專(zhuān)利名稱(chēng):一種組織工程化肺臟組織及其構(gòu)建方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明屬于組織工程與再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域,特別涉及一種組織工程化肺臟組織及其構(gòu)
建方法。
背景技術(shù):
組織工程學(xué)是20世紀(jì)80年代末發(fā)展起來(lái)的一 門(mén)新興交叉學(xué)科,近年來(lái),隨著生命 科學(xué)、材料科學(xué)和工程科學(xué)的發(fā)展,科研人員相繼在骨骼、軟骨、皮膚、乳腺以及神經(jīng)等多種 組織、器官體外再造研究方面取得突破性進(jìn)展,其中,一些組織工程產(chǎn)品如軟骨、皮膚已實(shí) 現(xiàn)商品化。由于肺臟本身具有復(fù)雜的組織結(jié)構(gòu),再加上組織工程化肺臟的研究起步較晚, 目前在體外構(gòu)建的組織工程化肺臟組織還遠(yuǎn)不能實(shí)現(xiàn)商品化,但是在體外構(gòu)建組織工程化 肺臟組織是研究多種細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子與肺臟組織關(guān)系的基礎(chǔ),也是動(dòng)物模型建立、肺臟 疾病機(jī)理研究或治療肺臟疾病藥物篩選等方面的基礎(chǔ)。Mondrinos. M. J等(Mondrinos, M.J.等,Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2007, 293, L639)應(yīng)用體外構(gòu)建的肺臟組 織研究成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子FGFIO、 FGF7和FGF2的作用機(jī)制,AndradeCF等(Andrade CF 等,Am JPhysiol Lung Cell Mol Physiol 2007, 292 :L510_L518)應(yīng)用體外構(gòu)建的三維組 織進(jìn)行體內(nèi)移植。總之,構(gòu)建的組織工程化肺臟組織有利于尋找肺臟疾病方面新的診斷技 術(shù)和治療藥物。 組織工程需要使用種子細(xì)胞來(lái)生成并維持組織特異性生物功能,同時(shí)使用合成的 或天然的基質(zhì)材料支持和引導(dǎo)組織發(fā)育。肺臟的組織學(xué)結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜,若實(shí)現(xiàn)工程化組織 模擬正常組織有較大的困難,其中支架材料的選擇尤為重要。 多種材料單獨(dú)作為支架進(jìn)行肺臟的研究已有報(bào)道。Patty Chen (Chen P等,Tissue engineering, 2005, 11 :9-10) 、 Mondrinos, M. J (Mondrinos, M. J.等,Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2007, 293, L639) 、 Faraj KA (Faraj KA等,Tissue Eng. 2007, 13 (10): 2387-94) 、 Tome i AA(Tomei AA等,BiotechnolBioeng, 2009, 103 (1) :217-25)等人先后 將膠原應(yīng)用到肺臟組織工程研究中。Blau, H(Blau, H等,Cell Physiol, 1988, 136, 203)、 Mondrinos. M J (Mondrinos. M J等,Ti ssue Eng. ,2006, 12, 717 ;Tissue Eng Part A,2008, 14(3) :361-8)還將Matrigel基質(zhì)膠也引入到肺臟組織的工程化構(gòu)建中。在其它材料方面, Mondrinos. M. J (Mondrinos. MJ等,Tissue Eng. , 2006, 12, 717)也采用PLLA和PLGA作為 支架材料體外構(gòu)建三維肺臟組織,也有研究者(Douglas, W.H.等,In Vitro, 1976 12,373; Am. Rev. Respir. Dis. ,1976,113,17 ;TCA Manual,1978,4,749 ;In Vitro,1980,16,306)采 用膠原海綿球(Gelfoam)進(jìn)行研究。 盡管作為肺臟組織工程的支架材料已有許多報(bào)道,但是這些材料都不能滿(mǎn)足肺臟 組織的囊性結(jié)構(gòu),對(duì)肺泡樣結(jié)構(gòu)的形成不能在一定程度上進(jìn)行控制。 