向下微微輕壓,除去第一極體連同下面的一小部分細(xì)胞質(zhì)。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的是提供一種控制哺乳動物性別的方法。
本發(fā)明所提供的控制哺乳動物性別的方法,是將哺乳動物骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞作為核供體細(xì)胞,移入到成熟的、未受精的、去核的哺乳動物卵母細(xì)胞中,進(jìn)行體外重構(gòu)、體外培養(yǎng)、胚胎移植,控制子代的性別。
所述哺乳動物骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞可通過密度梯度離心法、貼壁篩選法、流式細(xì)胞儀分選法或免疫磁珠分選法進(jìn)行分離,最好通過密度梯度離心法結(jié)合貼壁篩選法分離。
所述哺乳動物卵母細(xì)胞可來自于牛、羊、貓、狗和兔等動物。
所述哺乳動物卵母細(xì)胞優(yōu)選來自于牛,其骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞可通過以下密度梯度離心法結(jié)合貼壁篩選法方法獲得將牛骨髓單細(xì)胞懸液加入密度為1.082的Percoll細(xì)胞分離液中進(jìn)行離心,取液面交界處的云霧狀單個(gè)核細(xì)胞層,接種于塑料容器中進(jìn)行培養(yǎng),去掉非貼壁細(xì)胞,得到牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞。
所述牛骨髓單細(xì)胞懸液與密度為1.082的Percoll細(xì)胞分離液的體積比為1∶1。所述牛骨髓單細(xì)胞懸液為不含鈣鎂離子的磷酸鹽緩沖液。所述離心條件為80g離心30min。所述接種密度為1×105個(gè)-1×107個(gè)細(xì)胞/cm2,優(yōu)選為1×107個(gè)細(xì)胞/cm2。
所述成熟的、去核的、未受精的哺乳動物卵母細(xì)胞可通過一步去核法McGrath(McGrath,Solter D.Nuclear transplantation in the mouse embryo bymicrosurgery and cell fusion.[J]Science.1983.2201300-1302)、擠壓除核法Shiga(Shiga K,F(xiàn)ujite T,Hirose K.Production of calves by transferof nuclei from cultured somatic cells obtained from Japanese blackbulls.[J].j Theriogenology.1999,52527-535)獲得,還可通過如下點(diǎn)擊去核法獲得將剛放出第一極體的哺乳動物卵母細(xì)胞的裸卵的透明帶,在第一極體處切開1/3,再點(diǎn)擊透明帶,除去第一極體連同下面的核物質(zhì);所述1/3是透明帶周長的1/3。
所述點(diǎn)擊透明帶的位置在調(diào)準(zhǔn)卵母細(xì)胞第一極體位置后用固定管固定卵母細(xì)胞,點(diǎn)擊透明帶3點(diǎn)鐘的位置,參照圖5點(diǎn)擊去核法去核照片。
所述剛放出第一極體的牛卵母細(xì)胞可按照以下方法獲得將牛的卵母細(xì)胞在CR2aa+10%SCS+0.01mg/ml FSH+100IU/ml青霉素+100μg/ml鏈霉素的培養(yǎng)基中成熟培養(yǎng)18-22小時(shí),得到剛放出第一極體的卵母細(xì)胞。
本發(fā)明的控制哺乳動物性別的方法中所采用的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,與胚胎干細(xì)胞、原始生殖脊干細(xì)胞和體內(nèi)其他部位的成體干細(xì)胞如胰腺干細(xì)胞等相比,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞對培養(yǎng)條件要求不高,不需要添加多種細(xì)胞因子,擴(kuò)增迅速容易分離純化;采用密度梯度離心法結(jié)合貼壁篩選法篩選骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,相對于流式細(xì)胞儀分選法對細(xì)胞的損傷較小,相對于免疫磁珠分選法更經(jīng)濟(jì)實(shí)用相對于全骨髓法純度更高;骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞克隆獲得的168h囊胚,在體外繼續(xù)培養(yǎng)體系中,50%的內(nèi)細(xì)胞團(tuán)可以完全脫離透明帶,極顯著高于體細(xì)胞克隆囊胚在繼續(xù)培養(yǎng)中只有2-6%的囊胚可完全脫離透明帶。本發(fā)明利用牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞核移植技術(shù),控制良種牛性別,可降低性別控制成本,提高良種牛的生產(chǎn)性牛,可操作性強(qiáng),為良種產(chǎn)業(yè)化提供技術(shù)支撐。


