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一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法

文檔序號:601901閱讀:664來源:國知局
專利名稱:一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法
技術領域
本發(fā)明涉及一種賴氨酸發(fā)酵的方法,尤其是涉及一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法。
背景技術
目前我國賴氨酸發(fā)酵均采用間歇發(fā)酵的方法,發(fā)酵采用每罐按照一定的比例投入發(fā)酵培養(yǎng)基并接入一定的賴氨酸發(fā)酵菌種,在流加碳源和流加氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng)。隨著發(fā)酵的進行,賴氨酸酸度逐漸提高,總體積增加,營養(yǎng)物質濃度逐漸降低,發(fā)酵產(chǎn)酸速率呈下降趨勢。當營養(yǎng)物質降低到一定程度后,發(fā)酵產(chǎn)酸速率降低到一定程度即判斷為發(fā)酵終點,當發(fā)酵結束后進入提取工藝。隨著發(fā)酵的進行,發(fā)酵營養(yǎng)物質降低到一定程度,賴氨酸菌種的代謝能力下降,致使發(fā)酵產(chǎn)酸速率緩慢而放罐,而放罐后要進行罐的清洗、檢查、滅菌,并要重新裝填培養(yǎng)基, 接入賴氨酸菌種重新開始發(fā)酵培養(yǎng),每批次罐的發(fā)酵培養(yǎng)的時間較短,無形中增加了輔助周期的數(shù)量,導致發(fā)酵設備的使用效率降低。

發(fā)明內容
本發(fā)明的目的是為了克服現(xiàn)有技術中發(fā)酵設備的使用效率較低的缺陷,提供一種新的賴氨酸發(fā)酵的方法。本發(fā)明的發(fā)明人驚奇地發(fā)現(xiàn),通過在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質,能夠使賴氨酸菌種的代謝能力基本不下降,從而能夠使發(fā)酵產(chǎn)酸速率基本維持不變,從而無需放罐,使發(fā)酵過程得以連續(xù)進行。因此,為了實現(xiàn)上述目的,本發(fā)明提供了一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,所述方法包括將賴氨酸發(fā)酵菌種接入賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,在流加碳源和流加氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng),其特征在于,在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質。優(yōu)選地,所述方法還包括在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵菌種。本發(fā)明提供的賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,大大延長了發(fā)酵培養(yǎng)的時間,且不影響轉化率,提高了賴氨酸菌種的代謝能力,在設備不出現(xiàn)故障和發(fā)酵培養(yǎng)基不染菌的情況下,發(fā)酵可以一直進行下去,提高了單位時間供酸量,并提高了設備利用率,進而降低了賴氨酸發(fā)酵成本。本發(fā)明的其他特征和優(yōu)點將在隨后的具體實施方式
部分予以詳細說明。
具體實施例方式以下對本發(fā)明的具體實施方式
進行詳細說明。應當理解的是,此處所描述的具體實施方式
