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一種在大腸桿菌-鏈霉菌-假單胞菌之間穿梭表達(dá)的bac載體及其構(gòu)建方法

文檔序號(hào):565606閱讀:684來源:國(guó)知局

專利名稱::一種在大腸桿菌-鏈霉菌-假單胞菌之間穿梭表達(dá)的bac載體及其構(gòu)建方法
技術(shù)領(lǐng)域
:本發(fā)明涉及基因工程領(lǐng)域,具體是涉及一個(gè)在大腸桿菌一鏈霉菌一假單胞菌三個(gè)宿主之間穿梭表達(dá)的BAC載體,以及其構(gòu)建方法。
背景技術(shù)
:微生物是臨床使用的藥物的主要來源。1981年至2006年間,F(xiàn)DA批準(zhǔn)的34%的小分子藥物是微生物來源的天然產(chǎn)物或其直接的半合成衍生物;總共155個(gè)抗癌藥物中,47%是天然產(chǎn)物或其直接的半合成衍生物。隨著微生物分子生物學(xué)的迅速發(fā)展,越來越多的微生物基因組被解析,微生物基因組資源的充分利用成為微生物藥物學(xué)研究領(lǐng)域的一個(gè)熱點(diǎn)。在諸多的基因工程手段中,生物合成基因蔟的異源表達(dá)被證明是迄今最為有效的。異源表達(dá)在針對(duì)常規(guī)方法難以或不能培養(yǎng)的生理活性物質(zhì)產(chǎn)生菌的遺傳操作、對(duì)產(chǎn)量極低而通常發(fā)酵難以進(jìn)行的化合物的研究、因結(jié)構(gòu)復(fù)雜而使得化學(xué)合成難以進(jìn)行或因收率極低而不能運(yùn)用于工業(yè)化生產(chǎn)的化合物的研究等等方面,均有著其它方法無可比擬的優(yōu)越性。大腸桿菌(E.coli),鏈霉菌(Streptomyces)和假單胞菌(Pseudomonas)是最為常見的三種生物合成基因蔟異源表達(dá)的宿主菌。三者各有其優(yōu)點(diǎn)。大腸桿菌是最為通用的宿主菌,生長(zhǎng)迅速,克隆和表達(dá)體系完善,目的產(chǎn)物的提取,分離和純化工藝成熟高效。但缺點(diǎn)是不產(chǎn)生次級(jí)代謝產(chǎn)物生物合成所需的多種小分子前體,且由于其基因組的GC。/u含量與鏈霉菌差異較大,表達(dá)鏈霉菌來源的生物合成基因蔟的效率難以預(yù)測(cè)。鏈霉菌是次級(jí)代謝產(chǎn)物來源的微生物藥物的最主要來源,約70%來源于此。模式菌株Streptomyceslividans(變鉛青鏈霉菌)的操作較為簡(jiǎn)易,但菌體倍增時(shí)間長(zhǎng)(約4小時(shí),而大腸桿菌為17分鐘),產(chǎn)物分離純化較大腸桿菌困難。假單胞菌異源表達(dá)系統(tǒng)在近年發(fā)展日趨成熟,假單胞菌已成為首選的宿主菌之一。其優(yōu)點(diǎn)包含假單胞菌與鏈霉菌GC。/。含量以及密碼子的使用頻率相近、有翻譯后修飾(即?;D(zhuǎn)移蛋白的磷酸泛酰乙胺化)、安全無毒(如模式菌株惡臭假單胞菌Pseudomonasputida)、生長(zhǎng)快速(倍增時(shí)間與大腸桿菌相仿)、DNA轉(zhuǎn)化效率高、次級(jí)代謝產(chǎn)物背景清晰。缺點(diǎn)是在提供復(fù)雜的次級(jí)代謝產(chǎn)物所需的多種小分子前體方面不全面。生物合成基因蔟在這三個(gè)宿主間共同表達(dá)可以相互補(bǔ)充,而在尋找未知的,大量的基因蔟的表達(dá)的最優(yōu)化條件方面尤為有效。異源表達(dá)生物合成基因蔟已有許多成功的例子。如與紫杉醇作用模式相同、而藥效更強(qiáng)的抗癌藥物epothilone在其生物合成基因簇的被闡明后,已在鏈霉菌和粘球菌等異源宿主菌中得以大量表達(dá)。這就克服了原始產(chǎn)生菌纖維堆囊菌繁殖時(shí)間長(zhǎng)、產(chǎn)量低、菌種選育難以進(jìn)行等缺點(diǎn)。epothiloneD即將在美國(guó)和歐洲完成m期臨床實(shí)驗(yàn),前景非??春?,有望成為紫杉醇的換代產(chǎn)品。微生物Prochloronsp.產(chǎn)生環(huán)肽類化合物Patellamide和ascidiacylamide,但由于其遺傳操作難以進(jìn)行,克隆化合物的生物合成基因蔟一直不能成功。