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一種分泌表達(dá)人Kallistatin的重組酵母菌株及生產(chǎn)工藝的制作方法

文檔序號(hào):3565615閱讀:168來源:國知局

專利名稱::一種分泌表達(dá)人Kallistatin的重組酵母菌株及生產(chǎn)工藝的制作方法
技術(shù)領(lǐng)域
:本發(fā)明涉及分子藥物學(xué),生物技術(shù)和疾病防治,具體地說是采用酵母菌株生產(chǎn)人Kallistatin(Kal)的生產(chǎn)工藝,分泌表達(dá)載體的構(gòu)建,發(fā)酵條件和純化方法。
背景技術(shù)
:目前惡性腫瘤已經(jīng)成為發(fā)達(dá)國家和地區(qū)居于前列的致死性疾病。雖然外科手術(shù),放療和化療作為的常規(guī)治療手段仍在不斷發(fā)展,但由于其固有的局限,其療效已基本達(dá)到極限,因而迫切需要開發(fā)新的治療手段。自從Folkman于1971年首次闡述腫瘤與新生血管依賴關(guān)系,并提出有關(guān)分子機(jī)制假說以來,以腫瘤新生血管為靶點(diǎn)的抗血管生成治療成為抗腫瘤研究的熱點(diǎn)。Kal是一新型的具有抗血管生成作用的內(nèi)源性蛋白(MiaoRQ,etal.Blood2002;100:3245-52),其抗血管生成作用與內(nèi)皮抑素(endostatin)類似。內(nèi)皮抑素通過其肝素結(jié)合活性介導(dǎo)其對(duì)血管生成的抑制作用。各種生長因子必須結(jié)合細(xì)胞表面兩種不同的受體,才能引發(fā)一個(gè)信號(hào)。硫酸肝素糖蛋白(HSPGs)是最普通的低吸附受體,在調(diào)節(jié)多種生長因子的作用時(shí),發(fā)揮關(guān)鍵作用。許多生長因子,如VEGF和bFGF是肝素結(jié)合生長因子,VEGF和bFGF與內(nèi)皮細(xì)胞表面的HSPGs結(jié)合,可以調(diào)節(jié)它們與專屬受體的結(jié)合。Kal是肝素結(jié)合蛋白,可以與VEGF和bFGF,以及其它含有肝素結(jié)合區(qū)的生長因子競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合HSPGs,因此阻斷了這些生長因子與HSPGs的結(jié)合,阻斷了這些生長因子引發(fā)的血管生成事件。另外,Kal還是絲氨酸蛋白酶抑制劑的一員,最初被認(rèn)為是組織胰激肽原酶結(jié)合蛋白。越來越多的證據(jù)顯示,組織胰激肽原酶在腫瘤相關(guān)事件中非常重要,其中包括腫瘤生長調(diào)節(jié),血管生成,侵入和轉(zhuǎn)移等。我們的研究發(fā)現(xiàn),在Kal的作用下,HCC中作為細(xì)胞增殖的標(biāo)志Ki-67染色降低,顯示Kal與組織胰激肽原酶的結(jié)合可能與HCC細(xì)胞增殖抑制有關(guān)。Kal可以從不同途徑抑制血管生成,因此是抗腫瘤血管生成治療的良好候選者。已進(jìn)行的Kal的抗腫瘤作用研究主要采用基因治療手段,而基因治療一般需要采用病毒載體,其長期應(yīng)用的風(fēng)險(xiǎn)是各國衛(wèi)生部門重點(diǎn)關(guān)注的問題,目前尚不明朗,很難在短期內(nèi)實(shí)現(xiàn)上市并廣泛應(yīng)用于腫瘤病人。而多種重組蛋白藥物已廣泛地應(yīng)用于臨床,相關(guān)技術(shù)比較成熟,是開發(fā)基因重組藥物最常規(guī)的手段。