微囊技術(shù)(Encapsulation)是指用半透膜包被生物活性物質(zhì)以形成微囊的技術(shù), 形成的微囊可以阻遏免疫細(xì)胞以及大分子抗體通過(guò)半透膜,同時(shí)允許氧氣、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和一 些具有生物活性的小分子物質(zhì)自由出入。微囊的物理參數(shù)如大小、膜通透性、機(jī)械強(qiáng)度等是可控的。微囊目前主要用于微囊化細(xì)胞技術(shù),主要應(yīng)用在如糖尿病治療,嗜鉻細(xì)胞的鎮(zhèn)痛的 治療方面;微囊化細(xì)胞技術(shù)是目前細(xì)胞治療、組織和器官替代治療的主要方法之一。然而, 將微囊應(yīng)用于肺臟組織工程,尤其是將海藻酸鈉-多聚賴(lài)氨酸-海藻酸鈉(APA)微囊/海 藻酸鋇_多聚賴(lài)氨酸_海藻酸鈉(BPA)微囊作為組織工程化肺臟的支架尚未見(jiàn)報(bào)道。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于提供一種組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法。 本發(fā)明的目的還在于提供一種利用上述方法獲得的組織工程化肺臟組織,該方法 構(gòu)建的組織工程化肺臟組織具有肺泡樣結(jié)構(gòu),肺泡樣結(jié)構(gòu)由APA或BPA微囊提供。
—種組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,按照如下操作步驟進(jìn)行
(1)制備肺細(xì)胞懸液 從肺臟組織中分離或誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞獲得肺臟細(xì)胞,然后用2XH-DMEM培養(yǎng)液重 懸細(xì)胞制備細(xì)胞密度為5X 105 5X 106/mL的肺細(xì)胞懸液;
(2)微囊的制備 將1. 5-2. 0%海藻酸鈉溶液,在4-9kV/cm的電場(chǎng)作用下,通過(guò)靜電微囊制作儀以 5-35mL/h的速度推入到1. l-1.5X的氯化鈣/2X的氯化鋇溶液中,反應(yīng)8-12min,形成海 藻酸鈣/鋇膠珠,然后依次用0. 55%氯化鈣液、0. 28%氯化鈣液、生理鹽水、0. 1% (2-環(huán)己 烷)-l-乙磺酸(CHES)和1. 1-1. 5%的氯化|丐/2%氯化鋇溶液沖洗;沖洗后加入0. 05%多 聚賴(lài)氨酸(PLL),反應(yīng)6min后依次用0. 1 % (2-環(huán)己烷)-1_乙磺酸(CHES)、1. 1-1. 5%的 氯化鈣/2%氯化鋇溶液和生理鹽水沖洗;再加入0. 05%的海藻酸鈉溶液反應(yīng)4min后用生 理鹽水沖洗;再加入1. 5%檸檬酸鈉溶液反應(yīng)2min后用生理鹽水沖洗3_5遍,得到海藻酸 鈉_多聚賴(lài)氨酸_海藻酸鈉(APA)微囊/海藻酸鋇-多聚賴(lài)氨酸_海藻酸鈉(BPA)微囊;
(3)細(xì)胞與支架材料的復(fù)合及細(xì)胞_支架復(fù)合物的培養(yǎng) 將步驟(1)制得的細(xì)胞懸液與步驟(2)制得的微囊混合,再添加濃度為 1. 5-2. 5mg/mL的膠原與Matrigel基質(zhì)膠,混勻后,調(diào)節(jié)pH值至7. 2_7. 4,其中細(xì)胞懸液、膠 原和Matr igel基質(zhì)膠的體積比為5 : (4_3) : (2-1);然后將獲得的細(xì)胞-支架復(fù)合物 加至由細(xì)胞培養(yǎng)板制得的靜態(tài)拉伸模具中,置于5% C02、37t:的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)30min,待細(xì) 胞-支架復(fù)合物凝膠化后再加入含有10X胎牛血清的H-匿EM培養(yǎng)基,培養(yǎng)3-14天,即得到 組織工程化肺臟組織。 步驟(3)所用APA和BPA微囊的直徑為100-400 y m。
所述肺臟組織來(lái)源于小鼠胚胎期肺臟。
所述胚胎干細(xì)胞來(lái)源于小鼠。
所述膠原為I型鼠尾膠原。 所述細(xì)胞培養(yǎng)板制得的靜態(tài)拉伸模具是將細(xì)胞培養(yǎng)板的每孔注入lml的濃度為 2%的無(wú)菌瓊脂,瓊脂凝固后,均勻插入4根長(zhǎng)約lcm的無(wú)菌玻璃毛吸管,紫外燈照射30分 鐘,獲得靜態(tài)拉伸模具。 —種利用上述方法獲得的組織工程化肺臟組織。 本發(fā)明的有益效果本發(fā)明采用APA或BPA微囊,聯(lián)合膠原、Matrigel基質(zhì)膠作為 組織工程化肺臟的支架,同現(xiàn)有用于肺臟的支架材料相比,該支架體系能夠有效地促使肺泡樣結(jié)構(gòu)的形成,能夠?qū)崿F(xiàn)氣體以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的交換,其中,APA或BPA微囊為肺泡樣結(jié)構(gòu) 的基本材料,液態(tài)膠原能夠?yàn)榧?xì)胞生長(zhǎng)提供三維的生長(zhǎng)環(huán)境,Matrigel基質(zhì)膠為體外構(gòu)建 三維的組織工程化肺臟組織提供各種必需的生長(zhǎng)因子。本方法操作簡(jiǎn)單、可實(shí)施性強(qiáng),能夠 較好地控制肺泡樣結(jié)構(gòu)的形成,對(duì)推進(jìn)組織工程化肺臟發(fā)展具有重要意義。