僅用于說明和解釋本發(fā)明,并不用于限制本發(fā)明。本發(fā)明提供了一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,所述方法包括將賴氨酸發(fā)酵菌種接入賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,在流加糖和流加有機氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng),在發(fā)酵培養(yǎng)20 小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質。本發(fā)明中,發(fā)酵培養(yǎng)基為本領域技術人員公知的概念,指微生物發(fā)酵所需的供微生物生長和維持用的人工配制的養(yǎng)料,一般都含有碳水化合物、含氮物質、無機鹽(包括微量元素)以及維生素和水等。發(fā)酵液也為本領域技術人員公知的概念,指接入微生物菌株的液體培養(yǎng)基(該液體培養(yǎng)基也即本發(fā)明中所稱發(fā)酵培養(yǎng)基),經(jīng)過一段時間的培養(yǎng)后所得產(chǎn)物。本發(fā)明中,以接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基為基準,賴氨酸發(fā)酵菌種的接種量為12-18體積%。本領域技術人員應該理解的是,賴氨酸發(fā)酵菌種在被接種至發(fā)酵培養(yǎng)基中之前,采用常規(guī)方法將賴氨酸發(fā)酵菌種經(jīng)過種子罐培養(yǎng),在種子罐培養(yǎng)的培養(yǎng)程度可以通過取樣顯微鏡鏡檢、( (optical density)值測定對產(chǎn)賴氨酸微生物的生長進行觀察,當通過上述方法觀察菌體形態(tài)正常、測定OD值達到0. 75以上時停止培養(yǎng), 將此時種子罐中的種子液稱為成熟種子液,然后再將成熟種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基中。因此, 本發(fā)明中,賴氨酸發(fā)酵菌種的接種量為12-18體積%,指的是接入發(fā)酵培養(yǎng)基中的成熟種子液的體積占接入成熟種子液后發(fā)酵培養(yǎng)基體積的12-18%。種子罐培養(yǎng)可以采用一級種子罐培養(yǎng)也可以采用二級種子罐培養(yǎng),一級種子罐培養(yǎng)即將賴氨酸發(fā)酵菌種在一個種子罐中一直培養(yǎng)到所需的培養(yǎng)程度;二級種子罐培養(yǎng)即先將賴氨酸發(fā)酵菌種在一個種子罐中培養(yǎng)一段時間后再轉入另一個種子罐繼續(xù)培養(yǎng),培養(yǎng)到所需的培養(yǎng)程度。二級種子罐培養(yǎng)在各個種子罐的培養(yǎng)時間沒有具體限定,只要最終能培養(yǎng)到所需的培養(yǎng)程度即可。為了操作方便,本發(fā)明的種子罐培養(yǎng)優(yōu)選采用一級種子罐培養(yǎng)。本發(fā)明中,對于種子罐培養(yǎng)基的成分無特殊要求,可以采用本領域常用的種子罐培養(yǎng)基,例如,可以用淀粉質原料糖化清液、玉米漿、磷酸氫二鉀、硫酸鎂、硫酸銨、蘇氨酸和蛋氨酸等配制種子罐培養(yǎng)基。根據(jù)本發(fā)明,每升種子罐培養(yǎng)基中各原料的用量可以在很大范圍內改變,優(yōu)選情況下,每升種子罐培養(yǎng)基中,淀粉質原料糖化清液的用量可以為30-40 克,玉米漿(干重為20-50重量%)的用量可以為70-90克,磷酸氫二鉀的用量可以為 0. 5-1. 5克,硫酸鎂的用量可以為0. 4-1. 1克,硫酸銨的用量可以為5-15克,蘇氨酸的用量可以為0. 1-0. 6克,蛋氨酸的用量可以為0. 1-0. 3克。本發(fā)明中,流加碳源的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在5-10克/升,流加氮源的量使發(fā)酵液中氮的濃度控制在0. 35-0. 8克/升。此處“流加碳源的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在5-10克/升,流加氮源的量使發(fā)酵液中氮的濃度控制在0. 35-0. 8克/ 升”是指通過控制流加碳源和流加氮源的速度來使在整個發(fā)酵培養(yǎng)過程中發(fā)酵液中還原性糖的濃度維持在5-10克/升,使發(fā)酵液中氮的濃度維持在0. 35-0. 8克/升。本發(fā)明中,發(fā)酵液中還原性糖的濃度通過流加碳源來控制,發(fā)酵液中氮的濃度通過流加氮源來控制,隨著發(fā)酵的進行,發(fā)酵液中其他營養(yǎng)成分的含量也隨之降低,在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,通過向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質來控制發(fā)酵液中其他營養(yǎng)成分的濃度,以使發(fā)酵能夠持續(xù)進行下去。對于營養(yǎng)物質的成分和流加的量只要能使發(fā)酵持續(xù)進行下去即可,優(yōu)選情況下,營養(yǎng)物質為濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基,相對于每升接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基,營養(yǎng)物質的流加速度為0. 007-0. 012升/小時。
