專利名稱:一種篩選cd18基因正常的優(yōu)良種牛的方法及其專用引物的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明涉及篩選優(yōu)良種牛的方法及其專用引物,特別是涉及一種利用牛CD18基因的單核苷酸多態(tài)性篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法及其專用引物。
背景技術(shù):
牛白細(xì)胞黏附缺陷癥(bovine leukocyte adhesion deficiency,BLAD)是一種常染色體上由單基因控制的隱性遺傳疾病,是由編碼嗜中性粒細(xì)胞表面糖蛋白的CD18基因的一個點突變引起的(Shuster,D.E.,Bosworth,B.T.,Kehrli,M.E.Jr.Sequenceof the bovine CD18-encoding cDNAcomparison with the human and murineglycoproteins.Gene.1992,114(2)267-271.)。CD18基因已經(jīng)被定位在1號染色體上。Shuster等對1頭患BLAD的荷斯坦牛的CD18基因進行了序列分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),自5’端第383位堿基由A突變?yōu)镚,該突變是錯義突變,導(dǎo)致128位的天門冬氨酸突變?yōu)楦拾彼?D128G),致使白細(xì)胞表面的β2整合素表達(dá)明顯減少或缺乏而引起臨床發(fā)病。BLAD臨床主要表現(xiàn)為嚴(yán)重的重復(fù)性感染、膿液形成減弱、傷口愈合延遲和白細(xì)胞增多,也表現(xiàn)在犢牛初生重低和發(fā)育不良(Muller KE,Bernadina WE,Kalsbeek HC,et al.Bovine leukocyte adhesion deficiency--clinical course andlaboratory findings in eight affected animals.Vet Q.1994,16(2)65-71;Gerardi AS.Bovine leucocyte adhesion deficiencya review of a modern diseaseand its implications.Res Vet Sci.1996,61(3)183-186.)。BLAD的生理基礎(chǔ)是白細(xì)胞粘附及相關(guān)功能(包括吞噬和趨化作用)的缺陷。BLAD多發(fā)生于1-14月齡的荷斯坦奶牛,當(dāng)隱性突變基因CD18純合時奶牛表現(xiàn)為發(fā)病,當(dāng)隱性突變基因雜合時奶牛表現(xiàn)為正常,但該牛是BLAD的攜帶者。Janosa等研究發(fā)現(xiàn),BLAD還對奶牛的產(chǎn)奶量產(chǎn)生負(fù)面影響(Janosa A,Baranyai B,Dohy J.Comparison of milk productionof the progeny of BLAD-carrier and healthy Holstein bull s in Hungary.ActaVet Hung.1999;47(3)283-289)。
目前,BLAD遺傳缺陷的發(fā)現(xiàn)已經(jīng)引起了世界各國奶牛育種協(xié)會和育種工作者的重視,在美國、日本、丹麥和荷蘭等國家相繼報道了在荷斯坦牛群中存在BLAD有害基因(Olchowy TW,Bochsler PN,Nei lsen NR,et at.Bovine leukocyte adhesiondeficiencyin vitro assessment of neutrophil function and leukocyteintegrin expression.Can J Vet Res.1994,58(2)127-33;Bernadina WE,DuitsAJ,Kalsbeek HC,et at.Leukocyte adhesion deficiency in a Dutch Holsteincalfa case with a clear-cut family history.Vet Immunol Immunopathol.1993,37(3-4)295-308.)。隨后美國、加拿大和歐洲一些國家大量的基因檢測和系譜分析發(fā)現(xiàn),世界非常著名的公牛通常攜帶該隱性突變基因,如Hawkeye bull(CANM369995)就是BLAD的攜帶者。一頭優(yōu)秀種公牛一生可以生產(chǎn)幾十萬劑甚至上百萬劑的冷凍精液,由于冷凍精液和人工授精技術(shù)的普及和廣泛應(yīng)用,優(yōu)秀種公牛的遺傳影響是顯而易見的。由此可見,荷斯坦牛群中發(fā)現(xiàn)的BLAD遺傳缺陷帶來的是世界性問題,這導(dǎo)致近年來奶牛育種工作者在重視優(yōu)秀種公牛生產(chǎn)性能表現(xiàn)的同時,更加重視優(yōu)秀種公牛是否攜帶隱性有害基因。