圖1.小鼠胎肺細(xì)胞組織學(xué)檢測(cè)和免疫組織化學(xué)檢測(cè)結(jié)果圖; a. HE染色,X 20 ;b.免疫組織化學(xué)Vimentin, X40 ;c.免疫組織化學(xué)SpC, X40 圖2. APA空微囊圖X 50 ; 圖3.肺臟組織片層宏觀觀察圖; a.培養(yǎng)10h后肺臟組織生長(zhǎng)情況圖;b.培養(yǎng)7d后肺臟組織生長(zhǎng)情況圖 圖4.本發(fā)明肺臟組織片層組織學(xué)檢測(cè)(HE染色)結(jié)果圖;X 10 圖5.本發(fā)明肺臟組織片層免疫組織化學(xué)檢測(cè)結(jié)果圖。 a. Vimentin, X 10 ;b. SpC, X 10
具體實(shí)施例方式
通過(guò)以下實(shí)施例對(duì)本發(fā)明做詳細(xì)描述,但是以下實(shí)施例僅僅是作為例證,并不 對(duì)本發(fā)明構(gòu)成任何限制。以下實(shí)施例中未詳細(xì)說(shuō)明的部分請(qǐng)參閱RobertLanza, Robert Langer and Joseph Vacanti編寫(xiě)的《Pr inciples of TissueEngineering》第三片反禾口 Anthony Atala, Robert P丄anza編寫(xiě)的《Methods of tissueengineering》(2006)。
本發(fā)明構(gòu)建方法中使用的細(xì)胞分離、培養(yǎng)及組織鑒定所需試劑
1) H-DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基H-DMEM干粉培養(yǎng)基一袋,3. 7g NaHC03, 2. 383gHEPES, 10萬(wàn) 單位青霉素,10萬(wàn)單位鏈霉素,溶解于lOOOml超純水中,調(diào)節(jié)pH值為7. 2-7. 4,經(jīng)0. 22 y m 微孔濾膜過(guò)濾除菌,4t:保存。使用時(shí)添加10%胎牛血清(FBS),用于肺臟細(xì)胞、組織工程化 肺臟組織及滋養(yǎng)層細(xì)胞的培養(yǎng)。 2)濃縮培養(yǎng)基(2 XH-DMEM) :H-DMEM干粉培養(yǎng)基 一 袋,3. 7g NaHC03, 2. 383g HEPES, 10萬(wàn)單位青霉素,10萬(wàn)單位鏈霉素,溶解于500ml超純水中,調(diào)節(jié)pH值為7. 2_7. 4, 經(jīng)0. 22 ii m微孔濾膜過(guò)濾除菌,fC保存。 3)胚月臺(tái)干誘導(dǎo)培養(yǎng)基商品化液體培養(yǎng)基(knock-out serum r印lacement, KSR) 1000ml,添加103U/ml白血病抑制因子,50 ii M的PD98059。 4)胚胎干細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)基H-DMEM干粉培養(yǎng)基一袋,3. 7g NaHC03, 2. 383g HEPES, IO萬(wàn)單位青霉素,IO萬(wàn)單位鏈霉素,O. lmmol/L P -巰基乙醇,1 %非必需氨基酸,103U/ml白 血病抑制因子,溶解于1000ml超純水中,調(diào)節(jié)pH值為7. 2-7. 4,經(jīng)0. 22 P m微孔濾膜過(guò)濾除 菌,4t:保存。使用時(shí)添加15% FBS,用于胚胎干細(xì)胞及組織工程化肺臟組織的培養(yǎng)。
5) PBS :稱(chēng)取8g NaCl,O. 2g KC1,3. 491g Na2HP04 12H20,0. 2g KH2P04,溶解于 lOOOml超純水中,調(diào)節(jié)pH值為7. 2-7. 4, 12rC高壓蒸汽滅菌20min,4t:保存。
6) 0. 25 %胰蛋白酶-EDTA消化液稱(chēng)取0. 25g胰蛋白酶,0. 04gEDTA,充分溶解于 100ml PBS中,調(diào)節(jié)pH值為7. 2-7. 4,經(jīng)0. 22 y m微孔濾膜過(guò)濾除菌,分裝后于-20。C保存。
7)4%多聚甲醛固定液加熱O. lM的PB溶液至沸騰,加入20g多聚甲醛,攪拌溶解,調(diào)節(jié)pH值為7. 2-7. 4,過(guò)濾除雜質(zhì),fC保存。
