專利名稱:一種海帶孢子體dna的制備方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明涉及海帶孢子體DNA的制備,具體地說(shuō)是一種有效去除褐藻多糖的海帶孢子體DNA的制備方法。
背景技術(shù):
海帶是我國(guó)重要的經(jīng)濟(jì)海藻之一,它含有豐富的碘、蛋白質(zhì)及各種人體必需的礦物元素。除了食用和藥用價(jià)值外,海帶所產(chǎn)生的褐藻酸和甘露醇是經(jīng)濟(jì)價(jià)值很高的工業(yè)原料。近年來(lái),隨著分子生物學(xué)的迅猛發(fā)展,分子生物學(xué)技術(shù)已應(yīng)用到海帶的遺傳與變異、種質(zhì)鑒定及系統(tǒng)發(fā)育等方面的研究中,而進(jìn)行分子生物學(xué)研究的前提條件是制備高純度的海帶孢子體總DNA。眾所周知,褐藻多糖如半乳糖及其衍生物和褐藻酸等一直是制約褐藻DNA制備的一個(gè)主要因素。與高等植物褐藻多糖相比,褐藻孢子體內(nèi)的褐藻多糖含量高,粘性大且是水溶性的。由于褐藻多糖能夠吸附DNA并與DNA共沉淀,導(dǎo)致所制備的DNA產(chǎn)量低,純度差, 進(jìn)而導(dǎo)致后續(xù)常規(guī)的分子生物學(xué)操作無(wú)法進(jìn)行,如限制性內(nèi)切酶反應(yīng),PCR反應(yīng)等。因此, 制備高純度,得率高的海帶孢子體DNA是進(jìn)行分子生物學(xué)研究的基礎(chǔ)。目前,關(guān)于褐藻DNA制備方法的已有一些報(bào)道。一是利用超速離心來(lái)去除褐藻多糖以純化DNA,但這種方法需要大量的海帶孢子體材料。二是利用^^1!虹0如spin柱的方法來(lái)去除海帶孢子體中的褐藻多糖。三是運(yùn)用CTAB方法,在Sargassum polycystum和 S. siIiquosum的DNA制備中有效地去除褐藻多糖,以此DNA為模板,成功地進(jìn)行了 PCR反應(yīng)。四是將褐藻酸裂解酶和CTAB結(jié)合來(lái)去除褐藻多糖。首先是用褐藻酸裂解酶裂解海帶孢子體組織細(xì)胞,去除海帶孢子體組織表面及細(xì)胞壁外褐藻多糖,再利用CTAB方法去除細(xì)胞內(nèi)剩余的褐藻多糖。上述制備海帶孢子體DNA的方法,過(guò)程繁瑣,既費(fèi)時(shí)費(fèi)用又很高,而且褐藻多糖去除的不是很徹底。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明提供了一種海帶孢子體DNA的制備方法,可以解決現(xiàn)有技術(shù)存在的褐藻多糖去除不夠徹底、過(guò)程繁瑣、既費(fèi)時(shí)費(fèi)用又高的問(wèn)題。本發(fā)明的目的在于提供一個(gè)簡(jiǎn)單易行的、適用于實(shí)驗(yàn)室常規(guī)制備海帶孢子體DNA 的方法。為解決上述技術(shù)問(wèn)題,本發(fā)明采用以下技術(shù)方案予以實(shí)現(xiàn)一種海帶孢子體DNA的制備方法,包括如下步驟1)取海帶孢子體在清水中反復(fù)清洗,以去除海帶孢子體表面的雜質(zhì),并在液氮中迅速將海帶孢子體研成藻粉粉末,研磨1-6次;液氮研磨使海帶孢子體組織細(xì)胞破碎,釋放細(xì)胞內(nèi)DNA ;2)將上述藻粉粉末轉(zhuǎn)65°C預(yù)熱的SDS提取緩沖液中,63_65°C水浴保溫60min ;3)加入占上述溶液1/3體積的KAc溶液,混合均勻,第一次去除褐藻多糖;KAc溶液濃度為 5mol Γ1, ρΗ 7. 5 ;4)離心,取上清,加入異丙醇;離心條件室溫IOOOOrpm(10621 Xg)離心30min,
