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斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白h基因序列及其制備方法和用途

文檔序號:483541閱讀:260來源:國知局
斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白h基因序列及其制備方法和用途
【專利摘要】本發(fā)明公開了一種斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因序列及其制備方法和用途,旨在提供斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因序列,可以作為設(shè)計抗腫瘤藥物的靶位點或者調(diào)節(jié)斑節(jié)對蝦卵巢發(fā)育過程,有利于人工繁殖斑節(jié)對蝦細(xì)胞;該H基因序列的核苷酸如SEQ?ID?NO:1所示;制備方法是通過提取斑節(jié)對蝦總RNA來cDNA第一鏈的合成,再以合成的第一鏈cDNA作為模板,利用降落PCR法,用接頭引物和cycH-F1、cycH-F2對目的基因的3ˊ末端進(jìn)行兩次PCR擴(kuò)增;然后對斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因的測定,最后進(jìn)行對斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因分布和表達(dá)測定;屬于分子生物學(xué)中基因克隆領(lǐng)域。
【專利說明】斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列及其制備方法和用途

【技術(shù)領(lǐng)域】
[0001] 本發(fā)明涉及一種細(xì)胞周期蛋白Η基因序列,具體地說,是涉及一種斑節(jié)對蝦細(xì)胞 周期蛋白Η基因序列,本發(fā)明還涉及該斑斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,屬 于分子生物學(xué)中基因克隆領(lǐng)域。

【背景技術(shù)】
[0002] 細(xì)胞周期調(diào)控是一個精確調(diào)控的過程。在細(xì)胞分裂過程中真核生物的細(xì)胞周期可 以概括為兩個大的階段:細(xì)胞分裂間期(即G1時期、S時期和G2時期)和細(xì)胞分裂期(即 Μ時期),在細(xì)胞分裂時期,需要許多周期蛋白參與調(diào)控以保證其精確性。
[0003] 周期蛋白Η基因做為CAK的重要組成部分,從酵母到人類具有高度的保守型。CAK 的激活需要周期蛋白Η基因與CDK7及ΜΑΤΙ結(jié)合,通過對CAK的磷酸化來實現(xiàn)其激酶活性。 周期蛋白Η基因也參與通用轉(zhuǎn)錄復(fù)合物TFIIH的構(gòu)成。TFIIH是一個多蛋白復(fù)合物,在轉(zhuǎn) 錄、DNA修復(fù)及細(xì)胞周期調(diào)控中起重要作用。與其他周期蛋白相比周期蛋白Η基因在整個 細(xì)胞周期中表達(dá)量穩(wěn)定,所有周期時相均有表達(dá)。另有證據(jù)表明CDK2、CDK4及CDK6等的磷 酸化都與周期蛋白Η基因密切相關(guān),周期蛋白Η基因通過對這些底物的磷酸化從而實現(xiàn)對 細(xì)胞周期的準(zhǔn)確調(diào)控,進(jìn)而可以實現(xiàn)對卵巢發(fā)育的調(diào)控。
[0004] 長期以來,斑節(jié)對蝦的人工繁育問題一直都是限制斑節(jié)對蝦養(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)發(fā)展的技術(shù) 瓶頸。在實際生產(chǎn)過程中,親蝦的性腺成熟參差不齊,難以集中育苗的問題是對蝦養(yǎng)殖過程 中一個非常重要的限制因素。眼柄切除手術(shù)作為促進(jìn)親蝦性腺同步成熟的常用方法,對親 蝦本身存在非常大破壞性,不利于可持續(xù)養(yǎng)殖,加大了養(yǎng)殖成本。因此出于尋求一種新的對 蝦繁育方法的需求,對對蝦卵巢發(fā)育機(jī)理及其分子調(diào)控機(jī)理進(jìn)行研究勢在必行。