Long等首先Prochloronsp.容量為50kb的基因組片段克隆至大腸桿菌一鏈霉菌穿梭表達(dá)BAC載體pPAC-S1,構(gòu)建了BAC文庫(kù)。此文庫(kù)在大腸桿菌DH10B中表達(dá)后,分離得到了Patellamide和ascidiacylamide,產(chǎn)量分別可達(dá)77mg/1和94mg/l。相應(yīng)的表達(dá)克隆即包含化合物的生物合成基因蔟,這就克服了原始產(chǎn)生菌遺傳操作難以進(jìn)行的困難。Pe皿等在鏈霉菌StreptomycelividansTK64中表達(dá)了128kb的克隆在BAC載體pStreptoBACV上的daptomycin生物合成基因蔟,d叩tomycin是抗耐甲氧西林的金黃色葡萄球菌,抗萬古霉素的金黃色葡萄球菌等病源菌的環(huán)酯肽類抗生素。這是迄今異源表達(dá)的最大片段。通過發(fā)酵工程等手段,表達(dá)產(chǎn)量達(dá)20-55mg/l。Wenzel等在假單胞菌PseudomonasputidaKT2440中表達(dá)了粘細(xì)菌Stigmatellaaurantiaca來源的Myxochromide生物合成基因蔟,兩天后發(fā)酵產(chǎn)量達(dá)到了40mg/ml,相應(yīng)的原株七天發(fā)酵產(chǎn)量?jī)H為8mg/ml。這就解決了的Myxochromide化合物來源不足而藥效學(xué)研究難以進(jìn)行的問題。由于次級(jí)代謝產(chǎn)物的生物合成基因蔟常常較大(數(shù)十至上百千堿基對(duì)),常規(guī)的克隆載體以及粘粒載體(cosmid),fosmid等由于容量有限(最大可達(dá)45千堿基對(duì))而不能在一個(gè)載體中涵蓋完整的生物合成基因蔟,而生物合成基因蔟分布在兩個(gè)甚至逐個(gè)載體上則牽涉載體的抗性篩選標(biāo)記,載體的不相容性以及DNA之間、蛋白質(zhì)之間相互作用效率可能受影響等問題。BAC(BacterialArtificialChromosome)載體,即細(xì)菌人工染色體載體,由于其具有可克隆大片段(多至350kb)、所克隆的外源片段可在宿主內(nèi)穩(wěn)定存在(不發(fā)生缺失,擴(kuò)增,重組)等特點(diǎn)而成為克隆和異源表達(dá)的首選載體之一。但通常使用的BAC載體為單拷貝(1-2個(gè)分子/細(xì)胞),這樣在進(jìn)行DNA操作以及獲取足夠量的DNA方面有著許多困難。而且,迄今的BAC載體多為在大腸桿菌中進(jìn)行操作,缺乏可在大腸桿菌,鏈霉菌和假單胞菌三個(gè)宿主之間穿梭表達(dá)BAC載體。BAC載體己逐漸成為異源表達(dá)的常規(guī)載體,因此,發(fā)展有效的BAC載體可以大大提高異源表達(dá)的效率,增加高通量篩選的成功率。Sosio等將attP-int-tsr基因盒克隆至pCYPAC2,構(gòu)建了首個(gè)克隆鏈霉菌基因的BAC載體pPAC-Sl和pPAC-S2(基因盒的方向不同)。attP位點(diǎn)可與鏈霉菌基因組上的attB位點(diǎn)進(jìn)行特異性整合,int為催化整合反應(yīng)的整合酶,tsr為硫鏈絲菌素抗性基因,作為在鏈霉菌中的篩選標(biāo)記。不足的是,以蔗糖作為負(fù)篩選標(biāo)記有一定的假陽性(約5%);硫鏈絲菌素難以獲得;且只能在鏈霉菌中進(jìn)行基因表達(dá)。表達(dá)daptomycin的pStreptoBACV的詳細(xì)信息未公布。Martinez等構(gòu)建了大腸桿菌一鏈霉菌一假單胞菌的穿梭表達(dá)載體pMDB13和pMDB14。它們共同的特征是含有int-attP-Am-oriT基因盒,及保留了起始BAC載體pBleoBACl1的氯霉素抗性基因。在假單胞菌中的表達(dá)是通過attP和工程菌P.putidaMBD1基因組上的attB位點(diǎn)整合而實(shí)現(xiàn)。P.putidaMBD1是將含有attB位點(diǎn),卡那霉素抗性基因和較大載體部分的DNA片段整合至P.putidaKT2440的基因組而獲得。pMDB13含一個(gè)pUC的填充片段,pMDB14含有LacZ部分以利于克隆外源基因。利用此載體,他們成功地建立了高通量的克隆,種間基因轉(zhuǎn)移,表達(dá)和篩選的體系。三個(gè)已知化合物(藍(lán)色色素MGl.l,紫色色素Granaticin及具有抗菌活性的2,4-diacetylphloroglucinol)的基因蔟得以表達(dá)。缺點(diǎn)是載體或仍為單拷貝;或沒有明顯的篩選重組克隆的標(biāo)記;且改造后的假單胞菌基因組中帶有較多外源基因,可能影響克隆在載體上的基因的表達(dá)效率。