取上清,加入等體積異丙醇沉淀DNA ;5)離心,棄上清,加入CTAB提取緩沖液使DNA進(jìn)一步溶解,65°C保溫15min,第二次去除褐藻多糖;離心條件室溫12000rpm離心IOmin ;6)離心(離心條件室溫12000rpm離心IOmin),水相加入兩倍體積的KAc溶液, 離心(室溫IOOOOrpm離心20min),第三次去除褐藻多糖;7)加入上述溶液等體積的氯仿與異戊醇混合液,去除蛋白質(zhì)等雜質(zhì);8)離心,(離心條件室溫12000rpm離心lOmin),水相用冷的異丙醇于-18 至_20°C沉淀;9)離心,用70%冷乙醇(重量百分比濃度)洗沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase, 終濃度為0. 1 μ g μ Γ1,以消化RNA,得終產(chǎn)品海帶孢子體DNA ;離心條件室溫12000rpm離心 15min。本發(fā)明通過(guò)三次去除褐藻多糖,并且CTAB提取緩沖液和KAc溶液配合使用,使得褐藻多糖去除的更徹底,并且操作簡(jiǎn)單,省時(shí)省力。進(jìn)一步地,所述步驟1)中于液氮中研磨時(shí),液氮中加入10%海帶孢子體重量的聚乙烯吡咯烷酮(PVP)。進(jìn)一步地,所述SDS提取緩沖液的組成為2. 0% sodium dodecylsulfate (SDS), 5Ommol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid(EDTA), IOOmmol L-1 Tris. HCl, ρΗ 8. 0, 500mmol L-1 NaCl,2% β-巰基乙醇。進(jìn)一步地,所述氯仿與異戊醇混合液中,氯仿與異戊醇的體積比為M 1。進(jìn)一步地,所述CTAB 提取緩沖液的組成為200mmol L^1Tris-HCl,ρΗ 8. 0,50mmol L1 ethylenediaminetetra-acetic acid,2mol L1 NaCl,2% cetyltrimethyl ammonium bromide。DNA濃度及純度測(cè)定在獲得產(chǎn)品海帶孢子體DNA后,將制備的DNA溶解在TE緩沖液中,1)應(yīng)用普通瓊脂糖電泳進(jìn)行DNA分子量大小的檢測(cè),幻使用BioWwtometer進(jìn)行DNA濃度及純度測(cè)定。與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)和積極效果是1、速度快。本發(fā)明DNA提取步驟簡(jiǎn)化,整個(gè)制備DNA過(guò)程在5_他內(nèi)完成。2、效果好。本發(fā)明有效地去除了褐藻多糖;得到了純度較高(OD26tlA)D28ciS 1. 7-1. 9)的海帶孢子體DNA03、提取效率高。本發(fā)明在液氮中研磨,可使胞外或胞內(nèi)核酸酶失活,減少了 DNA的降解;產(chǎn)量為30 μ g g—1 (濕重),能夠滿足常規(guī)分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)要求。4、無(wú)污染。本發(fā)明避免了使用有毒化學(xué)藥品。5、操作費(fèi)用較低。本發(fā)明在制備DNA的過(guò)程中沒(méi)有使用蛋白酶K等試劑。
圖1為海帶孢子體DNA普通瓊脂糖電泳圖譜;圖2以本發(fā)明制備的DNA為模板擴(kuò)增出ITS基因的部分片段的電泳圖譜;
圖3為以本發(fā)明制備的DNA為底物進(jìn)行限制性酶切反應(yīng)的電泳圖譜。
具體實(shí)施例方式下面結(jié)合附圖和具體實(shí)施方式