本發(fā)明中,賴氨酸發(fā)酵菌種在發(fā)酵培養(yǎng)基中可以不斷繁殖,產(chǎn)生新的賴氨酸發(fā)酵菌種,在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質,理論上,在設備不出現(xiàn)故障和培養(yǎng)基不染菌的情況下,發(fā)酵可以一直進行下去。為了使發(fā)酵更好地持續(xù)進行,本發(fā)明方法優(yōu)選還包括在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵菌種。 賴氨酸發(fā)酵菌種流加的量優(yōu)選使發(fā)酵液的OD值為0. 95-1. 35。本領域技術人員應該理解的是,此處所流加的賴氨酸發(fā)酵菌種指的也是經(jīng)種子罐培養(yǎng)后的成熟種子液。本發(fā)明的發(fā)明人在實驗中發(fā)現(xiàn),對于碳源和氮源的流加,以及營養(yǎng)物質和賴氨酸發(fā)酵菌種的流加,連續(xù)流加比間歇流加的發(fā)酵效果好,因此,本發(fā)明中的流加優(yōu)選為連續(xù)流加。本發(fā)明中,發(fā)酵培養(yǎng)在發(fā)酵罐中進行,為了有效利用發(fā)酵罐的產(chǎn)能,接種后且流加碳源和流加氮源之前發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基的體積優(yōu)選為發(fā)酵罐體積的40-60%,隨著流加碳源和流加氮源,以及發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質,發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基的體積逐漸增大,為了保證發(fā)酵罐中的空氣量,優(yōu)選為流加碳源和流加氮源以及流加營養(yǎng)物質至發(fā)酵罐體積的70-80%時放料,為了保證放料后發(fā)酵罐中的菌種數(shù)量,不影響放料后發(fā)酵罐中的發(fā)酵培養(yǎng),放料體積優(yōu)選為放料前發(fā)酵罐中發(fā)酵液體積的 5-10%。現(xiàn)有技術中,將賴氨酸發(fā)酵菌種接入賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,在流加碳源和流加氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng),隨著發(fā)酵的進行,賴氨酸酸度逐漸提高,營養(yǎng)物質逐漸降低,發(fā)酵產(chǎn)酸速率呈下降趨勢,當營養(yǎng)物質降低到一定程度后,發(fā)酵產(chǎn)酸速率降低到一定程度即判斷為發(fā)酵終點,達到發(fā)酵終點即放罐,放罐是指將發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基全部從發(fā)酵罐中放出,即停止發(fā)酵?,F(xiàn)有技術中一般發(fā)酵培養(yǎng)40-50小時后放罐。本發(fā)明在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質,因此,理論上,在設備不出現(xiàn)故障和培養(yǎng)基不染菌的情況下,發(fā)酵可以一直進行下去,但實際生產(chǎn)中,根據(jù)實際需要可以隨時放罐,停止發(fā)酵,但本發(fā)明在放罐前發(fā)酵培養(yǎng)的時間要遠遠長于現(xiàn)有技術放罐前發(fā)酵培養(yǎng)的時間。本領域技術人員應該理解的是,為了得到純度較高的賴氨酸產(chǎn)品,本發(fā)明方法還包括從放料或放罐的溶液中提取賴氨酸。對于提取賴氨酸的方法無特殊要求,可以采用本領域常用的各種方法,例如,采用連續(xù)離子交換分離提取方法,向放料或放罐的溶液中加入大量的濃硫酸調PH至2. 