制備微囊所需試劑 1)海藻酸鈉溶液稱(chēng)取1. 3g, 1. 5g, 1. 8g和2. 0g海藻酸鈉粉末分別溶于lOOmL
D-Hank' s溶液中,充分?jǐn)嚢?h后,采用抽濾法分別通過(guò)0. 45 y m和0. 22 y m的濾膜除菌,
即配置成1.3%,1.5%,1.8%和2.0%的海藻酸鈉溶液,用于液滴的形成。 2) 1. 5% CaCl2溶液和2% BaCl2溶液分別稱(chēng)取1. 5g的CaCl2和2g的BaCl2溶于
生理鹽水中,待充分溶解后,經(jīng)0. 22 ii m濾膜除菌,即配置成1.5% CaCl2和2% BaCl2溶液,
作為微囊形成第一步的固化液,使海藻酸鈉液滴形成海藻酸鈣和海藻酸鋇膠珠。 3)多聚賴(lài)氨酸溶液(PLL):稱(chēng)取O. Olg,O. 03g,0. 05g,0. 07g和0. 10gPLL溶于
100mlD-Hank' s溶液中,待充分溶解后經(jīng)0. 22 y m濾膜除菌,即配置成0. 01 %,0. 03 %,
0. 05%,0. 07%和0. 1%的多聚賴(lài)氨酸溶液,用于三層微囊結(jié)構(gòu)的第二層的形成。 4)0. 05%的海藻酸鈉溶液稱(chēng)取0. 05g海藻酸鈉粉末溶于100mLD-Hank' s溶液
中,待充分溶解后經(jīng)O. 22ym濾膜除菌,即配置成的海藻酸鈉溶液,用于三層微囊結(jié)構(gòu)的第
三層的形成。 5) 1. 5%檸檬酸鈉溶液稱(chēng)取1. 47g檸檬酸鈉粉末溶于100mL D-Hank' s溶液中, 待充分溶解后經(jīng)O. 22ym濾膜除菌,即配置成1.5%的檸檬酸鈉溶液,用于微囊制備時(shí)核芯 的液化。 6) CHES溶液稱(chēng)取lg CHES溶于1000ml三蒸水中,待充分溶解后經(jīng)0. 22 y m濾膜 除菌,即配置成0. 1%的CHES溶液,作為微囊制備過(guò)程中的洗液。 7)0. 28%、0. 55%0&(:12溶液分別稱(chēng)取O. 28g和0. 55g CaCl2溶于生理鹽水中,待 充分溶解后,經(jīng)0. 22 ii m濾膜過(guò)濾除菌,即配置成0. 28%和0. 55% CaCl2溶液,作為微囊制 備過(guò)程中的洗液。 實(shí)施例1以小鼠胎肺細(xì)胞為種子細(xì)胞構(gòu)建組織工程化肺臟組織
(1)小鼠胎肺細(xì)胞的分離、培養(yǎng)和鑒定 胎肺來(lái)源于胚胎期為18天的昆明白小鼠的胎鼠。按常規(guī)方法分離胎肺,然后在 1XPBS中沖洗,剪碎并于室溫下,在0. 25X胰蛋白酶-EDTA消化液中消化20-25分鐘。然 后加入2倍體積的含10% FBS的H-匿EM培養(yǎng)基終止酶活性,接著用吸管吹打研磨。組織 勻漿用70 ii m的尼龍濾網(wǎng)過(guò)濾,800rpm離心5分鐘。細(xì)胞沉淀物用900 y 1的蒸餾水重懸 30-45秒,低滲除去紅細(xì)胞,然后添加100 iil的IOXPBS。細(xì)胞再次離心沉淀,用一定體積 的含10% FBS的H-DMEM培養(yǎng)基重懸,并用血細(xì)胞計(jì)數(shù)器計(jì)數(shù);用組織學(xué)HE染色表明細(xì)胞 活性良好,如圖1 (a)所示,通過(guò)免疫組織化學(xué)方法鑒定Vimentin和SpC均有陽(yáng)性表達(dá),見(jiàn) 圖1 (b)和(c)。 用2XH-DMEM重懸再次沉淀后的小鼠胎肺細(xì)胞,制得細(xì)胞密度為5X 106/mL的細(xì) 胞懸液。 (2) APA/BPA微囊的制備 將2. 0%海藻酸鈉溶液,在6kV/cm的電場(chǎng)作用下,通過(guò)靜電微囊制作儀以15ml/h 的速度勻速推入1.1%的氯化鈣/2%的氯化鋇溶液中,反應(yīng)10min,形成海藻酸鈣/鋇膠珠。 依次用0. 55%氯化鈣溶液、0. 28%氯化鈣溶液、生理鹽水、0. 1% CHES和1. 1%的氯化鈣溶 液沖洗;再加入0. 05% PLL反應(yīng)6min,依次用0. 1 % CHES、 1. 1 %的氯化鈣/2%的氯化鋇溶液和生理鹽水沖洗;再加入O. 05X的海藻酸鈉溶液反應(yīng)4min,生理鹽水沖洗;再加入1. 5% 檸檬酸鈉溶液反應(yīng)2min,生理鹽水沖洗3遍,再加入生理鹽水,置fC保存待用。通過(guò)上述 方法制得的微囊粒徑為200-300 ym,制得的APA空微囊表面光滑、大小均一,見(jiàn)圖2。
(3) I型液態(tài)鼠尾膠原的制備 從大鼠尾根部切斷鼠尾,置于75%的酒精中浸泡30min ;無(wú)菌條件下取出尾腱;剪 碎,浸入O. 1%的醋酸中;置于4t:冰箱;并用磁力攪拌機(jī)間斷進(jìn)行攪拌。48h后,4t:離心, 收集上清即得膠原溶液。制備的膠原溶液濃度約為2. Omg/ml。