圖1a為分離篩選的高純度MSCs集落(×200)圖1b為形成集落的MSCs原代培養(yǎng)細(xì)胞的瑞士-姬姆薩復(fù)合染色照片(×200)圖2a為第2代牛MSCs(×100)照片圖2b為第10代的牛MSCs細(xì)胞集落融合后形成水紋狀(200×)
圖2c為第10代接近融合的牛MSCs,細(xì)胞處于生長旺盛期,胞漿飽滿,多個(gè)核仁(×400)照片圖2d為照片第15代的牛MSCs形成的集落染色照片(×200)圖3為作為核供體細(xì)胞的牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞第12代的多細(xì)胞集落(100×)照片圖4為第12代牛MSCs細(xì)胞的吉姆薩染色鑒定的MSCs為單核細(xì)胞(100×)照片圖5為點(diǎn)擊去核法去核照片圖6為體外培養(yǎng)168h骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞核移植囊胚(200×)照片圖7為體外培養(yǎng)198h的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞脫出透明帶的克隆囊胚(200×)照片具體實(shí)施方式
下述實(shí)施例中的實(shí)驗(yàn)方法,如無特別說明,均為常規(guī)方法。
下述實(shí)施例中的百分含量,如無特別說明,均為質(zhì)量百分含量。
實(shí)施例1、利用牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞控制牛的性別一、牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離1、骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離及其原代(第一代)培養(yǎng)無菌條件下分離出牛(2~6月齡)股骨骨髓,使用帶有4號針頭的5ml注射器沖出骨髓,置于消毒的大培養(yǎng)皿中,將骨髓液依次經(jīng)7號和4號針頭輕輕吹打,過200目濾網(wǎng),制成單細(xì)胞懸液。將單細(xì)胞懸液用不含鈣鎂離子的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution,PBS-)沖洗3次,重新懸浮后將細(xì)胞懸液以1∶1的體積比輕輕加入4℃預(yù)冷的密度為1.082的Percoll細(xì)胞分離液(購自美國Sigma公司,配方Percoll原液25.65mL+1.5moL/L NaCl溶液24.35mL)的試管中,80g離心30min取中間(液面交界處)的云霧狀單個(gè)核細(xì)胞層,以PBS清洗2次準(zhǔn)備接種。
將細(xì)胞懸液以1×107個(gè)細(xì)胞/cm2的密度接種于裝有完全培養(yǎng)基的直徑為35mm的塑料培養(yǎng)皿。每個(gè)培養(yǎng)皿加1.5ml完全培養(yǎng)基,置于37℃,體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2,飽和濕度條件下培養(yǎng)。在接種后48小時(shí)和72小時(shí)分別連續(xù)2次全量更換培養(yǎng)基,去掉非貼壁細(xì)胞,得到牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞。以后每2d~3d半量換液1次。在完全培養(yǎng)基中培養(yǎng)11至13天,獲得骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的原代培養(yǎng)物。其中,采用的完全培養(yǎng)基為L-DMEM+25%(體積百分含量)馬血清+10%(體積百分含量)條件培養(yǎng)液+1%(質(zhì)量百分含量)L-谷氨酰胺+1μmol/L的氫化可的松。其中,條件培養(yǎng)液按照如下方法配制無菌分離犢牛股骨骨髓5ml,加入10mL含有20%(體積百分含量)的胎牛血清(FBS),1%L-谷氨酰胺的L-DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)2d~3d,收集培養(yǎng)液,離心取上清液制成條件培養(yǎng)液。