發(fā)明內(nèi)容本發(fā)明的一個(gè)目的是提供了一個(gè)在大腸桿菌,鏈霉菌和假單胞菌三個(gè)最常見的異源表達(dá)宿主之間進(jìn)行穿梭表達(dá)的BAC載體。所說的BAC載體,其含有pUC18的復(fù)制子、氨芐青霉素抗性基因、接合轉(zhuǎn)移片段oriT、整合位點(diǎn)attP、整合酶基因int、阿普霉素抗性基因、假單胞菌的PP一0423'基因的5'端、假單胞菌的crp基因、BAC載體的redF基因、BAC載體的復(fù)制區(qū)OriS、BAC載體的repA基因、BAC載體的sopA基因、BAC載體的sopB基因、BAC載體的sopC基因、BAC載體的cos位點(diǎn)和BAC載體的loxP位點(diǎn)。pUC18的復(fù)制子(ori),序列如SEQNO.l;氨芐青霉素抗性基因(Ap),序列如SEQNO,2;接合轉(zhuǎn)移片段(oriT),序列如SEQN0.3;整合位點(diǎn)(attP),可整合至鏈霉菌基因組的attB位點(diǎn);序列如SEQN0.4;整合酶基因(int),序列如SEQN0.5;阿普霉素(Am)抗性基因,序列如SEQN0.6;假單胞菌的PP—0423'基因的5'端,序列如SEQN0.7;假單胞菌的crp基因,序列如SEQN0.8;BAC載體的redF基因,序列如SEQN0.9;BAC載體的復(fù)制區(qū)OriS,序列如SEQNO.10;BAC載體的repA基因,序列如SEQNO.l1;BAC載體的sopA基因,序列如SEQN0.12;BAC載體的sopB基因,序列油SEQN0.13;BAC載體的sopC基因,序列如SEQN0.14;BAC載體的cos位點(diǎn),序列如SEQNO.15;BAC載體的IoxP位點(diǎn),序列如SEQN0.16。更具體的是,所說的BAC載體是pESPBAC,其具有SEQNO.17所示的序本發(fā)明的另一個(gè)目的是提供本發(fā)明所說的BAC載體的構(gòu)建方法。詳細(xì)構(gòu)建途如下。首先將pUC18以BamHI酶切后克隆至pECBACl的BamHI位點(diǎn),得到pEPUBAC。將pEPUBAC上BglII2.1kb片段克隆至pIJ2925的BgUI位點(diǎn),得到克隆pBG2。將pBG上的Xbal位點(diǎn)以T4DNA聚合酶和dNTP進(jìn)行補(bǔ)平,這樣即去除了XbaI位點(diǎn),得到克隆pBG2-2。將pBG-2上BglII2.1kb片段克隆至pEPUBACBglII酶切的8.0kb大片段,選取基因方向與pEPUBAC—致的克隆,命名為pEXPUBAC。將來源于pSET152的阿普霉素抗性基因(Am)片段克隆至pKS(-),得到克隆pAM。將來源于P.PuditaKT2440的PP一0423'基因的5'端和crp基因片段至pKS(-),得到克隆pCrp。將Am片段和PP一0423'-crp克隆至pKS(-),得到Am-PP—0423'-crp基因盒的克隆pAC。以PCR的方法擴(kuò)增pAC上的Am-crp-PP一0423'基因基因盒和pSET152上的oriT-attP-int基因盒,將DNA片段以Dpnl酶處理以消除模板DNA后,回收目的片段。將pEXPUBAC轉(zhuǎn)化至含重組酶質(zhì)粒pSC101-gbaA-Tc的大腸桿菌HS996。將兩個(gè)DNA片段共轉(zhuǎn)化至以L-阿拉伯糖誘導(dǎo)重組酶表達(dá)的HS996/pSC101-gbaA-Tc+pEXPUBAC,以阿普霉素和氨芐青霉素做為篩選標(biāo)記,在37°C下進(jìn)行篩選,將獲得的質(zhì)粒在轉(zhuǎn)化E.coliDH10B的感受態(tài)細(xì)胞以純化質(zhì)粒,最終得到目的載體pESPBAC。