(4)靜態(tài)拉伸模具的制備 將12孔細(xì)胞培養(yǎng)板的每孔注入lml的濃度為2%的無(wú)菌瓊脂,瓊脂凝固后,均勻插 入4根長(zhǎng)約lcm的無(wú)菌玻璃毛吸管,紫外燈照射30分鐘,獲得靜態(tài)拉伸模具。
(5)細(xì)胞與支架材料的復(fù)合及其復(fù)合物的培養(yǎng) 將0. 5ml步驟(1)制得的細(xì)胞懸液與步驟(2)制得的0. 5ml APA微囊(粒徑為 200-300 ii m)混合,再添加0. 4ml液態(tài)I型鼠尾膠原(2mg/ml)和100 y 1Matrigel基質(zhì)膠, 混勻,使用0. lmol/LNaOH調(diào)pH值為7. 2_7. 4,得到細(xì)胞與支架的復(fù)合物;將細(xì)胞與支架的 復(fù)合物加入至上述12孔靜態(tài)拉伸模具中,每孔注入復(fù)合物1. 5ml,以上操作在冰盒上進(jìn)行。 構(gòu)建的組織置于5% C02、37t:培養(yǎng)箱中培養(yǎng),30min后,待細(xì)胞-支架復(fù)合物凝固,加入含 10% FBS的H-DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)3_14天,從圖3 (a)和(b)可見(jiàn)其生長(zhǎng)情況,在靜態(tài)拉伸模 具中可以構(gòu)建形成肺臟組織,并且能夠較好地生長(zhǎng)。 實(shí)施例2以誘導(dǎo)小鼠胚胎干細(xì)胞獲得的肺臟祖細(xì)胞為種子細(xì)胞構(gòu)建組織工程化 肺臟組織 (1)小鼠胚胎干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及誘導(dǎo)分化肺臟祖細(xì)胞 (a)滋養(yǎng)層細(xì)胞,即原代小鼠胚胎成纖維細(xì)胞(MEF)的分離與培養(yǎng)昆明白孕小鼠 處死,75X灑精浸泡消毒30s,取出子宮,放在盛有PBS的100-mm組織培養(yǎng)皿中,取出胚胎, 去胚胎外組織,PBS沖洗去血。用無(wú)菌的鑷子去胚胎頭和內(nèi)臟,將胚胎轉(zhuǎn)移到60-mm組織培 養(yǎng)皿中,剪成lmm3左右的組織塊,然后轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)瓶中,再加PBS清洗。倒掉PBS,加入適量 胰酶溶液消化,反復(fù)吹打振蕩后,靜置片刻,將上清轉(zhuǎn)入血清中終止消化。重復(fù)上述步驟,直 至組織塊消化完全。收集所有消化上清,200日細(xì)胞篩網(wǎng)過(guò)濾后,移入離心管中1000rpm離 心5min。收集細(xì)胞,H-DMEM培養(yǎng)基洗一次后重懸,血細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),以5X 105個(gè)/ml細(xì) 胞密度接種于100-mm組織培養(yǎng)皿中,24小時(shí)后更換新鮮的含10% FBS的H-DMEM培養(yǎng)基。
(b)MEF滋養(yǎng)層的制備MEF傳至二代并等細(xì)胞長(zhǎng)滿(mǎn)后,吸掉H-DMEM培養(yǎng)基,加入絲 裂霉素C,37t:孵育3h。孵育的同時(shí)準(zhǔn)備明膠處理的60-mm組織培養(yǎng)皿,明膠溶液覆蓋空的 組織培養(yǎng)皿底,室溫放置15min后,倒掉明膠溶液,晾干平放待用。上述絲裂霉素C處理的 MEF去掉H-DMEM培養(yǎng)基,PBS沖洗三次,完全去除絲裂霉素C,加入適量胰酶溶液消化,血清 終止消化后吹打分散細(xì)胞,轉(zhuǎn)移至離心管中,1000rpm離心5min。收集細(xì)胞,重懸于含10% FBS的H-DMEM培養(yǎng)基,細(xì)胞計(jì)數(shù),以8X 105個(gè)/皿的細(xì)胞密度接種于明膠包被的60_mm組 織培養(yǎng)皿中。 (c)小鼠胚胎干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)參考M. J. Evans (M. J. Evans等,Nature, 1981, 292 :154-156)從C57BL/6XDBA/2小鼠體內(nèi)分離胚泡,用鏈霉蛋白酶處理擴(kuò)增的胚泡,去除 透明帶,將無(wú)透明帶的胚泡轉(zhuǎn)移到上述MEF滋養(yǎng)層上,用胚胎干誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng),5天后,將衍生物機(jī)械分離成碎片,繼續(xù)轉(zhuǎn)移到包被有滋養(yǎng)層細(xì)胞的96孔培養(yǎng)板中培養(yǎng)。所得細(xì)胞即 為小鼠胚胎干細(xì)胞(ESC)。 吸掉MEF滋養(yǎng)層中的H-DMEM培養(yǎng)基,將上述分離的ESC加入5ml胚胎干細(xì)胞生長(zhǎng) 培養(yǎng)基重懸。