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含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒及其產(chǎn)生方法和用途的制作方法

文檔序號:420667閱讀:1484來源:國知局
專利名稱:含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒及其產(chǎn)生方法和用途的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明公開了一種含原癌基因c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒以及它的產(chǎn)生方法和用途。
背景技術(shù)
赤潮毒素主要有麻痹性貝毒(paralytic shellfish poisoning,PSP)、腹瀉性貝毒(diarrhetic shellfish poisoning,DSP)、神經(jīng)性貝毒(neurotoxic shellfish poisoning,NSP)和記憶缺失性貝毒(amnesiashellfish poisoning,ASP)等。其中PSP是鈉通道阻斷劑,可以特異的與Na+通道結(jié)合。我國四大海域貝類PSP均有檢出。PSP毒素包括石房蛤毒素(STX)、新石房蛤毒素(neo-STX)、膝溝藻毒素1-4(GTX1-4)和氨基甲酰-N-磺基毒素等。目前,國內(nèi)外已建立了多種PSP檢測分析技術(shù)。其中細(xì)胞分析方法是利用PSP毒素的毒理特征,即和Na+通道特異結(jié)合的原理來檢測毒素,其最大的優(yōu)點是直接利用了毒素的作用機理,因而不僅能夠給出毒素量的信息,更重要的是能夠反映毒素的毒力水平。細(xì)胞分析中最具潛力、最受人們關(guān)注的是以報告基因為基礎(chǔ)的細(xì)胞分析法。原癌基因c-fos是一種快速反應(yīng)基因(immediate-early gene,IEG),作為快速、靈敏的生物標(biāo)記已用于藻類毒素檢測的研究。正常細(xì)胞中c-fos的表達量很低,但當(dāng)細(xì)胞受到傷害時,可以快速表達。在富含Na+通道的細(xì)胞中,Na+通道激活劑可以導(dǎo)致Na+通道持續(xù)開放,導(dǎo)致Na+內(nèi)流,從而誘導(dǎo)細(xì)胞中的c-fos基因快速表達。NSP自身是鈉通道激活劑;而PSP可以特異的與Na+通道結(jié)合,減少或降低由于Na+內(nèi)流而引起的細(xì)胞損傷。
Elizabeth R Fairey等在荷蘭Elsevier Science公司出版AnalyticalBiochemistry,1997,251129-132上公開了一種以c-fos啟動子為啟動子、熒光素酶(Luc)為報告基因的赤潮毒素細(xì)胞分析法。具體步驟如下1、細(xì)胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染小鼠成神經(jīng)細(xì)胞瘤細(xì)胞系N2A細(xì)胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清的MEM完全培養(yǎng)基(37℃,95%空氣,5%CO2)中。
應(yīng)用磷酸鈣轉(zhuǎn)染法,將c-fos-Luc與攜帶新霉素抗性基因的質(zhì)粒pSV2-neo(ATCC)共轉(zhuǎn)染N2A細(xì)胞。2-3周后,用G418篩選轉(zhuǎn)染細(xì)胞,挑取毒素STX存在下可誘導(dǎo)熒光素酶表達的陽性N2AC細(xì)胞。將N2AC細(xì)胞培養(yǎng)于含15%胎牛血清、200μl/ml新霉素的DMEM完全培養(yǎng)基(37℃,95%空氣5%CO2)中。
2、測定方法將N2AC細(xì)胞接種于96孔板上100μl無血清培養(yǎng)基中,細(xì)胞密度為30000/孔。24h后加入不同劑量的5μM藜蘆定和毒素。吸去培養(yǎng)基,加入20μl細(xì)胞裂解液(1%Triton X-100,5mM Tris,0.4mM CDTA(反式-1,2-環(huán)己二胺四乙酸),10%丙三醇,pH7.8,1mM DTT(二硫蘇糖醇),在室溫下裂解20-30min.每孔加入100μl熒光素酶和ATP混合液(熒光素酶測定試劑,Promega公司),10s后測定熒光強度。