通過基因檢測和分子選育技術(shù),可以在分子水平上解決奶牛的遺傳改良問題。一方面,通過基因檢測技術(shù)可以發(fā)現(xiàn)種公?;蚍N子母牛攜帶隱性有害基因的情況,并加以選擇剔除,避免了通過人工授精技術(shù)傳播遺傳缺陷基因的風(fēng)險;另一方面,通過遺傳標(biāo)記基因或候選基因可以對數(shù)量性狀基因(QTL)進行定位分析,從而實現(xiàn)對后備種公牛的早期選擇,可以縮短奶牛世代間隔,加快遺傳改良的速度。歐美等奶業(yè)發(fā)達(dá)國家已將分子選育技術(shù)應(yīng)用于小公牛的選育和淘汰中。據(jù)有關(guān)專家預(yù)測,隨著奶牛和其它主要家畜品種質(zhì)量和數(shù)量性狀基因圖譜的完成及分子選育技術(shù)的滲入,整個育種體系將發(fā)生革命性改變。
近幾年,在美國、加拿大和日本等國家相應(yīng)建立了種公牛遺傳缺陷基因的分子檢測方法和育種方案,并在種公牛系譜上明確標(biāo)注了隱性基因的攜帶情況,從而可合理的指導(dǎo)種公牛的選種選配,有效地降低了隱性有害基因CVM的不良影響。目前,BLAD有害基因的分子檢測方法主要是PCR-RFLP法(polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism)(Mukhopadhyaya PN,Mehta HH,RathodRN.A method for the simulation of normal,carrier and affected controls forPCR-RFLP screening of a genetic disease in dairy cattle.Mol Cell Probes.2000,14(6)381-384;Norouzy A,Nassiry MR,Eftekhari Shahrody F.Identificationof bovine leucocyte adhesion deficiency(BLAD)carriers in Holstein and BrownSwiss AI bulls in Iran.Genetika.2005.41(12)1697-1701.),但是,PCR-RFLP法要求建立陽性對照才能保證檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性,而且成本較高,不適合規(guī)?;瘷z測。因此,迫切需要一種準(zhǔn)確、快速、經(jīng)濟的BLAD有害基因的分子檢測方法。
單核苷酸多態(tài)性(single nucleotide polymorphism,SNP)主要是指在基因組水平上由單個核苷酸的變異所引起的DNA序列多態(tài)性。SNP檢測方法常采用一些已有的成熟技術(shù),如DNA測序、限制性酶切片段長度多態(tài)性(RFLP)、單鏈構(gòu)象多態(tài)性(SSCP)及等位基因特異的寡聚核苷酸雜交(ASO)等。具體采用哪一種方法,需要結(jié)合靶序列的特點和實驗條件來確定。
日本Orita等研究發(fā)現(xiàn),單鏈DNA片段呈復(fù)雜的空間折疊構(gòu)象,這種立體結(jié)構(gòu)主要是由其內(nèi)部堿基配對等分子內(nèi)相互作用力來維持的,當(dāng)有一個堿基發(fā)生改變時,會或多或少地影響其空間構(gòu)象,使構(gòu)象發(fā)生改變,空間構(gòu)象有差異的單鏈DNA分子在聚丙烯酰胺凝膠中受排阻大小不同,因此,通過非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE),可以非常敏銳地將構(gòu)象上有差異的分子分離開。將SSCP用于檢測PCR擴增產(chǎn)物的基因突變而建立的PCR-SSCP技術(shù),進一步提高了基因突變檢測方法的便捷性和靈敏性。