0-3. 0進行酸化,酸化后經(jīng)過金屬膜或陶瓷膜過濾除去菌體,得到賴氨酸膜濾液即賴氨酸清液,或將酸化后的賴氨酸發(fā)酵液經(jīng)絮凝過濾除菌體后得到賴氨酸清液,除菌體后的賴氨酸清液采用強酸型陽離子交換樹脂進行吸附交換,樹脂吸附飽和后用稀氨水進行洗脫,洗脫下來的賴氨酸經(jīng)濃縮、鹽酸調節(jié)PH值、結晶、固液分離、烘干,得到賴氨酸鹽酸鹽成品;或者在放料或放罐的溶液中加入酸,使賴氨酸發(fā)酵液酸化,經(jīng)過濾或離心等方法除去菌體。在除去菌體后的賴氨酸清液中加入氫氧化鈣調節(jié)PH值至8. 0-11. 5,使賴氨酸清液中的鹽、膠體等雜質生成不溶物,經(jīng)固液分離后得到賴氨酸溶液,將賴氨酸溶液濃縮至每毫升賴氨酸溶液中賴氨酸的含量為0. 6-0. 8g,再經(jīng)過過濾可以得到高純度的賴氨酸溶液,然后經(jīng)濃縮、鹽酸調節(jié)PH值、結晶、固液分離、烘干,得到賴氨酸鹽酸鹽成品。本發(fā)明中,對發(fā)酵培養(yǎng)的條件無特殊要求,可以采用本領域常用的條件,例如,溫度為35_38°C,壓力為0. 05-0. lMPa,pH值為6. 7-7. 0,通氣量為0. 5-1. 2立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘,通氣量優(yōu)選為0. 7-0. 9立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘。本發(fā)明中,對賴氨酸發(fā)酵菌種的種類無特殊要求,可以采用本領域常用的菌種,優(yōu)選為谷氨酸棒桿菌、大腸桿菌和黃色短桿菌中的至少一種。本發(fā)明中,碳源優(yōu)選為淀粉質原料糖化清液。本發(fā)明中,淀粉質原料糖化清液既可以采用干法制糖工藝制備,也可以采用濕法制糖工藝制備。從工藝簡單、設備投資少,生產(chǎn)成本較低的方面考慮,優(yōu)選通過干法制糖工藝制備。干法制糖工藝是指淀粉質原料不經(jīng)浸泡直接進行破碎和酶解。干法制糖工藝可以包括將淀粉質原料粉碎,將淀粉質原料粉碎后的產(chǎn)物調漿,并加入淀粉酶對淀粉進行第一次水解;對第一次水解產(chǎn)物進行固液分離,并在得到的液相組分中加入糖化酶進行第二次水解,得到淀粉質原料糖化清液。優(yōu)選地,粉碎使淀粉質原料過 30目篩的通過率大于75%,更優(yōu)選過30目篩的通過率為100%。調漿的方法為本領域技術人員所熟知,但優(yōu)選地,調漿的方法可以包括將淀粉質原料粉碎后的產(chǎn)物加入到水中混合均勻,水的加入量使得到的漿液的波美度可以為9-17Β °。術語“波美度”是表示溶液濃度的一種方法,是通過波美比重計檢測溶液得到的度數(shù)。根據(jù)本發(fā)明,在第一次水解中,以每克粉碎后的產(chǎn)物的干重計,淀粉酶的用量可以為10-30酶活力單位,酶解的溫度可以為88-92°C,酶解的時間可以為90-120分鐘,酶解的 PH值可以為5. 5-6. 0。固液分離的條件沒有特別的限定,優(yōu)選地,固液分離的條件使得到的液相組分中的固含量為19-22重量%,更優(yōu)選為20-21重量%。根據(jù)本發(fā)明,在第二次水解中,以每克液相組分計,糖化酶的用量可以為110-130 酶活力單位,酶解的溫度可以為55-65°C,酶解的時間可以為420-600分鐘,酶解的pH值可以為 4. 0-4. 5。本發(fā)明酶活力單位的定義為在pH值為6. 0、溫度為70°C的條件下,1分鐘將1毫
克淀粉轉化為還原性糖所需的酶量為一個酶活力單位。淀粉酶是指能夠分解淀粉糖苷鍵的一類酶的總稱,所述淀粉酶一般包括α -淀粉酶、β-淀粉酶。α-淀粉酶又稱淀粉1,4_糊精酶,它能夠任意地、不規(guī)則地切開淀粉鏈內部的 α-1,4-糖苷鍵,將淀粉水解為麥芽糖、含有6個葡萄糖單位的寡糖和帶有支鏈的寡糖。生產(chǎn)此酶的微生物主要有枯草桿菌、黑曲霉、米曲霉和根霉。β -淀粉酶又稱淀粉1,4-麥芽糖苷酶,能夠從淀粉分子非還原性末端切開1,4_糖苷鍵,生成麥芽糖。此酶作用于淀粉的產(chǎn)物是麥芽糖與極限糊精。此酶主要由曲霉、根霉和內孢霉產(chǎn)生。根據(jù)本發(fā)明,優(yōu)選使用α -淀粉酶。根據(jù)本發(fā)明,糖化酶優(yōu)選為α -1,4-葡萄糖水解酶。按照本發(fā)明,淀粉質原料可以為本領域公知的各種可以用于酶解、發(fā)酵制備賴氨酸的含有淀粉的原料,例如,可以選自玉米、薯類(如木薯)和小麥中的一種或幾種。