該方法最大的優(yōu)點是直接利用了毒素的作用機理,因而不僅能夠給出毒素量的信息,更重要的是能夠反映毒素的毒力水平。用熒光素酶作報告基因來檢測毒素有許多優(yōu)點,如對樣品的要求不高,對設(shè)備和技術(shù)的要求不高,檢測的時間短,檢測的精確度也比較高等等。
但是由于實驗中所用熒光素酶的活性測定需要裂解細(xì)胞,不能活體檢測,提取酶的過程相對比較麻煩,因而不利于方法的推廣和利用。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的就是公開一種含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒,而該報告基因的活性測定不需要裂解細(xì)胞,能活體檢測,提取過程也方便。
本發(fā)明的又一目的是公開一種產(chǎn)生上述含c-fos啟動子和報告基因的質(zhì)粒的方法。
本發(fā)明的再一個目的是公開一種上述含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒的用途。
本發(fā)明是通過如下技術(shù)方案來實現(xiàn)的。以綠色熒光蛋白GFP為報告基因,構(gòu)建含c-fos啟動子和EGFP報告基因的pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒。
用上述pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒載體體外轉(zhuǎn)染真核細(xì)胞;篩選穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞株;通過毒素對細(xì)胞鈉通道的阻滯或激活引起的細(xì)胞熒光蛋白表達的變化,即熒光強度的變化來檢測赤潮毒素(如GTX)。
因本發(fā)明中采用的報告基因是GFP,表達不受生物類型、基因型或細(xì)胞組織類型的限制,活性測定不需要裂解細(xì)胞,能進行活體檢測,對細(xì)胞無毒害、無需底物或共反應(yīng)因子,所以用本發(fā)明的pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒來檢測GTX赤潮毒素可彌補和克服熒光酶的缺陷,具有檢測方便,檢測結(jié)果可靠,適用范圍廣,能同時反映毒素水平與毒力的特點。


圖1是熒光報告基因表達強度與不同濃度GTX毒素的關(guān)系曲線。
具體實施例方式
下面結(jié)合附圖,對本發(fā)明作進一步描述。綠色熒光蛋白(Greenfluorescent protein,GFP)是源于水母(jellyfish)、海筆(sea pen,seapansy)等海洋無脊椎動物的一種蛋白質(zhì),這種蛋白質(zhì)在體外經(jīng)適當(dāng)波長激發(fā)便可發(fā)出綠光,所發(fā)綠光可用普通熒光顯微鏡或熒光激活細(xì)胞分揀器檢測。作為報告基因,GFP的表達不受生物類型、基因型或細(xì)胞組織類型的限制,被認(rèn)為是一種在生物界較為“通用’’的基因。由于其檢測方便、對細(xì)胞無毒害、無需底物或共反應(yīng)因子,因而已廣泛應(yīng)用于分子生物學(xué)、病毒學(xué)、生物醫(yī)學(xué)和環(huán)境檢測等領(lǐng)域?,F(xiàn)已在多種哺乳動物細(xì)胞(中國倉鼠卵巢細(xì)胞系、人體胚性腎細(xì)胞系、猿猴cos-1細(xì)胞系以及鼠NIH3 T3細(xì)胞系等)中表達成功。作為一種優(yōu)良的報告基因,GFP在藻毒素的檢測方面亦應(yīng)當(dāng)存在很好的應(yīng)用前景。
本發(fā)明的具體步驟為構(gòu)建含c-fos啟動子和EGFP報告基因的pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒;用上述pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒體外轉(zhuǎn)染真核細(xì)胞;篩選穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞株。通過毒素對細(xì)胞鈉通道的阻滯或激活引起的細(xì)胞綠色熒光蛋白表達的變化,即熒光強度的變化來檢測赤潮毒素。