【發(fā)明內(nèi)容】

[0005] 針對上述問題,本發(fā)明的以實驗室高通量測序獲得的EST序列為基礎(chǔ)設(shè)計的PCR 擴(kuò)增引物,并通過RACE技術(shù)克隆到斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的全表達(dá)序列,有利于人 工催熟斑節(jié)對蝦。
[0006] 為解決前一技術(shù)問題,本發(fā)明提供的第一個技術(shù)方案是這樣的:該斑節(jié)對蝦細(xì)胞 周期蛋白Η基因序列,其核苷酸序列如SEQ ID Ν0 :1所示。
[0007] 本發(fā)明提供的后一技術(shù)方案是這樣的:該斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制 備方法,依次包括下述方法 :
[0008] 1)總RNA的提取
[0009] 對斑節(jié)對蝦解剖并取出肌肉、卵巢、肝胰腺、腦、心臟、腸、精巢、胃組織,并分別將 各組織溶于Trizol中勻漿,提取斑節(jié)對蝦總RNA并用DEPC水懸浮,保存;
[0010] 2)cDNA第一鏈的合成
[0011] 將步驟1)中的斑節(jié)對奸總RNA與反轉(zhuǎn)錄引物混合,在反轉(zhuǎn)錄酶的作用下合成cDNA 第一鏈;
[0012] 3)斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的PCR擴(kuò)增、克隆
[0013] 以步驟2)合成的第一鏈cDNA作為模板利用降落PCR法,用接頭引物和cycH-Fl、 cycH-F2對目的基因的:Τ末端進(jìn)行兩次PCR擴(kuò)增得PCR產(chǎn)物;
[0014] 4)對斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的測定
[0015] 對步驟3)所得到的PCR產(chǎn)物分離檢測、純化后,再將PCR產(chǎn)物克隆到pMD-18T載 體中,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5ci感受態(tài)細(xì)胞,挑取陽性克隆,測序;
[0016] 5)斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的分布和表達(dá)
[0017] a)提取斑節(jié)對蝦不同組織以及不同發(fā)育時期的卵巢的總RNA,按照 PremeScriptTM RT reagent Kit操作手冊進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄為cDNA模板;將不同組織樣品cDNA 稀釋作為模板,采用SYBR Green I染料法,在Eppendorf?熒光定量PCR儀上進(jìn)行擴(kuò)增和數(shù) 據(jù)分析;
[0018] b)依照 TaKaRa SYBR? PrimeScriptTM RTPCR Kit 試劑盒說明書進(jìn)行 PCR 反應(yīng), 實驗數(shù)據(jù)采用相對Λστ法分析斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因在各樣品中的相對表達(dá)量。
[0019] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,步驟2)所述的 反轉(zhuǎn)錄引物反轉(zhuǎn)錄引物為:5>GGCCACGCGACTAGTAC(T) 16〈3。
[0020] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于,步 驟2)所述的反轉(zhuǎn)錄酶為M-MLV。
[0021] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,步驟2)所述的 反應(yīng)條件:42°C 60min,70°C 15min。
[0022] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,步驟3)所述的 接頭引物為:5>GGCCACGCGTCGACTAGTAC〈3。
[0023] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,步驟3)所述的
[0024] cycH-Fl :5>AACCATTCCGCCCAGTAGAAG<3 ;
[0025] cycH-F2 :5>AACCTCCTGCCTCGGACACT〈3。
[0026] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因序列的制備方法,步驟3)中兩次 擴(kuò)增的所述反應(yīng)條件均為:94°C,5min ;94°C,30s ;55°C,45s,35cycles ;72°C,60s ;72°C, 10min〇
[0027] 進(jìn)一步的,上述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因序列的制備方法,步驟b)中PCR 反應(yīng)使用引物步驟b)中PCR反應(yīng)使用引物為:
[0028] RTCYCH-F :5>CGTGAGATTGAAGGCAAGTTAGA<3 ;
[0029] RTCYCH-R :5>GCTTCCCCAATGCAGGAA〈3。
[0030] 該斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列作為設(shè)計抗腫瘤藥物的靶位點或者調(diào)節(jié)斑 節(jié)對蝦卵巢發(fā)育過。
[0031] 與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明提供的技術(shù)方案具有如下優(yōu)點:
[0032] 1、本發(fā)明提供的技術(shù)方案是以實驗室高通量測序獲得的EST序列為基礎(chǔ)設(shè)計的 PCR擴(kuò)增引物,并通過RACE技術(shù)克隆到斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的全表達(dá)序列;此外 通過斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因設(shè)計熒光定量PCR引物,對周期蛋白Η基因在斑節(jié)對蝦 卵巢各個發(fā)育時相的分布情況及在不同組織中的分布情況進(jìn)行研究分析,更好的了解生物 體細(xì)胞中的信號通路的機(jī)制。不僅為研究斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因在卵巢發(fā)育中的作 用奠定基礎(chǔ),而且可以為斑節(jié)對蝦養(yǎng)殖過程中所出現(xiàn)的性腺發(fā)育參差不齊的情況從分子層 面提供理論基礎(chǔ);有利于人工繁育斑節(jié)對蝦,并且減小了養(yǎng)殖成本。
[0033] 2、本發(fā)明提供的細(xì)胞周期蛋白Η作為細(xì)胞周期調(diào)控中一個重要的蛋白,在細(xì)胞分 裂、細(xì)胞周期調(diào)控、腫瘤發(fā)生、DNA的轉(zhuǎn)錄修復(fù)等方面起重要作用,也是對相關(guān)方向進(jìn)行研究 的一個重要突破點,可以用來作為抗腫瘤藥物設(shè)計的靶位點,在斑節(jié)對蝦卵巢發(fā)育過程中 起重要作用。