對(duì)本發(fā)明作進(jìn)一步詳細(xì)的說(shuō)明。實(shí)施例1海帶孢子體DNA的制備將用清水反復(fù)沖洗的0. 2-0. 3g新鮮的海帶孢子體置于液氮中,加入0. 02g聚乙烯吡咯烷酮(PVP),迅速研成粉末(1-6次);將藻粉轉(zhuǎn)入65°C預(yù)熱的SDS提取緩沖液[2. 0% sodium dodecyl sulfate (SDS),50mmol L1 ethylenediaminetetra-acetic acid (EDTA), 50mmol L-1 Tris-HCl, pH 8. 0,500mmol L-1 NaCl,2% β-巰基乙醇]的離心管中,邊加熱邊混合均勻,65°C水浴保溫60min ;加入1/3的體積的5mol L—1 KAc,混合均勻,冰上放置30min ;IOOOOrpm(10621 Xg)離心IOmin ;取上清,加入等體積異丙醇,室溫12000rpm 離心 IOmin ;棄上清,水相加入 CTAB 緩沖液[200mmol L^1Tris-HCKpH 8. 0) ,50mmol Γ1 ethylenediaminetetra-acetic acid(EDTA),2mol L-1 NaCl, 2% cetyltrimethyl ammonium bromide (CTAB) ],65°C保溫15min,第二次去除褐藻多糖;IOOOOrpm離心20min ;水相用兩倍體積的KAc溶液,離心(室溫IOOOOrpm離心20min),第三次去除褐藻多糖;加入等體積的氯仿異戊醇(24 1)抽提lOmin,室溫12000rpm離心IOmin ;取上清,水相加入1倍體積的冷異丙醇沉淀,_20°C沉淀30min ; 12000rpm室溫離心15min ;用冷70%乙醇洗DNA沉淀, 稍干后溶于TE中,加入RNase,終濃度為0. Iyg μ Γ1。使用BioWiotometer進(jìn)行DNA濃度及純度測(cè)定;普通瓊脂糖凝膠電泳染色后顯示所提取的海帶DNA大小在23. OKb以上。具體應(yīng)用1 以本發(fā)明實(shí)施例1制備的DNA為模板,擴(kuò)增出ITS基因的部分片段(圖 3)。PCR擴(kuò)增所用正向引物為L(zhǎng)B1 :5,CGCGAGTCATCAGCTCGCATT3’,反向引物為L(zhǎng)B2 5,AGCTTCACTCGCCGTACTGG3,。PCR 反應(yīng)組成反應(yīng)總體積為 25 μ L。IXPCR buffer (50mM KCl,0· 01 % gelatin, IOmM Tris. HCl, pH 9. 0), 2. 5mM MgCl2,0. 2mM dNTP,0. 2 μ M 引物, 40-50ng DNA,,2. OU Taq 酶。反應(yīng)參數(shù)為94°C預(yù)變性 2min,94°C 60s,55°C 90s,72°C 150s, 35個(gè)循環(huán),72°C延伸IOmin0進(jìn)行測(cè)序,正向測(cè)序結(jié)果如下GGGAATCCTGTCCTTTGTACACACCGCCCGTCGCACCTACCGATTGAATGTTTCGGTGAAGATTCCGG ACTGTGGCTCGCGTGCTTCACGGCGCTCTTGCCGTGGGAAGTTATCTAAACCTCAACATTTAGAGGAAGGTGAAGT CGTAACAAGGTTTCCGTAGGTGAACCTGCGGAAGGATCATTACCGAAAGCGGGTTCGTTCAATCCCCCCCGCTCT ATAAATTGTCTGTGAGGCCGCTTCGTGCGGCCTCTTTACCCCGAGAAAGAATTCGTTATGCGAAGTTGGGCGAGG GGCGCCTCGCCGAGAGCCTGTGAAAAGGCCCTCGAATCAAAGCGCACCCCACATTTCAACCCATTAAACTCTGAA TCTGAACTCAAAGGGGCGCTGCGCTAGCCGCGGCTCCCCCAACCTTTAACGTTGTAAAACTTTCAGCGACGGATG TCTTGGCTCCCACAACGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATACGTCTTGCGACTTGCAGAATCCAGTGAATCATC