本發(fā)明中,氮源的種類為本領域技術人員所公知,例如,可以為銨鹽。當?shù)礊殇@鹽時,培養(yǎng)基中氮的濃度以銨根離子的濃度表示,氮的濃度控制在0. 35-0. 8克/升,則銨根離子的濃度控制在0. 5-1. 0克/升。本發(fā)明中,發(fā)酵培養(yǎng)基的成分無特殊要求,可以采用本領域常用的賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基,例如,可以用淀粉質原料糖化清液、糖蜜、玉米漿、硫酸銨、磷酸氫二鉀、硫酸鎂、蘇氨酸、蛋氨酸和谷氨酸等配制發(fā)酵培養(yǎng)基。根據(jù)本發(fā)明,每升發(fā)酵培養(yǎng)基中各原料的用量可以在很大范圍內改變,優(yōu)選情況下,每升發(fā)酵培養(yǎng)基中,淀粉質原料糖化清液的用量可以為 40-60克,糖蜜的用量可以為30-50克,玉米漿(干重為20-50重量% )的用量可以為20-40 克,硫酸銨的用量可以為20-40克,磷酸氫二鉀的用量可以為0. 5-1. 5克,硫酸鎂的用量可以為0. 4-0. 6克,蘇氨酸的用量可以為0. 1-0. 3克,蛋氨酸的用量可以為0. 1-0. 3克,谷氨酸的用量可以為0. 2-0. 4克。本發(fā)明中,營養(yǎng)物質為濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基,即是指營養(yǎng)物質為每升發(fā)酵培養(yǎng)基中各原料的用量加倍得到的培養(yǎng)基。另外,本領域技術人員應該理解的是,接入種子罐進行培養(yǎng)的菌種為經(jīng)過活化后進行增殖培養(yǎng)后的菌種?;罨驮鲋撑囵B(yǎng)為本領域的公知常識,在此不再贅述。以上詳細描述了本發(fā)明的優(yōu)選實施方式,但是,本發(fā)明并不限于上述實施方式中的具體細節(jié),在本發(fā)明的技術構思范圍內,可以對本發(fā)明的技術方案進行多種簡單變型,這些簡單變型均屬于本發(fā)明的保護范圍。另外需要說明的是,在上述具體實施方式
中所描述的各個具體技術特征,在不矛盾的情況下,可以通過任何合適的方式進行組合,為了避免不必要的重復,本發(fā)明對各種可能的組合方式不再另行說明。此外,本發(fā)明的各種不同的實施方式之間也可以進行任意組合,只要其不違背本發(fā)明的思想,其同樣應當視為本發(fā)明所公開的內容。實施例以下的實施例將對本發(fā)明作進一步的說明,但并不因此限制本發(fā)明。在下述實施例和對比例中OD值測定將取樣的發(fā)酵液進行沈倍稀釋,采用722N可見光分光光度計,在波長 562納米可見光下測定吸光值,即為OD值,將得到的OD值X稀釋倍數(shù)+發(fā)酵液的總體積, 計算得到的數(shù)值反映單位體積發(fā)酵液中產(chǎn)賴氨酸微生物的數(shù)量。按照GB/T5009. 7-2008的方法測定發(fā)酵液中還原性糖的濃度。按照GB3595-83的方法測定發(fā)酵液中銨根離子的濃度。按照GB10794-89標準檢測發(fā)酵液中的賴氨酸濃度(以賴氨酸鹽酸鹽計)。單罐供酸量=(放罐的賴氨酸濃度X放罐體積+中間放料賴氨酸濃度X中間放料體積)。轉化率(% )=單罐供酸量/總糖的重量X100%,其中總糖的重量包括種子罐用糖重量和發(fā)酵罐用糖重量。單位時間供酸=單罐供酸量/(發(fā)酵周期+輔助周期)發(fā)酵周期為在放罐前發(fā)酵培養(yǎng)的時間;輔助周期為相鄰罐批之間進行罐的清洗、 檢查、滅菌,及重新裝填培養(yǎng)基等的時間,即相鄰罐批之間未進行發(fā)酵培養(yǎng)的間隔時間。設備利用率=發(fā)酵周期/ (發(fā)酵周期+輔助周期)實施例1本實施例用于說明本發(fā)明提供的賴氨酸的制備方法。(1)將收獲的100重量份玉米通過機械加工將玉米顆粒粉碎,使玉米粉過30目篩的通過率為80%。(2)將粉碎后的產(chǎn)物加水調漿至12Β °,相對于每克粉碎產(chǎn)物的干重,加入20個酶活力單位的淀粉酶(諾維信公司,α -淀粉酶),在90°C、ρΗ為5. 5的條件下酶解100分鐘,得到酶解產(chǎn)物。其中,將酶解產(chǎn)物通過用液壓式板框壓濾機進行壓濾,分離出酶解清液 (固含量為20重量% );之后加入115個酶活力單位的糖化酶(α -1,4-葡萄糖水解酶,諾維信公司),在60°C、pH為4. 