上述細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果表明,剛接種時(shí),骨髓細(xì)胞懸液中的細(xì)胞呈圓形,大小不一,不能辨認(rèn)細(xì)胞核,接種后第1天至第3天,可見形態(tài)相對均一的折光性較強(qiáng)紡錘形細(xì)胞,以及少量的成纖維細(xì)胞樣的細(xì)胞,以后細(xì)胞逐漸增多,接種后第4天至第5天細(xì)胞進(jìn)入對數(shù)生長期,細(xì)胞生長較快;接種后第11天至第13天細(xì)胞生長進(jìn)入平臺期,細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)增減慢,并開始出現(xiàn)融合,而且細(xì)胞逐漸出現(xiàn)多種形態(tài),成纖維細(xì)胞樣的細(xì)胞開始增加,可見少量大而扁平的細(xì)胞。牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞極易發(fā)生分化,接種密度低更不利于其生長,所以原代培養(yǎng)細(xì)胞密度適中(1×107個(gè)細(xì)胞/cm2),接種后第3天至第4天形成典型集落,集落的細(xì)胞在50-100個(gè)左右(圖1a),同時(shí)可見一些微克隆。對形成集落的原代培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行瑞士-姬姆薩復(fù)合染色,光鏡觀察,細(xì)胞形態(tài)呈梭形狀,胞核著粉紅色,胞漿不著色,未見纖維絲等結(jié)構(gòu),各代之間形態(tài)較一致,細(xì)胞核有1-2個(gè)核仁,呈圓形(圖1b)。
2、牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的傳代培養(yǎng)接種后第11天至第13天,原代(第一代)培養(yǎng)細(xì)胞生長融合后,用0.25%(質(zhì)量百分含量)胰蛋白酶和0.1mmol/L的EDTA消化(消化前預(yù)熱消化液,PBS沖洗細(xì)胞3次,以去除死細(xì)胞),在倒置顯微鏡下觀察,大約1min,當(dāng)細(xì)胞突起回縮,細(xì)胞之間間隙增大,細(xì)胞接近圓形時(shí),輕輕吹打平皿底壁,制成細(xì)胞懸液。80g離心6min棄上清液后,1∶2傳代(由一個(gè)35mm平皿牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)消化離心洗滌后,傳代接種到2個(gè)35mm塑料平皿),置于體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2飽和濕度,37℃培養(yǎng)箱中進(jìn)行第二代細(xì)胞的培養(yǎng),培養(yǎng)5-7天后,再按照上述方法進(jìn)行傳代、培養(yǎng)第三代細(xì)胞,第三代細(xì)胞培養(yǎng)3-4天后,再按照上述方法進(jìn)行傳代、培養(yǎng)第四代細(xì)胞。第四代細(xì)胞培養(yǎng)3-4天后,再按照上述方法進(jìn)行傳代、培養(yǎng)直至第十五代細(xì)胞。第十二代細(xì)胞以后,細(xì)胞形態(tài)逐漸變得不均一,細(xì)胞突起增多,大量多角形細(xì)胞出現(xiàn),并且增殖能力逐漸減弱,4-6天才可達(dá)到完全融合。其中,所用的傳代培養(yǎng)基為L-DMEM培養(yǎng)液+120mL/L FBS+10mL/L L-谷氨酰胺+100U/mL青霉素+100U/mL鏈霉素。
傳代細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果表明,牛MSCs原代細(xì)胞一經(jīng)傳代小圓形細(xì)胞均不見,第二代細(xì)胞主要為梭形、多角形(圖2a),呈現(xiàn)很多集落樣細(xì)胞并融合成片,但是細(xì)胞間存在接觸抑制,傳代培養(yǎng)的細(xì)胞呈集落生長并融合成片,第二代牛MSCs形成的集落染色為單核,細(xì)胞呈梭形圓形和三角形,傳至第10代的牛MSCs細(xì)胞集落融合形成水紋狀(圖2b)。原代培養(yǎng)接種密度適宜,雖然只見少數(shù)50-100個(gè)細(xì)胞組合的小集落,傳代培養(yǎng)中可見大量集落形成并融合成片,第10代的細(xì)胞純度高達(dá)98%,第10代細(xì)胞培養(yǎng)17天后發(fā)生融合的牛MSCs細(xì)胞成長旺盛,胞漿飽滿,多個(gè)核仁(圖2c),第15代的牛MSCs細(xì)胞形成的集落染色結(jié)果如圖2d。