AAAACTTTGAACGCATCTTGCGCTTCCGGGATACTCCTGGGAGCATGCTTGTCGGAGTGTCTGTTGACACCACTC GCCCCTCTTCTCTCCTGTCTCACGACGGGGGAGTCGCGGCGGCGGACTTTGAGTGTTCCGGAGTTCCCATGCTCC GAGTGCACCTAATCTCGTGAACGAAGCCTCTCGCGCCCTGCCGCACAGAGTTGTTGACGGCGCTCGCTTCGGCGG CGACTCTCGACTCACCAAACGTGCGCAGGATGCCTGCCTCATTCCGGCGCTCCGACGCCGACCCTTCTGGGTCAGCGTTGGAAACCGTACCACTTTCGTTCGGACCTCCGATCAAGCAAGAGGACCCGCTGAATTTAAGCATATAACTAA GCGGGAGGAAAAGAAACTAACCAGGATT反向測(cè)序結(jié)果如下CGGGGGGCTTGCTTCTTTTCTCCGCTTAGTTATATGCTTAAATTCAGCGGGTCCTCTTGCTTGATCGGA GGTCCGAACGAAAGTGGTACGGTTTCCAACGCTGACCCAGAAGGGTCGGCGTCGGAGCGCCGGAATGAGGCAGGCAT CCTGCGCACGTTTGGTGAGTCGAGAGTCGCCGCCGAAGCGAGCGCCGTCAACAACTCTGTGCGGCAGGGCGCGAGAG GCTTCGTTCACGAGATTAGGTGCACTCGGAGCATGGGAACTCCGGAACACTCAAAGTCCGCCGCCGCGACTCCCCCG TCGTGAGACAGGAGAGAAGAGGGGCGAGTGGTGTCAACAGACACTCCGACAAGCATGCTCCCAGGAGTATCCCGGAA GCGCAAGATGCGTTCAAAGTTTTGATGATTCACTGGATTCTGCAAGTCGCAAGACGTATCGCATTTCGCTGCGTTCT TCATCGTTGTGGGAGCCAAGACATCCGTCGCTGAAAGTTTTACAACGTTAAAGGTTGGGGGAGCCGCGGCTAGCGCA GCGCCCCTTTGAGTTCAGATTCAGAGTTTAATGGGTTGAAATGTGGGGTGCGCTTTGATTCGAGGGCCTTTTCACAG GCTCTCGGCGAGGCGCCCCTCGCCCAACTTCGCATAACGAATTCTTTCTCGGGGTAAAGAGGCCGCACGAAGCGGCC TCACAGACAATTTATAGAGCGGGGGGGATTGAACGAACCCGCTTTCGGTAATGATCCTTCCGCAGGTTCACCTACGG AAACCTTGTTACGACTTCACCTTCCTCTAAATGTTGAGGTTTAGATAACTTCCCACGGCAAGAGCGCCGTGAAGCAC GCGAGCCACAGTCCGGAATCTTCACCGAAACATTCAATCGGTAGGTGCGACGGGCGGTGTGTACAAAGGGCAGGGAC GTAATCAATGCDNA正反向測(cè)序結(jié)果與GenBank上已登錄的海帶ITS序列進(jìn)行比對(duì),同源性達(dá) 99%以上,可判斷為海帶的ITS序列。具體應(yīng)用2 以本發(fā)明實(shí)施例1制備提取的DNA為底物,進(jìn)行限制性酶切反應(yīng),酶切反應(yīng)圖譜如圖3所示。酶切底物為1-2 μ g海帶孢子體DNA,限制性內(nèi)切酶分別是EcoRI,Sau3Al和 HindIII0酶切反應(yīng)時(shí)間為6-7h。以上所述,僅是本發(fā)明的較佳實(shí)施例而已,并非是對(duì)本發(fā)明作其它形式的限制,任何熟悉本專業(yè)的技術(shù)人員可能利用上述揭示的技術(shù)內(nèi)容加以變更或改型為等同變化的等效實(shí)施例。但是凡是未脫離本發(fā)明技術(shù)方案內(nèi)容,依據(jù)本發(fā)明的技術(shù)實(shí)質(zhì)對(duì)以上實(shí)施例所作的任何簡(jiǎn)單修改、等同變化與改型,仍屬于本發(fā)明技術(shù)方案的保護(hù)范圍。