5的條件下酶解420分鐘,得到淀粉質原料糖化清液。(3)使用步驟(2)得到的淀粉質原料糖化清液配制種子罐培養(yǎng)基,具體組成為相對于每升種子罐培養(yǎng)基,淀粉質原料糖化清液的用量為35克,玉米漿(干重為35重量% ) 的用量為80克,磷酸氫二鉀的用量為1. 0克,硫酸鎂的用量為0. 5克,硫酸銨的用量為10 克,蘇氨酸的用量為0. 2克,蛋氨酸的用量為0. 2克。將培養(yǎng)基加熱到121°C消毒,維持20分鐘后降溫至37°C并保持恒定。開啟攪拌,調節(jié)罐壓為0. IMPa,按照通風量與培養(yǎng)基1 0.5 體積比通入無菌空氣,用氨水調節(jié)PH至6.8并保持恒定。然后將黃色短桿菌菌種(菌株原種FB42購自江南大學)活化和增殖后接入種子罐中進行培養(yǎng),培養(yǎng)過程中每隔120分鐘取樣鏡檢并測定OD值,當鏡檢菌體形態(tài)正常且OD值達到0. 8時停止培養(yǎng),得到成熟種子液。(4)使用步驟( 得到的淀粉質原料糖化清液配制發(fā)酵培養(yǎng)基,具體組成為相對于每升發(fā)酵培養(yǎng)基,淀粉質原料糖化清液的用量為50克,糖蜜(產(chǎn)地新疆)的用量為40克, 玉米漿(干重為35重量% )的用量為30克,硫酸銨的用量為30克,磷酸氫二鉀的用量為 1. O克,硫酸鎂的用量為0. 5克,蘇氨酸的用量為0. 2克,蛋氨酸的用量為0. 2克,谷氨酸的用量為0. 3克。培養(yǎng)基加熱到121°C消毒30分鐘后降溫至37°C并保持恒定,用氨水調節(jié)pH 至 6. 9。(5)在發(fā)酵罐中裝入步驟(4)配制好的發(fā)酵培養(yǎng)基,發(fā)酵培養(yǎng)基體積為發(fā)酵罐體積的50%。使用步驟C3)所得的成熟種子液,接入發(fā)酵罐的培養(yǎng)基中進行發(fā)酵培養(yǎng),以接種后的發(fā)酵培養(yǎng)基為基準,步驟C3)所得的成熟種子液的接種量為15體積%。接種后連續(xù)流加步驟( 得到的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,流加步驟( 得到的淀粉質原料糖化清液的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在6-8克/升,流加硫酸銨的量使發(fā)酵液中銨根離子的濃度控制在0. 6-0. 8克/升,將罐壓控制為0. IMPa,發(fā)酵溫度控制為37°C,通氣量為 0. 7立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘,并用液氨調節(jié)PH維持在6. 9進行發(fā)酵培養(yǎng),在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液,相對于每升接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基,濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基的流加速度為0. 01 升/小時;流加成熟種子液的量使發(fā)酵液的OD值為0. 95-1. 35。流加步驟( 得到的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,以及流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液至發(fā)酵罐體積的75%時放料,放料體積為放料前發(fā)酵罐中培養(yǎng)基體積的 8%.發(fā)酵培養(yǎng)58小時后放罐,測定放罐的賴氨酸濃度(即終點賴氨酸含量,下同)和中間放料的賴氨酸濃度,計算單罐供酸量、轉化率、單位時間供酸和設備利用率見表1。實施例2本實施例用于說明本發(fā)明提供的賴氨酸的制備方法。淀粉質原料糖化清液的制備方法、種子罐培養(yǎng)基配方、種子罐成熟種子液培養(yǎng)方法、發(fā)酵罐培養(yǎng)基配方均與實施例1相同。發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基體積為發(fā)酵罐體積的40%。將成熟種子液接入發(fā)酵罐的培養(yǎng)基中進行發(fā)酵培養(yǎng),以接種后的發(fā)酵培養(yǎng)基為基準,種子液的接種量為12體積%。