細(xì)胞傳到第12代以后,培養(yǎng)4-6天后,形成多細(xì)胞集落(圖3),第12代牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)吉姆薩染色鑒定為單核細(xì)胞(圖4),純度達(dá)98%。
將培養(yǎng)4-6天后的第十二代牛MSCs細(xì)胞作為核供體細(xì)胞進(jìn)行核移植,同時(shí)以胎兒成纖維細(xì)胞作為對照。
二、去除牛卵母細(xì)胞細(xì)胞核將采集的牛卵巢,從滅菌的35℃生理鹽水中取出,放在持有滅菌紙巾的左手上,選擇直徑為2-6mm的卵泡,用接有18G針頭的5ml注射器吸取卵泡液,將抽取的含有卵母細(xì)胞的卵泡液注入15ml的離心管中,置于35℃保溫水浴槽內(nèi),待沉淀后棄掉上清液,洗滌2次,將沉淀物移入到中央劃有方格的平皿中,在實(shí)體顯微鏡下,選擇有卵丘細(xì)胞附著,細(xì)胞質(zhì)亮度均一,形態(tài)良好的卵母細(xì)胞,用成熟培養(yǎng)液洗滌2次后,移入4孔培養(yǎng)皿,置于39℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2的培養(yǎng)箱中,進(jìn)行22小時(shí)的成熟培養(yǎng)。卵母細(xì)胞成熟培養(yǎng)液采用CR2aa+10%SCS(Superovulated Cow Serum)+0.01mg/ml FSH(Follicle Stimulating Hormone)+100IU/ml青霉素+100μg/ml鏈霉素。將成熟培養(yǎng)22h的在含有0.1%透明質(zhì)酸酶(Sigma制),不含Ca2+、Mg2+的HSOF液,即HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液中,吹打除掉卵丘細(xì)胞,裸卵以放出第一極體的位置,作為顯微操作去核的標(biāo)志。
表1HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液的組成


注濃度列中的“-”表示不含該物質(zhì)。
表2、CR2aaEmbryo Culture medium

將經(jīng)過22h成熟培養(yǎng)的卵母細(xì)胞裸卵洗凈,每20個(gè)為一組移入7.5μg/ml的細(xì)胞松馳素B(CB)100μl微滴中,以顯微操作儀的左手油壓側(cè)控制顯微固定細(xì)管和右手側(cè)控制顯微切割針,在第一極體附近,將卵母細(xì)胞透明帶切開1/3(周長的1/3),調(diào)準(zhǔn)切口,使其與切割針成垂直方向,固定卵母細(xì)胞,在調(diào)準(zhǔn)卵母細(xì)胞第一極體位置后用固定管固定卵母細(xì)胞,用顯微針點(diǎn)擊透明帶3點(diǎn)鐘的位置,參照圖5的點(diǎn)擊去核法去核照片(箭頭所指方向?yàn)榈谝粯O體),或?qū)⑶懈钺槈涸谂c卵母細(xì)胞透明帶切口垂直方向(擠壓法)或用微管吸引(吸引法),除去第一極體連同下面的一小部分細(xì)胞質(zhì)(核物質(zhì))。將除掉的這一小部分細(xì)胞質(zhì),放入載有2.5μg/ml Hoechst 33342液滴的載玻片上,10分鐘后壓片,在熒光顯微鏡下觀察,發(fā)藍(lán)色熒光的為去掉的DNA核。
三、移核配制2.5%蔗糖HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液(HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液+10%FBS+2.5%蔗糖),作成100μl的微滴,將除核后的受核胞質(zhì),20個(gè)一組移入該液中,靜置5分鐘后,再將其移到同種液體的顯微操作液微滴(100μl)中,同時(shí)將洗滌好的核供體細(xì)胞,也移到此液滴中。此時(shí),核供體細(xì)胞和受核卵母細(xì)胞質(zhì)均處于脫水狀態(tài),體積變小。將核供體細(xì)胞用微細(xì)吸管經(jīng)切口處注入受核卵母細(xì)胞卵周隙,抽出顯微移核細(xì)管,輕壓透明帶,使其切口閉合。