【專利附圖】

【附圖說明】
[0034] 圖1是斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因 mRNA組織表達(dá)模式;
[0035] 其中:垂直線表示平均值土標(biāo)準(zhǔn)誤差(重重復(fù)樣品數(shù)=4),不同的字母表示存在 顯著性差異(P〈〇. 05)。
[0036] 圖2是斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因 mRNA卵巢發(fā)育六期表達(dá)模式;
[0037] 其中:垂直線表示平均值土標(biāo)準(zhǔn)誤差(重重復(fù)樣品數(shù)=4)。不同的字母表示存 在顯著性差異(P〈〇. 05)。

【具體實施方式】
[0038] 為了更好的理解、實施本發(fā)明的權(quán)利要求,下面結(jié)合具體實施例,對本發(fā)明的權(quán)利 要求做進(jìn)一步的詳細(xì)說明,但本發(fā)明并不限于下述實施例,而是以權(quán)利要求為限。
[0039] 1、總RNA的提取
[0040] 試驗所用的雌雄斑節(jié)對蝦(鮮重200g左右)均取自于海南三亞,室內(nèi)水族箱內(nèi)暫 養(yǎng)三天,水溫控制在24?25°C之間。解剖,取肌肉、卵巢、肝胰腺、腦、心臟、腸、精巢、胃等組 織,并分別將組織于lmL Trizol(Invitrogen,日本)中勻楽,按Trizol試劑盒使用手冊提 取斑節(jié)對蝦總RNA并用DEPC水懸浮,電泳觀察所提取RNA的完整性,并置于-80°C保存。
[0041] 1、總RNA具體提取步驟:
[0042] (1)加 200 μ L 預(yù)冷氯仿,渦旋振蕩 lmin 混勻,靜置 5min,12000g,4°C,15min。
[0043] (2)取三分之一上清溶液,加入等體積的預(yù)冷的異丙醇,顛倒混勻,冰上放置 lOmin,12000g,4°C,lOmin。
[0044] (3)倒掉上清,加 lmL75%乙醇重懸沉淀,7500g,4°C離心5min。
[0045] (4)重復(fù)步驟3 -次,并用槍頭吸出上清,干燥5?lOmin
[0046] (5)加 40 μ LddH20 溶解沉淀
[0047] (6) RNA的電泳檢測:將電泳槽、梳齒等置于3% H202過夜浸泡,配置1. 5%的瓊脂 糖凝膠(用〇. 5 X TBE溶液配制),取5 μ L總RNA加1 μ L上樣緩沖液,進(jìn)行30min電泳檢 測,對提取的RNA質(zhì)量進(jìn)行測定。
[0048] 2、cDNA第一鏈的合成
[0049] 取步驟1中斑節(jié)對蝦總RNA與反轉(zhuǎn)錄引物(5>GGCCACGCGACTAGTAC (T) 16〈3) (10pmol/L)混合在反轉(zhuǎn)錄酶(M-MLV,Promega,USA)的作用下合成cDNA-鏈,
[0050] cDNA的反轉(zhuǎn)錄實驗按照相關(guān)試劑盒(PrimeScript II 1st Strand cDNA Synthesis Kit (TaKaRa))操作方法進(jìn)行。
[0051]