PCR-SSCP技術(shù)(Orita M,Iwahana H,Kanazawa H.Detection of polymorphismsof human DNA by gel electrophoresis as single-strand conformationalpolymorphisms.Proc Natl Acad Sci.1989,862766-2770.;Orita M,Suzuki Y,Sekiya T,et al.A rapid and sensitive detetion of point mutation and geneticpolymorphism using polymerase chain reaction.Genomics.1989,5874-879.)是檢測DNA突變最為直觀而精確的實驗技術(shù)手段之一,該方法對長度在100-300bp之間的DNA片段突變檢測的靈敏度可達(dá)100%,結(jié)合序列分析,可做到對大批量樣品的目的DNA片段的“全掃描”分析,不僅成本低,而且自動化程度較高,因此,在進行基因診斷和多態(tài)性分析,包括單核苷酸多態(tài)(SNP)的檢測中,PCR-SSCP技術(shù)不失為一種準(zhǔn)確、快速、簡便、經(jīng)濟的技術(shù)手段。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的是提供一種利用牛CD18基因的單核苷酸多態(tài)性篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法及其專用引物。
本發(fā)明所提供的用于篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的引物,是由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對。
將由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對命名為BLF/BLR,序列表中的序列1由20個堿基組成,序列表中的序列2由21個堿基組成。
本發(fā)明的第二個目的是提供一種篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法。
本發(fā)明所提供的篩選優(yōu)良種牛的方法,是以待測牛的基因組DNA為模板,在由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對的引導(dǎo)下進行PCR擴增,檢測擴增片段自5’端第32位堿基為A、G還是N,擴增片段自5’端第32位堿基為A的種牛為CD18基因正常的優(yōu)良種牛;所述N為A和G的雜合體。
所述待測牛的基因組DNA的來源是廣泛的,可以從血液(新鮮或冷凍)、精液(新鮮或冷凍)、組織樣品(如耳組織等)或含有毛囊的牛毛樣品中提取。
如果PCR擴增片段自5’端第32位堿基為A,即CD18基因第二外顯子自5’端第55位堿基為A時,其純合體的基因型命名為AA;如果PCR擴增片段自5’端第32位堿基為G,即CD18基因第二外顯子自5’端第55位堿基為G時,其純合體的基因型命名為BB;它們的雜合體基因型命名為AB。
基因型為AA的牛為CD18基因正常的優(yōu)良種牛;基因型為BB的牛為BLAD患者,根據(jù)牛的表型就能辨別,不需要專門設(shè)備和技術(shù)來檢測;基因型為AB的牛為攜帶隱性有害突變CD18基因的牛,即BLAD攜帶者。
其中,以25μl總體積為例,PCR擴增的反應(yīng)體系包括模板DNA 40ng,Taq酶1.5U,20pmol/L上、下游引物各0.5μl,2.5mmol/L dNTPs 2μl,10×PCR緩沖液2.5μl,用重蒸水補充反應(yīng)體系至25μl。10×PCR緩沖液的組成是Tris·HCl(pH8.3)100mM,KCl 500mM,MgCl215mM。PCR反應(yīng)條件為先94℃預(yù)變性5min,然后94℃變性30s,64℃退火30s,72℃延伸30s,共進行35個循環(huán);最后72℃延伸7min。