四、電融合及復(fù)合活性化處理將移核重構(gòu)胚,移入0.25%蔗糖HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液(HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液+10%FBS+0.25%蔗糖中,靜置5分鐘使其復(fù)水,然后用0.25%蔗糖HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液洗滌2次,使其核質(zhì)完全復(fù)原之后,用ECM2001(BTX)融合儀、1mm間隔的融合室、含有0.05%BSA的融合液(0.3M Manitol+0.5mM HEPES+0.05mMCa(C2H3O2)2+0.1mM Mg(C2H3O2)2+0.05%BSA)采用1.025kv/cm的電場強(qiáng)度進(jìn)行直流電脈沖處理,脈沖寬度為50μs,連續(xù)2次的融合條件進(jìn)行電融合,將電融合處理后的移核重構(gòu)胚洗滌2次,移入0.25%蔗糖HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液中,放入38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2、100%濕度的常壓CO2培養(yǎng)箱中,2小時(shí)后,觀察融合狀態(tài),選擇融合的重構(gòu)胚,以5μl/10ml Ca-離子載體HSOF(+Ca2+、+Mg2+)液(其組成為1mg Calcium ionophore+0.191ml DMSO為儲存液,5μl儲存液+10ml HSOF(+Ca2+、+Mg2+),在避光下處理4分鐘,然后移入6-二甲氨基嘌呤(6-DMAP)SOF(+Ca2+、+Mg2+)液(其組成為2mM 6-DMAP+SOF(+Ca2+、+Mg2+)+10%FBS)中,放入38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2、100%濕度的常壓CO2培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)4小時(shí),進(jìn)行復(fù)合活性化處理。其中,HSOF(+Ca2+、+Mg2+)的組成為在表1的HSOF(-Ca2+、-Mg2+)液中加入1.17mM CaCl2和0.49mM MgCl2;SOF(+Ca2+、+Mg2+)的組成如表3。
表3、SOF(+Ca2+、+Mg2+)的組成


注濃度列中的“-”表示不含該物質(zhì)。
五、移核重構(gòu)胚的體外發(fā)育培養(yǎng)及細(xì)胞計(jì)數(shù)將復(fù)合活性化處理后的移核重構(gòu)胚,移入預(yù)先放入培養(yǎng)箱預(yù)熱平衡2h、每孔加有500μl CR2aa發(fā)育培養(yǎng)液(表2)的4孔培養(yǎng)皿中,覆蓋礦物油,放入38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2、100%濕度的常壓CO2培養(yǎng)箱進(jìn)行7d的發(fā)育培養(yǎng),觀察體外培養(yǎng)環(huán)境條件下的重構(gòu)胚的囊胚發(fā)育情況。結(jié)果如表4所示,本試驗(yàn)采用骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞和胎兒成纖維細(xì)胞作為核移植供體細(xì)胞,進(jìn)行核移植試驗(yàn),結(jié)果表明32h時(shí)2-cell期的卵裂率前者為70%(326/464)極顯著低于后者的84.5%(300/355)(P<0.01);44h時(shí)4-cell期率兩者間差異不顯著;98-144小時(shí)桑椹胚發(fā)育率和144-168小時(shí)囊胚發(fā)育率前者分別為40.5%(188/464)和17.2%(80/464)極顯著高于后者的31.6%(112/355)和9.3%(33/355)(P<0.01);體外培養(yǎng)168h骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞核移植囊胚,前者有一半的內(nèi)細(xì)胞團(tuán)從切口脫出透明帶,形態(tài)學(xué)上克隆囊胚為長形(圖6),體外培養(yǎng)168小時(shí)的囊胚內(nèi)細(xì)胞團(tuán)完全脫離透明帶能力前者(50%)極顯著高于后者(6.1%);體外培養(yǎng)198h的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞克隆囊胚內(nèi)細(xì)胞團(tuán)完全脫離透明帶,脫離透明帶之后,形態(tài)學(xué)上發(fā)生很大變化,由長形變成圓形(圖7)。