以一系列的酶切證明后,再設(shè)計(jì)測(cè)序引物對(duì)pESPBAC進(jìn)行克隆片段的測(cè)序,所得結(jié)果與預(yù)期完全一致。本發(fā)明所說的穿梭表達(dá)BAC載體。具有以下特點(diǎn)l.其載體上的oriT片段同時(shí)供轉(zhuǎn)移至假單胞菌和鏈霉菌。attp位點(diǎn)用來整合至鏈霉菌基因組的attB位點(diǎn),而非必須基因crp部分可以通過同源重組而整合至假單胞菌的基因組。這樣,克隆在pESPBAC載體上的DNA片段在大腸桿菌中以游離質(zhì)粒形式存在而進(jìn)行表達(dá),在鏈霉菌和假單胞菌中則為整合至基因組上進(jìn)行表達(dá)。2.保留了BAC載體克隆大片段(可多至350kb)的特點(diǎn)。保留了LacZ,這樣可以使用藍(lán)白斑篩選重組克隆。3.pUC18作為填充片段克隆至BamHI位點(diǎn),使得BAC載體由單拷貝(1-2個(gè)分子/細(xì)胞)變?yōu)楦呖截?500-700個(gè)分子/細(xì)胞),這樣基因操作如常規(guī)克隆載體一樣簡(jiǎn)便易行。填充片段可以通過BamHI切除,所得片段即為克隆大片段BAC載體。4.去除了原載體pECBACl—個(gè)多余的XbaI位點(diǎn),這樣通過位于載體的多克隆位點(diǎn)上克隆片段兩側(cè)的、鏈霉菌基因組上酶切位點(diǎn)較少的限制性內(nèi)切酶EcoRI和XbaI將克隆片段切出,通過電泳來鑒定克隆片段大小。5.阿普霉素作為pESPBAC轉(zhuǎn)化至大腸桿菌一鏈霉菌一假單胞菌三個(gè)宿主的共同篩選標(biāo)記。因此,pESPBAC能在大腸桿菌一鏈霉菌一假單胞菌三個(gè)宿主之間穿梭表達(dá)。本發(fā)明從構(gòu)建基因文庫(kù)最常用的BAC載體之一pECBACl出發(fā),將異源表達(dá)的必需原件加以有效地綜合和優(yōu)化,充分運(yùn)用了常規(guī)的分子生物學(xué)手段以及在基因克隆方面有突出優(yōu)勢(shì)的重組工程等策略,并綜合運(yùn)用常規(guī)的基因克隆和重組工程等手段,成功地構(gòu)建了在大腸桿菌,鏈霉菌和假單胞菌三個(gè)最常見的異源表達(dá)宿主之間進(jìn)行穿梭表達(dá)的BAC載體pESPBAC,為異源表達(dá)生物合成基因蔟以及高通量篩選方面提供了方便。圖1是pESPBAC構(gòu)建的示意2是pESPBAC的結(jié)構(gòu)示意3是pESPBAC酶切的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果1.DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)yHindIII:23.1kb,9.4kb,6.6kb,4.4kb,2.2kb,2.0kb2.pESPBAC/BamHI:11.0kb,2.7kb3.pESPBAC/BglII:11.6kb,2.1kb4.pESPBAC/Hindlll:11.2kb,1.5kb,1.0kb5.pESPBAC/Sphl:9.5kb,3.5kb,0.7kb6.pESPBAC/XhoI:11.2kb,1.5kb,0.7kb7.pESPBAC/Xbal:13.8kb具體實(shí)施方式在本發(fā)明中所使用的術(shù)語,除非有另外說明,一般具有本領(lǐng)域普通技術(shù)人員通常理解的含義。下面結(jié)合具體的實(shí)施例,并參照數(shù)據(jù)進(jìn)一步詳細(xì)地描述本發(fā)明。應(yīng)理解,這些實(shí)施例只是為了舉例說明本發(fā)明,而非以任何方式限制本發(fā)明的范圍。在以下的實(shí)施例中,未詳細(xì)描述的各種過程和方法是本領(lǐng)域中公知的常規(guī)方法。所用試劑的來源、商品名以及有必要列出其組成成分者,均在首次出現(xiàn)時(shí)標(biāo)明,其后所用相同試劑如無特殊說明,均以首次標(biāo)明的內(nèi)容相同。