所述檢測擴增產(chǎn)物的方法可為對擴增產(chǎn)物進行14%的非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳,然后銀染顯色。具體方法可為取1.5μl擴增產(chǎn)物,加入6μl上樣緩沖液(98%甲酰胺,10mM EDTA pH8.0,10%甘油,0.025%溴酚藍(lán)和0.025二甲苯青),98℃變性10min后,立即放入冰水混合物中冷卻,點樣,用14%非變性聚丙烯酰胺凝膠中電泳分離,銀染顯色。結(jié)果發(fā)現(xiàn)存在2種不同基因型AA型和AB型,基因分型結(jié)果如附圖4所示。經(jīng)測序發(fā)現(xiàn),AA基因型牛的CD18基因第2外顯子(exon2)第55位堿基為A,該基因型屬正常牛只,在國際上統(tǒng)一采用“TL”標(biāo)識;而AB基因型牛的CD18基因第2外顯子第55位堿基為N,該基因型的牛是BLAD攜帶者,在國際上統(tǒng)一采用“BL”標(biāo)識。
本發(fā)明提供了一種篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法及其專用引物。該方法利用CD18基因第二個外顯子自5’端第55位堿基的多態(tài)性,并根據(jù)基因型對種牛進行篩選,剔除不利等位基因。本發(fā)明的篩選方法操作簡單,快捷,費用低廉,準(zhǔn)確度高(可達(dá)99%),并可實現(xiàn)自動化的直接檢測。此外,可根據(jù)本方明的方法開發(fā)出相應(yīng)的檢測試劑盒,用于篩選攜帶有利等位基因(AA)的個體,為種牛的育種工作提供便利。本發(fā)明將在BLAD有害基因的檢測及優(yōu)良種牛的分子選育中發(fā)揮重要作用,應(yīng)用前景廣闊。
下面結(jié)合具體實施例對本發(fā)明作進一步詳細(xì)說明。
圖1為特異性引物BLF/BLR在CD18基因中的位置示意2為特異性引物BLF/BLR的PCR擴增片段的大小及BLAD突變位點示意3為退火溫度為64℃的PCR擴增產(chǎn)物的2.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果圖4為牛CD18基因的PCR-SSCP分析檢測圖,其中AA型為正常牛,AB型為BLAD攜帶者圖5為不同基因型的測序峰圖具體實施方式
下述實施例中所用方法如無特別說明均為常規(guī)方法。
實施例1、用于篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的引物設(shè)計及PGR反應(yīng)條件的優(yōu)化一、引物設(shè)計依據(jù)牛CD18基因的核苷酸序列(GenBank號Y12672),用Oligo6.0軟件設(shè)計用于PCR-SSCP篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的特異性PCR引物,PCR產(chǎn)物長度為150-300bp左右比較適合PCR-SSCP檢測。通過對一系列PCR引物的設(shè)計、篩選和優(yōu)化,最終根據(jù)如序列表中序列3所示的核苷酸序列,該序列中包含引起B(yǎng)LAD的突變位點(第32位堿基,即A55GCD18基因Exon2自5’端第55位堿基,正常牛為堿基A,BLAD牛為堿基G),設(shè)計出引物BLF(上游引物)5’-ACCTTCCGGAGGGCCAAGGG-3’(序列表中序列1)和引物BLR(下游引物)5’-AGTAGCTGCCTCACCAATGCG-3’ (序列表中序列2),特異性PCR引物BLF和BLR在CD18基因中的位置示意圖見圖1,其擴增片段的大小及BLAD突變位點示意圖如圖2所示,將該引物對命名為BLF/BLR。
二、PCR反應(yīng)條件優(yōu)化選擇北京市種公牛站的荷斯坦公牛為實驗材料,提取新鮮血液的基因組DNA(基因組DNA可以從冷凍血液、精液(新鮮或冷凍)、組織樣品(如耳組織等)或含有毛囊的牛毛樣品中提取)并以此為模板,在引物對BLF/BLR的引導(dǎo)下利用梯度PCR儀進行PCR擴增,25μl PCR反應(yīng)體系為dNTP混合物(4×2.5mol/L)2μl,10×PCR緩沖液(Tris·HCl(pH8.3)100mM,KCl 500mM,MgCl215mM)2.5μl,正、反向引物(20pmol/L)各0.5μl,Taq DNA聚合酶(3U/μl)0.5μl,模板DNA(20ng/μl)2μl,ddH2O 17μl;PCR反應(yīng)條件初步設(shè)定為94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,55±10℃退火30s,72℃延伸30s,進行35個循環(huán);72℃延伸7min。