ESC的接種密度通常是2X 106/60-mm培養(yǎng)皿(接種有滋養(yǎng)層細(xì)胞)。細(xì)胞生 長(zhǎng)兩天后即需傳代。 (d)小鼠胚胎干細(xì)胞誘導(dǎo)分化肺臟祖細(xì)胞收集未分化ESC,離心,在明膠包被的 培養(yǎng)皿中差速貼壁1小時(shí)。吸取細(xì)胞懸液,將細(xì)胞懸液置于細(xì)菌培養(yǎng)皿中,即將一個(gè)T25瓶 的ESC接種于一個(gè)90mm培養(yǎng)皿中。于懸浮培養(yǎng)第2. 5天,開(kāi)始加入100ng/ml activinA, 繼續(xù)培養(yǎng)4天。于懸浮培養(yǎng)第6. 5天,更換為胚胎干細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)基+10% KOSR(KnockOut Serum R印lacement),繼續(xù)培養(yǎng)3. 5天,收集擬胚體,后全部被置于涂有明膠的6孔板中(每 個(gè)90mm培養(yǎng)皿可置于兩個(gè)6孔板),加入胚胎干細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)基+10 % KOSR,用于進(jìn)一步 貼壁培養(yǎng)分化。貼壁培養(yǎng)10天后,將培養(yǎng)基更換為小氣道基礎(chǔ)培養(yǎng)基(SABM)中分化培養(yǎng) 15-25天。得到的祖細(xì)胞用2XH-DMEM重懸,制得細(xì)胞密度為5X 106/ml的細(xì)胞懸液。
(2)細(xì)胞與支架材料的復(fù)合及其復(fù)合物的培養(yǎng) 將0. 5ml本實(shí)施例步驟(1)制得的細(xì)胞懸液與實(shí)施例1步驟(2)制得的0. 5mlBPA 微囊(粒徑為200-300 ii m)混合,再添加實(shí)施例1制得的液態(tài)I型鼠尾膠原(2mg/ml) 0. 3ml 和200iU Matrigel基質(zhì)膠,混勻,使用O. lmol/LNaOH調(diào)pH值為7. 2-7. 4,得到細(xì)胞與支架 的復(fù)合物;將細(xì)胞與支架的復(fù)合物加入至實(shí)施例1制得的12孔靜態(tài)拉伸模具中,每孔注入 復(fù)合物1. 5ml,以上操作在冰盒上進(jìn)行。構(gòu)建的組織置于5% C02、37t:培養(yǎng)箱中培養(yǎng),30min 后,待細(xì)胞_支架復(fù)合物凝固,加入含10% FBS的H-DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)3_14天,可見(jiàn)肺臟組 織片層能夠較好地生長(zhǎng)。 實(shí)施例3體外構(gòu)建的組織工程化肺臟組織的組織學(xué)和免疫組織化學(xué)檢測(cè)
HE染色使用4X的多聚甲醛溶液固定采用實(shí)施例l方法體外培養(yǎng)7天的細(xì)胞-支 架復(fù)合物,濃度梯度酒精脫水,石蠟包埋,制備4 ii m厚度的切片。常規(guī)HE染色,光鏡觀察, 從圖4中可見(jiàn)細(xì)胞活性良好,并能夠形成肺泡樣的組織結(jié)構(gòu)。 免疫組織化學(xué)染色取采用實(shí)施例1方法體外培養(yǎng)7天的細(xì)胞_支架復(fù)合物進(jìn)行 石蠟包埋,切片,厚度為4 ii m,脫蠟。切片微波修復(fù)后用PBS漂洗5minX 3次,在H202孵育 10min,PBS漂洗5minX3次,山羊封閉血清作用20min。分別使用Vimentin抗體(1 : 1000)
和spc(i : 1200)作為一抗,陰性對(duì)照組使用pbs代替一抗,置于4t:,過(guò)夜孵育。pbs漂洗
3minX3次,加入二抗,即生物素標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG,37。C孵育20min,PBS漂洗3minX3 次;滴加辣根酶標(biāo)記鏈霉卵白素,37t:孵育20min, PBS漂洗3minX3次。DAB顯色5 10min,蘇木素復(fù)染細(xì)胞核,梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹(shù)膠封片,光學(xué)顯微鏡下觀察 Vimentin和SpC均有陽(yáng)性表達(dá),可見(jiàn)圖5 (a)和(b)。