所以本領(lǐng)域研究人員試圖建立一種高效生產(chǎn)Kal重組蛋白的方法,研究其蛋白形式對(duì)腫瘤的作用,為新型抗腫瘤藥物的開發(fā)奠定基礎(chǔ)。Kal的發(fā)現(xiàn)者Chao等曾采用大腸桿菌表達(dá)Kal重組蛋白,但表達(dá)量很低。本課題組也曾用大腸桿菌表達(dá)人Kal蛋白,表達(dá)水平也極低,且雜蛋白多難以純化。畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)是近年來建立起來的一種真核表達(dá)系統(tǒng),已成功地表達(dá)了大量的重組蛋白,它既具有原核表達(dá)系統(tǒng)繁殖快、操作簡(jiǎn)單的優(yōu)點(diǎn),同時(shí)又具有原核表達(dá)系統(tǒng)所沒有的優(yōu)勢(shì)如能對(duì)表達(dá)的目的蛋白進(jìn)行正確加工、折疊及適度糖基化,分泌表達(dá)的雜蛋白少,易于分離純化等,因此越來越廣泛地用于重組蛋白的表達(dá)。國內(nèi)外文獻(xiàn)尚未有利用畢赤酵母表達(dá)Kal蛋白的報(bào)道。本發(fā)明人利用畢赤酵母表達(dá)人Kal蛋白,發(fā)現(xiàn)采用常規(guī)的技術(shù)方法得到的重組菌株表達(dá)水平很低,難以大規(guī)模生產(chǎn)。純化工藝也比較復(fù)雜?,F(xiàn)有市售酵母分泌型表達(dá)載體所用的信號(hào)肽幾乎全是a交配因子信號(hào)肽,重組蛋白的翻譯后加工需要兩種不同的酶參與,往往產(chǎn)生加工不均勻和不正確的現(xiàn)象,得到的重組蛋白的N端序列出現(xiàn)偏差。
發(fā)明內(nèi)容針對(duì)現(xiàn)有技術(shù)存在的問題和缺陷,本發(fā)明對(duì)市售的酵母分泌型表達(dá)載體pPIC9進(jìn)行改造,并從發(fā)酵工藝和純化工藝等多個(gè)環(huán)節(jié)進(jìn)行最佳條件的摸索和優(yōu)化,得到了可以高效表達(dá)人Kal的分泌型表達(dá)酵母菌株,并建立了可以用于工業(yè)化生產(chǎn)的發(fā)酵工藝和純化工藝。信號(hào)肽序列是分泌型酵母表達(dá)載體非常重要的表達(dá)元件,對(duì)于不同的目標(biāo)蛋白,a交配因子信號(hào)肽往往不能有效、正確的轉(zhuǎn)位和加工,因而所得到的目標(biāo)蛋白的N端序列經(jīng)常不是天然序列。本發(fā)明對(duì)多種信號(hào)肽序列進(jìn)行了篩選,從表達(dá)水平高低和N端序列正確與否等多個(gè)方面進(jìn)行了研究,確定了本發(fā)明載體的關(guān)鍵元件構(gòu)成。本發(fā)明采用廉價(jià)的B匪Y培養(yǎng)基即可成功地高水平分泌表達(dá)Kal蛋白。由于分泌的Kal蛋白成分水平高,下游純化非常方便,經(jīng)兩步層析純度即可達(dá)到98%以上,非常便于工藝化生產(chǎn)。圖1發(fā)酵上清液的WesternBlot分析。條帶1為酵母菌株GS115/pPIC9的發(fā)酵上清液,無Kal的陽性反應(yīng);帶1為酵母菌株Ka102的發(fā)酵上清液,呈現(xiàn)Kal的陽性反應(yīng)。箭頭所指為Kal蛋白。圖2發(fā)酵時(shí)間對(duì)重組Kal蛋白表達(dá)的影響。條帶1為分子量標(biāo)志;條帶2為酵母菌株Kal02的發(fā)酵上清液;條帶3為酵母菌株Kal02的第1天發(fā)酵上清液;條帶4為酵母菌株Kal02的第2天發(fā)酵上清液;條帶5為酵母菌株Kal02的第3天發(fā)酵上清液;條帶6為酵母菌株Kal02的第4天發(fā)酵上清液;條帶7為酵母菌株Kal02的第5天發(fā)酵上清液;條帶7為酵母菌株Kal02的第6天發(fā)酵上清液。