接種后連續(xù)流加制得的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,流加制得的淀粉質原料糖化清液的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在5-7克/升,流加硫酸銨的量使發(fā)酵液中銨根離子的濃度控制在0. 5-0. 7克/升,將罐壓控制為0. 08MPa,發(fā)酵溫度控制為35°C,通氣量為0. 8立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘,并用液氨調節(jié)PH維持在6. 7進行發(fā)酵培養(yǎng),在發(fā)酵培養(yǎng)20 小時后,向發(fā)酵液中流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液,相對于每升接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基,濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基的流加速度為0. 007升/小時; 流加成熟種子液的量使發(fā)酵液的OD值為0. 95-1. 35。流加制得的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,以及流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液至發(fā)酵罐體積的70%時放料,放料體積為放料前發(fā)酵罐中培養(yǎng)基體積的5%。發(fā)酵培養(yǎng)68小時后放罐,測定放罐的賴氨酸濃度和中間放料的賴氨酸濃度,計算單罐供酸量、轉化率、單位時間供酸和設備利用率見表1。實施例3本實施例用于說明本發(fā)明提供的賴氨酸的制備方法。淀粉質原料糖化清液的制備方法、種子罐培養(yǎng)基配方、種子罐成熟種子液培養(yǎng)方法、發(fā)酵罐培養(yǎng)基配方均與實施例1相同。發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基體積為發(fā)酵罐體積的60%。將成熟種子液接入發(fā)酵罐的培養(yǎng)基中進行發(fā)酵培養(yǎng),以接種后的發(fā)酵培養(yǎng)基為基準,種子液的接種量為18體積%。接種后連續(xù)流加制得的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,流加制得的淀粉質原料糖化清液的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在8-10克/升,流加硫酸銨的量使發(fā)酵液中銨根離子的濃度控制在0. 8-1.0克/升,將罐壓控制為0. 05MPa,發(fā)酵溫度控制為38°C,通氣量為0. 9立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘,并用液氨調節(jié)PH維持在7. 0進行發(fā)酵培養(yǎng),在發(fā)酵培養(yǎng)20 小時后,向發(fā)酵液中流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液,相對于每升接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基,濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基的流加速度為0. 012升/小時; 流加成熟種子液的量使發(fā)酵液的OD值為0. 95-1. 35。流加制得的淀粉質原料糖化清液和硫酸銨,以及流加濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基和成熟種子液至發(fā)酵罐體積的80%時放料,放料體積為放料前發(fā)酵罐中培養(yǎng)基體積的10%。發(fā)酵培養(yǎng)96小時后放罐,測定放罐的賴氨酸濃度和中間放料的賴氨酸濃度,計算單罐供酸量、轉化率、單位時間供酸和設備利用率見表1。對比例1按照實施例1的方法制備賴氨酸,不同的是,在發(fā)酵培養(yǎng)過程中不向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質和成熟種子液,發(fā)酵培養(yǎng)48小時后放罐,測定放罐的賴氨酸濃度和中間放料的賴氨酸濃度,計算單罐供酸量、轉化率、單位時間供酸和設備利用率見表1。表 權利要求