參考文獻(xiàn) [l].Chen P, Marsilio E, Goldstein RH, Ya皿as IV, Spector M. Formation of l皿g alveolar-likestructures in collagen-glycos咖inoglycan scaffolds in vitro, Tissue engineering,2005,11 :9_10. [2]. Mondrinos, M.J. , Koutzaki, S. , Lelkes, P. I. , and Finck, C. M. A tissue engineered model offetel distal lung tissue,Am J Physiol Umg Cell Mol Physiol,293,2007, L639. [3].Faraj KA, van Kuppevelt TH, Daamen WF. Construction of colla gen scaffolds that mimic thethree—dimensional architecture of specific tissues, Tissue Eng. ,2007,13(10) :2387—94. [4].Tomei AA, Boschetti F, Gervaso F. 3D collagen cultures under well—defined dynamic strain :anovel strain device with a porous elastomeric support, Biotechnol Bioeng,2009,103(1) :217-25. [5]. Blau, H. , Guzowski, D. E. , Siddiqi, Z. A. , Scarpelli, E. M. , and Bienkowski, R.S.Fetal type 2pneumocytes form alveolar—like structures and maintain long—term differentiation on extracellularmatrix. J. Cell Physiol. ,136,203,1988.
[6]. Mondrinos, M. J. , Koutzaki, S. , Jiwa腹all, E. , Li, M. , Dechadarevian, J. P. , Lelkes, P. I. , andFinck, C. M. Engineering three—dimensional pulmonary tissue constructs, Tissue Eng. , 2006,12, 717. [7]. Mondrinos M J, Koutzaki SH. In Vivo Pulmonary Tissue Engineering : Contribution ofDonor—Derived Endothelial Cells to Construct Vascularization, Tissue Eng Part A,2008,14(3) :361-8. [8]. Douglas, W. H. , Moorman, G. W. , and Teel,R. W. The formation of histotypic structures frommonodisperse fetal rat lung cells cultured on a three—dimensional substrate. In Vitro,1976,12,373. [9]. Douglas, W. H. , and Teel, R. W. An organotypic in vitro model system for studying pulmonarysurfactant production by type II alveolar pneumonocytes. Am. Rev. Respir. Dis. , 1976, 113, 17. [10]. Douglas, W. H. , McAteer, J. A. , and Cavanagh, T. Organotypic culture of dissociated fetal ratlung cells on a collagen sponge matrix. TCA Manual,1978,4, 749. [ll]. Douglas, W. H. , McAteer, J. A. , Dell' orco, R. T. , and Phelps, D. Visualization of cellularaggregates cultured on a three dimensional collagen sponge matrix. In Vitro,1980,16,306. [12].Andrade CF,Wong AP,Waddell TK,Keshavjee S,Liu M. Cell-based tissue engineering forlung regeneration. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. ,2007,292 : L510-L518. [13]. M. J. Evans, M. H. Kaufman, Establishment in culture of pluripotential cells from mouseembryos,Nature,1981,292 :154—156.