權(quán)利要求
1.一種海帶孢子體DNA的制備方法,其特征在于包括如下步驟1)取海帶孢子體在清水中反復(fù)清洗,以去除海帶孢子體表面的雜質(zhì),并在液氮中迅速將海帶孢子體研成藻粉粉末;2)將上述藻粉粉末轉(zhuǎn)入SDS提取緩沖液中,63-65°C保溫60min;3)加入KAc溶液,混合均勻,第一次去除褐藻多糖;4)離心,取上清,加入異丙醇;5)離心,棄上清,加入CTAB提取緩沖液,第二次去除褐藻多糖;6)離心,在水相加入KAc溶液,第三次去除褐藻多糖;7)加入氯仿與異戊醇混合液抽提;8)離心,水相用異丙醇于-18至-20°C沉淀;9)離心,用70%冷乙醇洗沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,得終產(chǎn)品海帶孢子體DNA。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述海帶孢子體DNA的制備方法,其特征在于所述步驟1)中于液氮中研磨時(shí),液氮中加入10%海帶孢子體重量的聚乙烯吡咯烷酮。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所述海帶孢子體DNA的制備方法,其特征在于所述SDS提取緩沖液的組成為2· 0% sodium dodecyl sulfate, 50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid, IOOmmol L^1Tris-HCl, pH 8. 0,500mmol L-1 NaCl,2% β-巰基乙醇。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述海帶孢子體DNA的制備方法,其特征在于所述氯仿與異戊醇混合液中,氯仿與異戊醇的體積比為24 1。
5.根據(jù)權(quán)利要求1所述海帶孢子體DNA的制備方法,其特征在于所述CTAB提取緩沖液的組成為:200mmol L—1 Tris-HCl, pH 8. 0,50mmol L—1 ethyl enediaminetetra-acetic acid,2mol L—1 NaCl,2% cetyltrimethyl ammonium bromide。
全文摘要
本發(fā)明提供了一種海帶孢子體DNA的制備方法,可以解決現(xiàn)有技術(shù)存在的褐藻多糖去除不夠徹底、過(guò)程繁瑣、既費(fèi)時(shí)費(fèi)用又高的問(wèn)題。技術(shù)方案步驟如下,1)取海帶孢子體在清水中反復(fù)清洗后置于液氮中,迅速研成粉末;2)將藻粉轉(zhuǎn)入SDS提取緩沖液中,65℃保溫60min;3)加入KAc溶液,混合均勻,第一次去多糖;4)離心,取上清,加入異丙醇沉淀DNA;5)離心,棄上清,加入CTAB溶液第二次去多糖;6)離心,水相用KAc溶液第三次去多糖;7)加入氯仿∶異戊醇抽提;8)重復(fù)4)步,9)離心,70%冷乙醇洗DNA沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,得產(chǎn)品。本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)速度快,效果好,提取效率高,無(wú)污染,操作費(fèi)用較低。
文檔編號(hào)C12N15/29GK102154308SQ20101058869
公開(kāi)日2011年8月17日 申請(qǐng)日期2010年12月3日 優(yōu)先權(quán)日2010年12月3日
發(fā)明者姜春梅, 王莎莎, 王高歌 申請(qǐng)人:中國(guó)海洋大學(xué)