實(shí)施例中所用到的質(zhì)粒,均為已公開載體-pUC18(Norrander,J.,Kempe,T.andMessing,丄(1983)"ConstructionofimprovedMl3vectorsusingoligodeoxynucleotide-directedmutagenesis."Gene26(1):101-106),本實(shí)施例中所用pUC18購(gòu)自NEB公司。pECBACl(Frijters,Aetal.(1997)."ConstructionofabacterialartificialchromosomelibrarycontaininglargeEcoRIandHindIIIgenomicfragmentsoflettuce".TheorApplGenet94(3):390-399.),本實(shí)施例中所用pECBACl來自美國(guó)RichardMichelmore教授。pBluescriptKS(-)(Alting-Mees,M.A.andShort,J.M.(1989)."pBluescriptII:genemappingvectors".NucleicAcidsRes.17(22):9494.),本實(shí)施例中所用pBluescriptKS(-)購(gòu)自Novagen公司。pIJ2925(Janssen,G.R.andBibb,M.J(1993)."DerivativesofpUC18thathaveBglIIsitesflankingamodifiedmultiplecloningsiteandthatretaintheabilitytoidentifyrecombinantclonesbyvisualscreeningofEscherichiacolicolonies".Gene124(1):133-134),本實(shí)施例中所用pIJ2925來自英國(guó)JohnInnesInstitute,MervinBibb教授。pSET152(Bierman,M.,R.Logan,etal.(1992)."PlasmidcloningvectorsfortheconjugaltransferofDNAfromEscherichiacolitoStreptomycesspp."Gene116(1):43-49.),本實(shí)施例中所用SET152來自英國(guó)JohnInnesInstitute,DavidHopwood教授。pSC101-gbaA-Tc(Zhang,Y.,F(xiàn).Buchholz,etal.(1998)."AnewlogicforDNAengineeringusingrecombinationinEscherichiacoli".NatGenet20(2):123-8.);本實(shí)施例中所用pSC101-gbaA-Tc來自德國(guó)DresdenUniversity的YoumingZhang博士。crp基因和PPJ)423'基因的5'端來自假單胞菌PseudomonaspuditaKT2440,為模式菌株,基因組測(cè)序文獻(xiàn)Nelson,Ketal.(2002)."CompletegenomesequenceandcomparativeanalysisofthemetabolicallyversatilePseudomonasputidaKT2440".Environ,Microbio.4(12):799-808;本實(shí)施例中所用PseudomonaspuditaKT2440來自美國(guó)KellerNelson教授。實(shí)施例l:參見圖l,將pUC18,Am,Crp,PP一0423',int,attP,OriT等基因或片段以常規(guī)的分子生物學(xué)手段和重組工程手段克隆至pECBACl,并去除pECBACl上氯霉素抗性基因部分。dECBAC1和dUC18相連獲得髙拷貝的BAC載體pEPUBAC將pECBACl禾QpUC18均以BamHI酶切,乙醇沉淀后,溶于適量雙蒸水,以T4DNA連接酶在16°C下連接過夜,連接液轉(zhuǎn)化E.coliDH10B的感受態(tài)細(xì)胞,轉(zhuǎn)化液涂布至含氯霉素12.5pg/ml,50^g/ml氨芐青霉素,20pg/mlIPTG和40pg/mlXgal的LB固體平板上,370C培養(yǎng)過夜。