表4不同核供體細(xì)胞的核移植重構(gòu)胚的體外發(fā)育及囊胚脫離透明帶的形成

注a-bP<0.0權(quán)利要求
1.一種控制哺乳動物性別的方法,是將哺乳動物骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞作為核供體細(xì)胞,移入到成熟的、去核的、未受精的哺乳動物卵母細(xì)胞中,進(jìn)行體外重構(gòu)、體外培養(yǎng)、胚胎移植,控制子代的性別。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述哺乳動物骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞通過密度梯度離心法、貼壁篩選法、流式細(xì)胞儀分選法、免疫磁珠分選法或密度梯度離心法結(jié)合貼壁篩選法分離。
3.根據(jù)權(quán)利要求2所述的方法,其特征在于所述哺乳動物卵母細(xì)胞來自于牛、羊、兔、貓或狗。
4.根據(jù)權(quán)利要求3所述的方法,其特征在于所述哺乳動物卵母細(xì)胞來自于牛。
5.根據(jù)權(quán)利要求4所述的方法,其特征在于所述骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞通過以下密度梯度離心法結(jié)合貼壁篩選法方法獲得將牛骨髓單細(xì)胞懸液加入密度為1.082的Percoll細(xì)胞分離液中進(jìn)行離心,取液面交界處的云霧狀單個(gè)核細(xì)胞層,接種于塑料容器中進(jìn)行培養(yǎng),去掉非貼壁細(xì)胞,得到牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞。
6.根據(jù)權(quán)利要求5所述的方法,其特征在于所述牛骨髓單細(xì)胞懸液與密度為1.082的Percoll細(xì)胞分離液的體積比為1∶1。
7.根據(jù)權(quán)利要求6所述的方法,其特征在于所述離心條件為80g離心30min。
8.根據(jù)權(quán)利要求7所述的方法,其特征在于所述接種密度為1×105個(gè)細(xì)胞-1×107個(gè)細(xì)胞/cm2。
9.根據(jù)權(quán)利要求8所述的方法,其特征在于所述接種密度為1×107個(gè)細(xì)胞/cm2。
10.根據(jù)權(quán)利要求1至9中任一所述的方法,其特征在于所述成熟的、去核的、未受精的哺乳動物卵母細(xì)胞通過一步去核法、擠壓除核法或點(diǎn)擊去核法獲得;所述點(diǎn)擊去核法是將剛放出第一極體的哺乳動物卵母細(xì)胞的裸卵的透明帶,在第一極體處切開透明帶周長的1/3,再點(diǎn)擊透明帶,除去第一極體連同下面的核物質(zhì);所述1/3是透明帶周長的1/3。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種控制哺乳動物性別的方法。本發(fā)明所提供的控制哺乳動物性別的方法,是將哺乳動物骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞作為核供體細(xì)胞,移入到成熟的、去核的、未受精的哺乳動物卵母細(xì)胞中,進(jìn)行體外重構(gòu)、體外培養(yǎng)、胚胎移植,控制子代的性別。本發(fā)明用骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞克隆獲得的168h囊胚,在體外繼續(xù)培養(yǎng)體系中,50%的內(nèi)細(xì)胞團(tuán)可以完全脫離透明帶,極顯著高于體細(xì)胞克隆囊胚在繼續(xù)培養(yǎng)中只有2-6%的囊胚可完全脫離透明帶。本發(fā)明利用牛骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞核移植技術(shù),控制良種牛性別,可降低性別控制成本,提高良種牛的生產(chǎn)性牛,可操作性強(qiáng),為良種產(chǎn)業(yè)化提供技術(shù)支撐。
文檔編號A61D19/00GK1908163SQ20061011264
公開日2007年2月7日 申請日期2006年8月28日 優(yōu)先權(quán)日2006年8月28日
發(fā)明者董雅娟, 趙興, 封紀(jì)武, 柏學(xué)進(jìn), 胡亮 申請人:萊陽農(nóng)學(xué)院
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