一、實驗材料1、菌株、質(zhì)粒1)菌株大腸桿菌E.coliDH5-α2)質(zhì)粒HP443質(zhì)粒由日本東京大學(xué)醫(yī)學(xué)院內(nèi)科學(xué)系IshikawaToshio教授惠贈。
2、生化試劑1)VspI,EcoRI,T4-DNALigase等工具酶購自美國MD公司;RNaseA購自Sigma公司;DL2000 Marker,DL15000 Marker購自Takara公司;PCR引物由上海博亞生物工程公司合成。
2)Tris,EDTA,Trytone,Yeast Extract、G418、飽和酚等試劑購自寶泰克生物工程公司。
3)Gel Extraction Kit,PCR Purification Kit購自德國QIAGEN公司;Promix Taq PCR試劑盒購自Takara公司。
二、方法步驟1、重組質(zhì)粒pEGFP-c-fos的構(gòu)建1)pEGFP質(zhì)粒的大量擴增、抽提pEGFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)化常規(guī)制備的大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,進行大量擴增;堿裂解法大量抽提pEGFP質(zhì)粒,電泳檢測質(zhì)粒純度和含量;用VspI、EcoRI對提取的質(zhì)粒pEGFP進行酶切,試劑盒凝膠回收大片段酶切產(chǎn)物;回收pEGFP載體,去磷酸化后用PCR純化試劑盒純化去磷酸化產(chǎn)物。
2)c-fos啟動子的擴增、酶切及純化根據(jù)已公布的人c-fos啟動子的序列,設(shè)計兩端引物引物1為上游5’端引物,其中包含22個c-fos啟動子5’端互補的堿基,一個VspI識別位點,4個保護堿基。
引物2為下游3’端引物,其中包含21個與c-fos啟動子3’端互補的堿基,一個EcoRI識別位點,3個保護堿基Primer15’-TATAATTAATTTCTCATTCTGCGCCGTTCCCG-3’Primer25’-AAAGAATCCCCGCCGGCTCAGTCTTGGCTT-3’以含c-fos啟動子的HF443質(zhì)粒為模板,利用Takara公司的Promix Taq試劑盒進行PCR擴增。反應(yīng)條件95℃,預(yù)變性5min,94℃40s;60℃,1min;72℃,1min,在PCR儀上進行30個循環(huán),72℃延伸7min;反應(yīng)結(jié)束后,各取5μl反應(yīng)產(chǎn)物用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測;取200μl PCR產(chǎn)物,瓊脂糖凝膠電泳后,切膠,用QIAGEN公司凝膠回收試劑盒回收;將回收的PCR產(chǎn)物,用VspI和EcoRI雙酶切。
3)連接反應(yīng)將雙酶切的pEGFP載體和c-fos啟動子片斷于在1.5ml的離心管中進行連接反應(yīng),16℃連接30min。
4)篩選重組子連接液轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,從轉(zhuǎn)化子的平板上隨機挑取10個菌落,擴增培養(yǎng)后用堿裂解法少量提取質(zhì)粒備用。酶切、PCR、測序鑒定。
2.可穩(wěn)定表達pEGFP-c-fos的BIU-87細(xì)胞株的建立1)細(xì)胞培養(yǎng)人膀胱移行細(xì)胞癌細(xì)胞系BIU-87細(xì)胞培養(yǎng)于含15%新生牛血清、100U/ml青霉素、25μg/ml鏈霉素的RMPI 1640完全培養(yǎng)基(37℃,95%空氣5%CO2,飽和濕度)中,并使之維持單層貼壁生長,2天換液一次,用血清瓶大量培養(yǎng)BIU-87細(xì)胞,在細(xì)胞處于對數(shù)生長期時取少量細(xì)胞進行傳代,其他細(xì)胞進行實驗。