挑取白色菌落,提取質(zhì)粒,酶切驗(yàn)證,正確的克隆命名為pEPUBAC。dEPUBAC多克隆位點(diǎn)外的Xbal位點(diǎn)的去除采用的策略是先將pEPUBAC上含Xbal位點(diǎn)的2.1kb的BglII片段克隆至pIJ2925(pUC18的衍生載體,其多克隆位點(diǎn)兩側(cè)均為BglII位點(diǎn)),得到pBG2。以Xbal酶切pBG2,乙醇沉淀后,溶于適量雙蒸水,加入T4DNA聚合酶和dNTP,使得Xbal位點(diǎn)的序列TCTAGA變?yōu)門CTAGCTAGA,這樣即去除了Xbal位點(diǎn)。測(cè)序證明序列正確后,將所得克隆命名為pBG2-2。將pBG-2上BglII2.1kb片段克隆至pEPUBACBglII酶切的8.0kb大片段,,酶切驗(yàn)證克隆方向正確后,得到pEXPUBAC。pEXPUBAC只有在多克隆位點(diǎn)上由單一Xbal位點(diǎn)。Am-crp-PP0423'基因盒的構(gòu)建以pSET152為模板,設(shè)計(jì)引物A1:5'-AAAGGATCCGGTTCATGTGCAGCTCCATCAG-3',A2:5'-GGGCTCCAGTCACCATCGACTGGCGAGC-3',分別在5'端和3'端引入BamHI和Pstl位點(diǎn)(以下劃線表示),PCR擴(kuò)增0.9kb的阿普霉素抗性基因(Am)片段,以BamHI和PstI酶切后,克隆至pKS(-)相同位點(diǎn),測(cè)序正確后,得到克隆pAM。提取P.PuditaKT2440的基因組DNA,并以之為模板,設(shè)計(jì)引物Cl:5'-GGGCTGCAGTGTGATGTGCTGCGCGAGTGG-3',C2:5'-GGGGAATTCATGGTTGCCTCCGCCCTACCC-3',分別在5'端和3'端引入Pstl和EcoRI位點(diǎn)(以下劃線表示),PCR擴(kuò)增1.0kb的PP—0423'基因的5'端和crp基因片段,以Pstl和EcoRI酶切后,克隆至pKS(-)相同位點(diǎn),測(cè)序正確后,得到克隆pCrp。將BamHI和Pstl酶切pAM所得的0.9kb阿普霉素抗性基因片段、Pstl和EcoRI酶切pCrp所得的l.Okb的PP—0423'基因的5'端和crp基因片段與BamHI和EcoRI酶切的pKS(-)進(jìn)行三片段連接,轉(zhuǎn)化,篩選質(zhì)粒,酶切正確的克隆命名pAC,pAC即包含Am-crp-PP0423'基因盒。以上50plPCR反應(yīng)體系33pidH205pl10xPCR反應(yīng)緩沖液1.25nllOmMdNTP1.5pl上游引物(終濃度0.75^M)1.5nl下游引物(終濃度0.75pM)2^1模板(質(zhì)粒100ng,基因組DNA200ng)0.5^1pfu聚合酶(5U/|al)PCR反應(yīng)條件95°C變性5分鐘,(95。C45秒,60°C1分鐘,72°C2分鐘),共30個(gè)循環(huán),72°C延伸10分鐘。使用儀器為Bio-rad公司的PTC-200型號(hào)的PCR儀。反應(yīng)結(jié)束后,以加入20mg/ml的溴乙錠(EB)染料的0.7%的瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。含重組酶質(zhì)粒pSC101-gbaA-Tc的大腸桿菌HS996的電轉(zhuǎn)化感受態(tài)的制備將在-7(TC凍存的HS996/pSC101-gba-tet劃線于含10pg/ml四環(huán)素的LB固體平板上,30。C培養(yǎng)20小時(shí)以上。挑取單菌落至10mllOpg/ml四環(huán)素的LB液體培養(yǎng)基,于30°C過夜振蕩培養(yǎng),12,000rpm,4°C離心3分鐘,棄上清,以10%的甘油洗滌沉淀兩次,最后懸浮于100^的10%的甘油中。dEXPUBAC的轉(zhuǎn)化將約lOOngpEPUBAC加至50pl冰上融化的HS996/pSC101-gbaA-Tc的電轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞中,輕彈混勻。