【權(quán)利要求】
1. 一種斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列,其核苷酸序列如SEQ ID NO :1所示。
2. 制備權(quán)利要求1所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的方法,其特征在于,依次 包括下述方法: 1) 總RNA的提取 對斑節(jié)對蝦解剖并取出肌肉、卵巢、肝胰腺、腦、心臟、腸、精巢、胃組織,并分別將各組 織溶于Trizol中勻漿,提取斑節(jié)對蝦總RNA并用DEPC水懸浮,保存; 2. cDNA第一鏈的合成 將步驟1)中的斑節(jié)對奸總RNA與反轉(zhuǎn)錄引物混合,在反轉(zhuǎn)錄酶的作用下合成cDNA第 一鏈; 3) 斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的PCR擴(kuò)增、克隆 以步驟2)合成的第一鏈cDNA作為模板利用降落PCR法,用接頭引物和cycH-F 1、 cycH-F2對目的基因的:Τ末端進(jìn)行兩次PCR擴(kuò)增得PCR產(chǎn)物; 4) 對斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的測定 對步驟3)所得到的PCR產(chǎn)物分離檢測、純化后,再將PCR產(chǎn)物克隆到pMD-18T載體中, 轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5ci感受態(tài)細(xì)胞,挑取陽性克隆,測序; 5) 斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因的分布和表達(dá) a) 提取斑節(jié)對奸不同組織以及不同發(fā)育時期的卵巢的總RNA,按照PremeScriptTM RT reagent Kit操作手冊進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄為cDNA模板;將不同組織樣品cDNA稀釋作為模板,采用 SYBR Green I染料法,在Eppendorf熒光定量PCR儀上進(jìn)行擴(kuò)增和數(shù)據(jù)分析; b) 依照TaKaRaSYBR? PrimeScriptTM RTPCR Kit試劑盒說明書進(jìn)行PCR反應(yīng),實驗 數(shù)據(jù)采用相對△CT法分析斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因在各樣品中的相對表達(dá)量。
3. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟2)所述的反轉(zhuǎn)錄引物為:5>GGCCACGCGACTAGTAC(T)16〈3。
4. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟2)所述的反轉(zhuǎn)錄酶為M-MLV。
5. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟2)所述的反應(yīng)條件:42°C 60min,70°C 15min。
6. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟3)所述的接頭引物為:5>GGCCACGCGTCGACTAGTAC〈3。
7. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟 3)所述的 cycH-Fl 為:5>AACCATTCCGCCCAGTAGAAG〈3 ; cycH-F2 為:5>AACCTCCTGCCTCGGACACT〈3。
8. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列的制備方法,其特征在 于,步驟3)中兩次擴(kuò)增所述的反應(yīng)條件均為:94°C,5min ;94°C,30s ;55°C,45s,35cycles ; 72°C,60s ;72°C,lOmin。
9. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白H基因序列的制備方法,其特征在于, 步驟b)中PCR反應(yīng)使用引物為: RTCYCH-F :5>CGTGAGATTGAAGGCAAGTTAGA<3 ; RTCYCH-R : 5>GCTTCCCCAATGCAGGAA〈3。
10.權(quán)利要求1所述的斑節(jié)對蝦細(xì)胞周期蛋白Η基因序列作為設(shè)計抗腫瘤藥物的靶位 點或者調(diào)節(jié)斑節(jié)對蝦卵巢發(fā)育過程。
【文檔編號】C12N15/70GK104099339SQ201410366921
【公開日】2014年10月15日 申請日期:2014年7月29日 優(yōu)先權(quán)日:2014年5月20日
【發(fā)明者】趙超, 邱麗華, 江世貴, 周發(fā)林, 傅明駿 申請人:中國水產(chǎn)科學(xué)研究院南海水產(chǎn)研究所
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