2)細(xì)胞轉(zhuǎn)染及抗性克隆的篩選轉(zhuǎn)染細(xì)胞的前一天用0.25%胰酶和0.4%EDTA消化并記數(shù)細(xì)胞,使每瓶細(xì)胞濃度大約為1~2×105。分別溶解1~2μg DNA質(zhì)粒和5μl的Lipofect AMINE 2000于50μl的不含血清的培養(yǎng)基中,室溫溫育5min后混合20min。棄去培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)液,用1ml的D-Hank’s液清洗細(xì)胞后,在培養(yǎng)瓶中加入2ml的RMPI 1640(不含雙抗,不含血清)。將DNA-Lipofect AMINE2000的混合物加入到RMPI 1640中,來回輕輕搖動混合均勻。37℃中溫育。在無血清溫育6h后,在培養(yǎng)體系中加入400μl的小牛血清,繼續(xù)培養(yǎng)12~24h。次日用胰酶消化細(xì)胞,計數(shù),使細(xì)胞濃度約為1~5×104。取一24孔培養(yǎng)板,按每孔1ml分別接種于各孔中。等細(xì)胞貼壁完全后,向每孔中加入G418篩選3~4周,直至抗性細(xì)胞克隆形成??剐钥寺∩珊螅瑪U大培養(yǎng),一部分凍存起來,一部分繼續(xù)傳代培養(yǎng)。
3、赤潮毒素GTX的檢測取一24孔培養(yǎng)板,分別接種1ml濃度為1×105/ml的可穩(wěn)定表達pEGFP-c-fos的BIU-87細(xì)胞,共7孔。等細(xì)胞貼壁完全后,先向每孔加入約100ng/ml的烏頭堿,30min后在向每孔依次加入不同濃度的PSP毒素GTX。12h后熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白的表達,并拍照。采用美國Media Cybernetics公司的Image-pro Plus專業(yè)圖像分析軟件對各濃度組圖片熒光強度進行分析統(tǒng)計,建立綠色熒光表達強度與不同濃度GTX毒素的關(guān)系曲線。
結(jié)果顯示,綠色熒光的表達強度與不同濃度GTX毒素的關(guān)系曲線大致成“V”字形。當(dāng)GTX濃度小于50ng/ml時,熒光強度隨著GTX濃度的增加逐漸減弱;大于50ng/ml時熒光強度隨著GTX濃度的增加逐漸增強,與圖像觀察的結(jié)果相吻合。GTX對細(xì)胞中綠色熒光蛋白的表達存在一定的劑量依賴關(guān)系,特別是在低濃度范圍內(nèi)(小于50ng/ml),GTX對綠色熒光蛋白表達的抑制作用更為靈敏、準(zhǔn)確,GTX納克級的變化都會引起熒光強度的改變。說明利用該熒光報告基因的表達強度與不同濃度GTX毒素的關(guān)系曲線,可以用本發(fā)明的重組質(zhì)粒對赤潮毒素GTX進行定量的檢測。
權(quán)利要求
1.一種含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒,其特征是所述報告基因為EGFP基因。
2.一種按權(quán)利要求1所述的含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒的產(chǎn)生方法,其特征是該質(zhì)粒的具體重組步驟為1)pEGFP質(zhì)粒的大量擴增、抽提用pEGFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)化常規(guī)制備的大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,進行大量擴增;堿裂解法大量抽提pEGFP質(zhì)粒,電泳檢測質(zhì)粒純度和含量;用VspI、EcoRI對提取的質(zhì)粒pEGFP進行酶切,試劑盒凝膠回收大片段酶切產(chǎn)物;回收pEGFP載體,去磷酸化后用PCR純化試劑盒純化;2)c-fos啟動子的擴增、酶切及純化根據(jù)人c-fos啟動子的序列,設(shè)計兩端引物引物1為上游5’端引物,其中包含22個c-fos啟動子5’端互補的堿基,一個VspI識別位點,4個保護堿基;引物2為下游3’端引物,其中包含21個與c-fos啟動子3’端互補的堿基,一個EcoRI識別位點,3個保護堿基Primer1’-TATAATTAATTTCTCATTCTGCGCCGTTCCCG-3’Primer25’-AAAGAATCCCCGCCGGCTCAGTCTTGGCTT-3’以含c-fos啟動子的HF443質(zhì)粒為模板,利用Promix Taq試劑盒進行PCR擴增;反應(yīng)條件95℃,預(yù)變性5min,94℃40s;60℃,1min;72℃,1min,在PCR儀上進行30個循環(huán),72℃延伸7min;反應(yīng)結(jié)束后,各取5μl反應(yīng)產(chǎn)物用0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測;取200μl