將混合液轉(zhuǎn)移至冰上預(yù)冷的lmm電轉(zhuǎn)池中,電擊轉(zhuǎn)化。電轉(zhuǎn)化條件lmm電轉(zhuǎn)池,200Q,1300V,Bio-Rad公司GenePulserIIR電轉(zhuǎn)化儀。加lmlLB液體培養(yǎng)基至電轉(zhuǎn)池,吹打混勻,將溶液轉(zhuǎn)移至一個(gè)無菌的1.5mleppendorf管中,37°C振蕩培養(yǎng)60分鐘后,轉(zhuǎn)化液涂布與含100pg/ml氨芐青霉素和10pg/ml四環(huán)素的LB抗性平板上,30°C培養(yǎng)20小時(shí)以上。所獲菌株為HS996/pSC101隱gbaA-Tc+pEXPUBAC。HS996/pSC101-gbaA-Tc+pEXPUBAC電轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞的制備將在-7(TC凍存的菌株劃線于含100pg/ml氨芐青霉素和10pg/ml四環(huán)素的LB抗性平板,30°C培養(yǎng)20小時(shí)以上。挑單菌落至2ml含100pg/ml氨芐青霉素和10pg/ml四環(huán)素的LB液體培養(yǎng)基,于30°C振蕩過夜培養(yǎng),按1/50的體積轉(zhuǎn)接至20ml同樣的培養(yǎng)基,30"C振蕩培養(yǎng),至OD260為0.2時(shí),加入終濃度為0.15%的L-阿拉伯糖,37°C振蕩培養(yǎng)至OD260為0.4時(shí),12,000rpm,4°C離心3分鐘,棄上清,以10%的甘油洗滌沉淀兩次,最終懸浮于200^110%的甘油中。重組工程法構(gòu)建目的BAC載體本發(fā)明釆用重組工程法中的"三片段克隆法"來對(duì)靶載體進(jìn)行改造。兩個(gè)片段同時(shí)克隆至靶載體并去除載體相應(yīng)部位的"三片段克隆"的策略是上下游兩個(gè)片段分別在其5'和3'引入與靶載體的同源臂("同源臂"即序列相同的一段寡核苷酸),上游片段的3'端和下游片段的5'端之間也引入同源臂,同源臂是通過PCR引入的。在大腸桿菌體內(nèi),L-阿拉伯糖誘導(dǎo)重組酶的表達(dá),重組酶催化三個(gè)同源臂之間的的DNA重組。經(jīng)過篩選,即可得到目的克隆。本發(fā)明中所設(shè)計(jì)的PCR引物如下。SP1:5'隱77^770GC7CG7^GC4爿CCJCGa;r7T^4GCCC4CC^47^C7UCC7T^4CCGGCCAGCCTCGCAGAGCAGG-3',前50個(gè)堿基(斜體)為與pEXPUBAC氯霉素抗性基因3'端,3397nt-3346nt序列相同的同源臂,后面為擴(kuò)增pSET152oriT部位的序列。SP2:5'-CL4CGCCGC7^CGrC7TCCGrGCCGrCCTGGGCGrCG7UrrCG7UGrCGrC-3',此51個(gè)堿基(斜體)為pSET152整合酶(int)3'端的序列。SP3:5'-a4Ca4Ca4Ca^a4Ca4CGCCC4G04CGGC4CGa4^a4CGL4GCGGCG7^GGGTTCATGTGCAGCTCCATCAG-3',前51個(gè)堿基(斜體)為SP2的反向互補(bǔ)序列,后面為擴(kuò)增Am-crp-PP0423'基因盒5'的序列。SP4:5'-CCGGGC777T7T04Grarca4G^mTC4GGv4GC7X4GGX4GCL14ATGGTTGCCTCCGCCCTACCC-3',前50個(gè)堿基(斜體)為與pEXPUBACredF和氯霉素抗性基因5'端之間,4107nt-4156nt序列相同的同源臂,后面為擴(kuò)增Am-crp-PP0423'基因盒3'端的序列。以pSET152為模板,引物SP1和SP2擴(kuò)增2.4kb的oriT-attp-int基因盒,以pAC為模板,引物SP3和SP4擴(kuò)增2.6kb的Am-crp-PP0423'基因盒。瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,在溶液中加入1/10倍體積的pH5.2的醋酸鈉溶液和2.5倍體積的4。