權(quán)利要求
一種組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,其特征在于,按照如下操作步驟進(jìn)行(1)制備肺細(xì)胞懸液從肺臟組織中分離或誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞獲得肺臟細(xì)胞,然后用2×H-DMEM培養(yǎng)液重懸細(xì)胞制備細(xì)胞密度為5×105~5×106/mL的肺細(xì)胞懸液;(2)微囊的制備將1.5-2.0%海藻酸鈉溶液,在4-9kV/cm的電場(chǎng)作用下,通過(guò)靜電微囊制作儀以5-35mL/h的速度推入到1.1-1.5%的氯化鈣/2%的氯化鋇溶液中,反應(yīng)8-12min,形成海藻酸鈣/鋇膠珠,然后依次用0.55%氯化鈣液、0.28%氯化鈣液、生理鹽水、0.1%(2-環(huán)己烷)-1-乙磺酸和1.1-1.5%的氯化鈣/2%氯化鋇溶液沖洗;沖洗后加入0.05%多聚賴(lài)氨酸,反應(yīng)6min后,依次用0.1%(2-環(huán)己烷)-1-乙磺酸、1.1-1.5%的氯化鈣/2%氯化鋇溶液和生理鹽水沖洗;加入0.05%的海藻酸鈉溶液,反應(yīng)4min后用生理鹽水沖洗;加入1.5%檸檬酸鈉溶液反應(yīng)2min后用生理鹽水沖洗3-5遍,得到海藻酸鈉-多聚賴(lài)氨酸-海藻酸鈉微囊/海藻酸鋇-多聚賴(lài)氨酸-海藻酸鈉微囊;(3)細(xì)胞與支架材料的復(fù)合及細(xì)胞-支架復(fù)合物的培養(yǎng)將步驟(1)制得的細(xì)胞懸液與步驟(2)制得的微囊混合,再添加濃度為1.5-2.5mg/mL的膠原與Matrigel基質(zhì)膠,混勻后,調(diào)節(jié)pH值至7.2-7.4,其中細(xì)胞懸液、膠原和Matrigel基質(zhì)膠的體積比為5∶(4-3)∶(2-1);然后將獲得的細(xì)胞-支架復(fù)合物加至由細(xì)胞培養(yǎng)板制得的靜態(tài)拉伸模具中,置于5%CO2、37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)30min,待細(xì)胞-支架復(fù)合物凝膠化后再加入含有10%胎牛血清的H-DMEM培養(yǎng)基,培養(yǎng)3-14天,即得到組織工程化肺臟組織。
2. 根據(jù)權(quán)利要求l所述的組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,其特征在于,步驟(3)所用 微囊的直徑為100-400 ii m。
3. 根據(jù)權(quán)利要求1所述的組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,其特征在于,所述肺臟組 織來(lái)源于小鼠胚胎期肺臟。
4. 根據(jù)權(quán)利要求1所述的組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,其特征在于,所述胚胎干 細(xì)胞來(lái)源于小鼠。
5. 根據(jù)權(quán)利要求1所述的組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法,其特征在于,所述膠原為I 型鼠尾膠原。
6. —種利用權(quán)利要求1-5任一所述組織工程化肺臟組織的構(gòu)建方法獲得的組織工程 化肺臟組織。
全文摘要
本發(fā)明公開(kāi)了屬于組織工程與再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的一種組織工程化肺臟組織及其構(gòu)建方法。該組織工程化肺臟組織通過(guò)如下構(gòu)建方法獲得,(1)制備肺細(xì)胞懸液;(2)制備海藻酸鈉-多聚賴(lài)氨酸-海藻酸鈉微囊;(3)細(xì)胞與支架材料的復(fù)合及細(xì)胞-支架復(fù)合物的培養(yǎng)。本發(fā)明采用海藻酸鈉-多聚賴(lài)氨酸-海藻酸鈉微囊,聯(lián)合液態(tài)I型膠原和Matrigel基質(zhì)膠作為組織工程化肺臟的支架,該支架體系能夠有效地促使肺泡樣結(jié)構(gòu)的形成,實(shí)現(xiàn)氣體以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的交換,對(duì)未來(lái)臨床應(yīng)用組織工程化肺臟組織治療肺部疾患具有重要意義。本發(fā)明的構(gòu)建方法操作工藝簡(jiǎn)單、實(shí)施條件溫和。
文檔編號(hào)C12N5/071GK101701208SQ20091023634
公開(kāi)日2010年5月5日 申請(qǐng)日期2009年10月16日 優(yōu)先權(quán)日2009年10月16日
發(fā)明者周瑾, 張文君, 段翠密, 王常勇, 王海濱, 邱麗媛 申請(qǐng)人:中國(guó)人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所