1.一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,所述方法包括將賴氨酸發(fā)酵菌種接入賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,在流加碳源和流加氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng),其特征在于,在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質。
2.根據(jù)權利要求1所述的方法,其中,以接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基為基準,所述賴氨酸發(fā)酵菌種的接種量為12-18體積%。
3.根據(jù)權利要求2所述的方法,其中,所述流加碳源的量使發(fā)酵液中還原性糖的濃度控制在5-10克/升,所述流加氮源的量使發(fā)酵液中氮的濃度控制在0. 35-0. 8克/升。
4.根據(jù)權利要求1-3中任意一項所述的方法,其中,所述營養(yǎng)物質為濃度加倍的發(fā)酵培養(yǎng)基,相對于每升接種后且流加碳源和流加氮源之前的發(fā)酵培養(yǎng)基,所述營養(yǎng)物質的流加速度為0. 007-0. 012升/小時。
5.根據(jù)權利要求1-4中任意一項所述的方法,其中,所述方法還包括在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵菌種。
6.根據(jù)權利要求5所述的方法,其中,賴氨酸發(fā)酵菌種流加的量使發(fā)酵液的OD值為 0. 95-1. 35。
7.根據(jù)權利要求1-6中任意一項所述的方法,其中,所述流加為連續(xù)流加。
8.根據(jù)權利要求1-7中任意一項所述的方法,其中,所述發(fā)酵培養(yǎng)在發(fā)酵罐中進行,接種后且流加碳源和流加氮源之前發(fā)酵罐中的培養(yǎng)基的體積為發(fā)酵罐體積的40-60 %,流加碳源和氮源以及流加營養(yǎng)物質至發(fā)酵罐體積的70-80 %時放料,放料體積為放料前發(fā)酵罐中發(fā)酵液體積的5-10%。
9.根據(jù)權利要求8所述的方法,其中,所述方法還包括從所述放料的溶液中提取賴氨酸。
10.根據(jù)權利要求1-9中任意一項所述的方法,其中,所述發(fā)酵培養(yǎng)的條件為溫度為 35_38°C,壓力為0. 05-0. lMPa,pH值為6. 7-7. 0,通氣量為0. 5-1. 2立方米空氣/立方米的培養(yǎng)基/分鐘。
11.根據(jù)權利要求1-10中任意一項所述的方法,其中,所述賴氨酸發(fā)酵菌種為谷氨酸棒桿菌、大腸桿菌和黃色短桿菌中的至少一種。
12.根據(jù)權利要求1-11中任意一項所述的方法,其中,所述碳源為淀粉質原料糖化清液。
13.根據(jù)權利要求1-12中任意一項所述的方法,其中,所述氮源為銨鹽。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,所述方法包括將賴氨酸發(fā)酵菌種接入賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基中,在流加碳源和流加氮源的條件下,進行發(fā)酵培養(yǎng),其特征在于,在發(fā)酵培養(yǎng)20小時后,向發(fā)酵液中流加賴氨酸發(fā)酵培養(yǎng)所需的營養(yǎng)物質。本發(fā)明提供的賴氨酸連續(xù)發(fā)酵的方法,大大延長了發(fā)酵培養(yǎng)的時間,提高了賴氨酸菌種的代謝能力,在設備不出現(xiàn)故障和培養(yǎng)基不染菌的情況下,發(fā)酵可以一直進行下去,提高了單位時間供酸量,并提高了設備利用率,進而降低了賴氨酸發(fā)酵成本。
文檔編號C12R1/19GK102533889SQ20121000936
公開日2012年7月4日 申請日期2012年1月13日 優(yōu)先權日2012年1月13日
發(fā)明者盧宗梅, 吳曉艷, 邵引剛, 鐘華, 陳修 申請人:中糧生物化學(安徽)股份有限公司
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