C預(yù)冷的無水乙醇,混勻沉淀,離心去上清,室溫干燥后,溶于雙蒸水。分別加入20U的Dpnl酶,37。C,處理4小時(shí),以消除模板DNA后,膠回收目的片段。最后將溶于DNA10mMpH8.0的Tris.Cl(三羥甲基氨基甲烷,以濃鹽酸調(diào)節(jié)pH至8.0),OD260測(cè)定DNA濃度,調(diào)節(jié)濃度為300ng/pl。將0.3ug的oriT-attp-int基因盒DNA片段和0.3ug/的Am-crp-PP0423'基因盒DNA片段共轉(zhuǎn)化至L-阿拉伯糖誘導(dǎo)重組酶表達(dá)HS996/pSC101-gbaA-Tc+pEXPUBAC。在共同培養(yǎng)基中加入50pg/ml阿普霉素和100pg/ml氨芐青霉素加以篩選,所得的質(zhì)粒再次轉(zhuǎn)化E.coliDH10B的感受態(tài)細(xì)胞加以純化,最終得到目的載體pESPBAC,其質(zhì)粒圖譜見圖2,酶切驗(yàn)證的結(jié)果見圖3。pESPBAC全長(zhǎng)13791bp,其序列如SEQN0.17所示,其中792-1380'.pUC18的復(fù)制子(ori);1551-2411:氨芐青霉素抗性基因(Ap);3447-3558:接合轉(zhuǎn)移片段(0riT);3906-3944:整合位點(diǎn)(attP),可整合至鏈霉菌基因組的attB位點(diǎn);3961-5802:整合酶基因(int);5923-6699:阿普霉素(Am)抗性基因;6705-7065:假單胞菌的PP—0423'基因的5'端;7062-7706:假單胞菌的crp基因;7795-8271:BAC載體的redF基因;8650-8716:BAC載體的復(fù)制區(qū)OriS;9049-9804:BAC載體的repA基因;10392-11558:BAC載體的sopA基因;11558-12592:BAC載體的sopB基因;12602-13075:BAC載體的sopC基因;13334-13733:BAC載體的cos位點(diǎn);13751-13784:BAC載體的loxP位點(diǎn)。重組工程法所克隆片段的測(cè)序驗(yàn)證設(shè)計(jì)測(cè)序引物S1-S5,對(duì)克隆片段進(jìn)行測(cè)序,結(jié)果證明與預(yù)期完全一致。S1-S5的序列如下。SI:5'AATTTCTGCCATTCATCCGCT-3'S2:5'-CGGGCATTTCAGCGAAGCGCC-3'S3:5'-GATTGCGGACCGATCATCGAG-3'S4:5'-GCGTAGGGTTCATGTGCAGCT-3'S5:5'-TGTGATGTGCTGCGCGAGTGG-3'。<table>tablesee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ài)細(xì)胞以純化質(zhì)粒,最終得到目的載體pESPBAC。全文摘要本發(fā)明涉及在大腸桿菌-鏈霉菌-假單胞菌之間穿梭表達(dá)的BAC載體及其構(gòu)建方法。所說的BAC載體,其含有pUC18的復(fù)制子,氨芐青霉素抗性基因,接合轉(zhuǎn)移片段oriT,attP位點(diǎn),整合酶基因int,Am抗性基因,假單胞菌的PP_0423′基因的5′端,假單胞菌的crp基因,BAC載體的redF基因、復(fù)制區(qū)OriS、repA基因、sopA基因、sopB基因、sopC基因、cos位點(diǎn)和loxP位點(diǎn)。本發(fā)明是從pECBAC1出發(fā),將異源表達(dá)的必需原件加以有效綜合和優(yōu)化,并運(yùn)用基因克隆和重組工程等手段,成功構(gòu)建了穿梭表達(dá)BAC載體,為異源表達(dá)生物合成基因蔟以及高通量篩選方面提供了方便。文檔編號(hào)C12N15/63GK101302531SQ200810122910公開日2008年11月12日申請(qǐng)日期2008年6月20日優(yōu)先權(quán)日2008年6月20日發(fā)明者杰宋,尚廣東,黃慧穎申請(qǐng)人:南京師范大學(xué)
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