PCR產(chǎn)物,瓊脂糖凝膠電泳后,切膠,用凝膠回收試劑盒回收;將回收的PCR產(chǎn)物,用VspI和EcoRI雙酶切;3)連接反應(yīng)將雙酶切的pEGFP載體和c-fos啟動子片斷于在1.5ml的離心管中進行連接反應(yīng),16℃連接30min;4)篩選重組子連接液轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,從轉(zhuǎn)化子的平板上隨機挑取10個菌落,擴增培養(yǎng)后用堿裂解法少量提取質(zhì)粒備用;酶切、PCR、測序鑒定。
3.一種按權(quán)利要求1所述的含c-fos啟動子和報告基因的重組質(zhì)粒的用途,其特征是該重組質(zhì)粒用于檢測GTX貝毒毒素,具體的應(yīng)用步驟如下1)可穩(wěn)定表達pEGFP-c-fos的BIU-87細(xì)胞株的建立(1)細(xì)胞培養(yǎng)人膀胱移行細(xì)胞癌細(xì)胞系BIU-87細(xì)胞培養(yǎng)于含15%新生牛血清、100U/ml青霉素、25μg/ml鏈霉素的RMPI 1640完全培養(yǎng)基(37℃,95%空氣5%CO2,飽和濕度)中,并使之維持單層貼壁生長,2天換液一次,用血清瓶大量培養(yǎng)BIU-87細(xì)胞,在細(xì)胞處于對數(shù)生長期時取少量細(xì)胞進行傳代,其他細(xì)胞進行實驗;(2)轉(zhuǎn)染及抗性克隆的篩選轉(zhuǎn)染細(xì)胞的前一天用0.25%胰酶和0.4%EDTA消化并記數(shù)細(xì)胞,使每瓶細(xì)胞濃度大約為1~2×105/ml;分別溶解1~2μg DNA質(zhì)粒和5μl的Lipofect AMINE 2000于50μl的不含血清的培養(yǎng)基中,室溫溫育5min后混合20min;棄培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)液,用1ml的D-Hank’s液清洗細(xì)胞后,在培養(yǎng)瓶中加入2ml不含雙抗、不含血清的RMPI 1640;將DNA-Lipofect AMINE2000的混合物加入到RMPI 1640中,來回輕輕搖動混合均勻;37℃中溫育;在無血清溫育6h后,在培養(yǎng)體系中加入400μl的小牛血清,繼續(xù)培養(yǎng)12~24h;次日用胰酶消化細(xì)胞,計數(shù),使細(xì)胞濃度約為1~5×104;取一24孔培養(yǎng)板,按每孔1ml分別接種于各孔中;等細(xì)胞貼壁完全后,向每孔中加入G418篩選3~4周,直至抗性細(xì)胞克隆形成;抗性克隆生成后,擴大培養(yǎng),一部分凍存起來,一部分繼續(xù)傳代培養(yǎng);2)赤潮毒素GTX的檢測取一24孔培養(yǎng)板,分別接種1ml濃度為1×105的可穩(wěn)定表達pEGFP-c-fos的BIU-87細(xì)胞,共7孔;等細(xì)胞貼壁完全后,先向每孔加入約100ng/ml的烏頭堿,30min后在向每孔依次加入不同濃度的被測PSP毒素GTX;12h后熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白的表達,并拍照;用專業(yè)圖像分析軟件對各濃度組圖片進行分析統(tǒng)計;將統(tǒng)計結(jié)果與圖1所示的綠色熒光表達強度與不同濃度GTX毒素的關(guān)系曲線進行比較;定量得出被測GTX赤潮毒素的濃度。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種含原癌基因c-fos啟動子和報告基因的pEGFP-c-fos重組質(zhì)粒及其構(gòu)建方法和用途。該重組質(zhì)粒檢測GTX赤潮毒素,檢測方便、對細(xì)胞無毒害、無需底物或共反應(yīng)因子,檢測結(jié)果可靠,適用范圍廣。
文檔編號C12Q1/68GK1492047SQ0314048
公開日2004年4月28日 申請日期2003年9月11日 優(yōu)先權(quán)日2003年9月11日
發(fā)明者劉潔生, 楊維東, 吳春利 申請人:暨南大學(xué)
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