反應(yīng)結(jié)束后,對不同退火溫度的PCR擴增產(chǎn)物各取3ul進行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,其中退火溫度為64℃的PCR擴增產(chǎn)物的2%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果如圖3所示(泳道1-8PCR擴增產(chǎn)物,泳道M100bp ladder Marker),PCR擴增產(chǎn)物長度為162bp,與預(yù)期結(jié)果一致,且擴增條帶單一,濃度較高,可用于PCR-SSCP檢測,因此,將優(yōu)化的PCR反應(yīng)條件定為94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,64℃退火30s,72℃延伸30s,進行35個循環(huán);72℃延伸7min。
實施例2、PCR-SSCP篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛及其測序鑒定一、PCR-SSCP篩選提取54頭種公牛新鮮血液的基因組DNA并以此為模板,在實施例1獲得的特異性引物對BLF/BLR的引導(dǎo)下進行PCR擴增,PCR反應(yīng)體系與實施例1相同,反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,64℃退火30s,72℃延伸30s,進行35個循環(huán);72℃延伸7min。反應(yīng)結(jié)束后,54頭種公牛的PCR擴增產(chǎn)物各取1.5μl置于PCR管中,分別加6μl上樣緩沖液(98%甲酰胺,10mM EDTA pH8.0,10%甘油,0.025%溴酚藍(lán)和0.025二甲苯青),98℃變性10min后,立即置于冰上冰浴5min,點樣,進行14%非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳(120V,16-18h),其中14%非變性聚丙烯酰胺凝膠(30mL體積,0.1cm膠條)的制作方法為清洗玻璃板,烘干,用0.8%瓊脂糖封閉玻璃板和膠條間的縫隙;配制30mL 14%的聚丙稀酰胺膠工作液(30%聚丙烯酰胺12.0mL,50%甘油3mL,10×TBE 3mL,10%過硫酸銨200μl,TEMED 12μl,純水12mL),混合后迅速灌膠;當(dāng)澆灌至離玻璃板上沿0.1cm時停止灌膠,插入梳子,室溫聚合約半小時,多余的聚丙烯酰胺4℃保存,并隨時觀察凝膠聚合情況,補加聚丙烯酰胺;凝膠聚合后,向電泳槽中加入1×TBE,為了保證電泳條帶的整齊性,用注射器沖洗加樣孔,預(yù)電泳20min后,可上樣。電泳結(jié)束后,采用硝酸銀染色方法進行染色,具體方法包括以下步驟1)小心取下凝膠,置于70%乙醇中,放在水平搖床上緩慢搖動15min(乙醇用完可以回收)進行固定;2)去離子水洗凝膠2遍,每次2-3min,盡量除去乙醇;3)用200mL染色液(NH3·H2O 2mL,3.6%NaOH 4.2mL,20%AgNO33.6mL,加去離子水至200mL)染色30min;4)去離子水洗凝膠3遍,每次2-3min,盡量洗去多余的染色液;5)用200mL顯色液(1%檸檬酸鈉1mL,甲醛100ul,加去離子水至200mL)顯色約10-30min,當(dāng)單鏈DNA條帶的清晰度合適時,倒掉顯色液;6)用去離子水洗掉多余的顯色液,保鮮膜封好,掃描照相。
基因分型結(jié)果如圖4所示,發(fā)現(xiàn)存在2種不同基因型,AA為純合基因型,表示正常牛只,采用“TL”標(biāo)識;AB為雜合基因型,表示BLAD攜帶者,采用“BL”標(biāo)識。在所檢測的54頭種公牛中,AA基因型53頭,AB基因型僅有1頭,也就是說僅有1頭公牛是BLAD突變基因攜帶者。
二、測序鑒定用測序的方法對步驟一的檢測結(jié)果進行鑒定,具體方法為采用Geneclean試劑盒(購自北京天為時代科技有限公司)回收并純化步驟一中以54頭種公牛新鮮血液為模板的PCR-SSCP擴增產(chǎn)物,使用ABI PRISM377 DNA測序儀,通過Dye primer試劑盒(購自美國PE公司)對純化的PCR擴增產(chǎn)物直接進行正、反方向測序,進一步驗證步驟一的基因分型檢測結(jié)果。測序結(jié)果表明,AA基因型公牛PCR擴增片段的核苷酸序列如序列表中序列3所示,第32位堿基為A,即CD18基因第2外顯子自5’端第55位堿基為A;AB基因型公牛PCR擴增片段的核苷酸序列中第32位堿基為N,即CD18基因第2外顯子自5’端第55位堿基為N(N表明的是未檢出的堿基,實際上在樣品中該位點存在兩種情況即A和G,測序結(jié)果顯示為N,本發(fā)明亦以N來表示在該位點的堿基,即N表示A和G雜合)。兩種基因型的部分基因測序峰圖見圖5。CD18基因第二外顯子A55G錯義突變即為引起B(yǎng)LAD的堿基突變,上述測序結(jié)果證明步驟一的基因分型結(jié)果正確,本發(fā)明的方法及其專用引物可用于篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛,據(jù)統(tǒng)計,檢測準(zhǔn)確率達(dá)99%以上。
序列表<160>3<210>1<211>20<212>DNA<213>人工序列<220>
<230>
<400>1accttccgga gggccaaggg20<210>2<211>21<212>DNA<213>人工序列<220>
<230>
<400>2agtagctgcc tcaccaatgc g21<210>3<211>162<212>DNA<213>牛(Bos taurus)
<400>3accttccgga gggccaaggg ctaccccatc gacctgtact acctgatgga cctctcctac 60tccatggtgg atgacctcgt caacgtcaag aagctggggg gtgacctgct ccgggccctc 120aatggcatca ccgagtcggg ccgcattggt gaggcagcta ct16權(quán)利要求
1.用于篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的引物,是由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對。
2.一種篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法,是以待測牛的基因組DNA為模板,在權(quán)利要求1所述的引物對的引導(dǎo)下進行PCR擴增,檢測擴增片段自5’端第32位堿基為A、G還是N,擴增片段自5’端第32位堿基為A的種牛為CD18基因正常的優(yōu)良種牛;所述N為A和G的雜合體。
3.根據(jù)權(quán)利要求2所述的篩選方法,其特征在于所述PCR反應(yīng)體系為模板DNA40ng,Taq酶1.5U,20pmol/L上、下游引物各0.5μl,2.5mmol/LdNTPs 2μl,10×PCR緩沖液2.5μl,用重蒸水補充反應(yīng)體系至25μl。
4.根據(jù)權(quán)利要求2或3所述的方法,其特征在于所述PCR反應(yīng)條件為先94℃預(yù)變性5min,然后94℃變性30s,64℃退火30s,72℃延伸30s,共進行35個循環(huán);最后72℃延伸7min。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種篩選CD18基因正常的優(yōu)良種牛的方法及其專用引物。該引物是由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對。該方法是以待測牛的基因組DNA為模板,在由序列表中序列1和序列2的核苷酸序列組成的引物對的引導(dǎo)下進行PCR擴增,檢測擴增片段自5’端第32位堿基為A、G還是N,擴增片段自5’端第32位堿基為A的種牛為CD18基因正常的優(yōu)良種牛;所述N為A和G的雜合體。本發(fā)明的篩選方法操作簡單,快捷,費用低廉,準(zhǔn)確度高(可達(dá)99%),并可實現(xiàn)自動化的直接檢測。此外,可根據(jù)本發(fā)明的方法開發(fā)出相應(yīng)的檢測試劑盒,用于篩選攜帶有利等位基因(AA)的個體,為種牛的育種工作提供便利。
文檔編號C12N15/11GK1970793SQ200610144259
公開日2007年5月30日 申請日期2006年11月30日 優(yōu)先權(quán)日2006年11月30日
發(fā)明者李艷華, 張勝利, 韓廣文, 薛建華, 朱玉林, 劉振君 申請人:北京奶牛中心