箭頭所指為Kal蛋白。圖3各純化步驟產(chǎn)物的SDS-PAGE圖譜。條帶1為分子量標(biāo)志;條帶2為酵母菌株Kal02的發(fā)酵上清液;條帶3為PhenylSuperose疏水層析產(chǎn)物;條帶4為S印haroseFF親和層析產(chǎn)物。具體實(shí)施例方式l含a交配因子信號(hào)肽工程菌株的構(gòu)建1.1表達(dá)載體pPIC9-Ka101的構(gòu)建以含有KalcDNA全長序列的pAAV-Kal為模板,選用上游引物5'-aacctcgagaaaagagatggtgagagttgcagtaacagct-3'弓l入Xho1酶切位點(diǎn),下游弓l物5'ccagaattcctatggtttcgtggggtcgacgacc-3'引入EcoRI酶切位點(diǎn),用PyrobestDNA聚合酶,經(jīng)PCR得到人Kal成熟蛋白對(duì)應(yīng)的DNA序列。目的片段回收、酶切后插入至pPIC9載體的Xhol/EcoRI位點(diǎn)之間。轉(zhuǎn)化后經(jīng)菌落PCR、酶切等方法篩選出符合要求的陽性克隆,委托大連寶生物公司對(duì)pPIC9-Ka101進(jìn)行測(cè)序。1.2工程菌株KalOl的構(gòu)建與鑒定4pPIC9-Kal01表達(dá)載體經(jīng)StuI線性化,電轉(zhuǎn)化畢赤酵母GS115(his4)宿主菌,涂布MD平板,菌落PCR鑒定。將陽性克隆接種于含有3mLB匪Y酵母培養(yǎng)液的試管中,培養(yǎng)24h,用2X甲醇誘導(dǎo)48小時(shí),ELISA法測(cè)定目的蛋白含量。發(fā)酵上清液經(jīng)SDS-PAGE分離后電轉(zhuǎn)至硝酸纖維素膜上,用封閉液封閉2h,滴加一抗室溫孵育2h,洗滌液洗3次,滴加二抗室溫孵育2h,洗滌液洗3次,最后使用BeyoECL熒光檢測(cè)試劑檢測(cè)目的蛋白,X膠片曝光后顯影、定影。2含人白蛋白信號(hào)肽工程菌株的構(gòu)建2.1表達(dá)載體pPIC9-Ka102的構(gòu)建依據(jù)NCBI中報(bào)道的編碼白蛋白信號(hào)肽(NP_000468)序列以及編碼人成熟Kal蛋白序列設(shè)計(jì)引物,上游引物1:5'-CAGGATCCCAAACGATGAAGTGGGTAACCTTTATTTCCCTTCTTTTTCTCTTTAGC-3',上游引物2:5'-CCCTTCTTTTTCTCTTTAGCTCGGCTTATTCCGATGGTGAGAGTTGCAGTAAC-3'和下游引物5'-CCAGAATTCCTATGGTTTCGTGGGGTCGACGACC-3',引入BamHI、EcoRI酶切位點(diǎn)。利用合成的引物通過兩次重疊PCR從pAAV-Kal質(zhì)粒中擴(kuò)增出人Kal成熟蛋白對(duì)應(yīng)的DNA序列。目的片段回收、酶切后插入至pPIC9載體的BamHI-EcoRI位點(diǎn)之間。轉(zhuǎn)化后經(jīng)菌落PCR、酶切等方法篩選出符合要求的陽性克隆,委托大連寶生物公司對(duì)pPIC9-Ka102進(jìn)行測(cè)序。2.2工程菌株Kal02的構(gòu)建與鑒定按照1.2步驟同法操作。3含人Kal信號(hào)肽工程菌株的構(gòu)建3.1表達(dá)載體pPIC9-Ka103的構(gòu)建依據(jù)編碼人Kal蛋白序列設(shè)計(jì)引物,上游引物1:5'-CAGGATCCCAAACGATGCATCTTATCGA-3'下游引物5'-CCAGMTTCCTATGGTTTCGTGGGGTCGACGACC-3',引入BamH1、EcoRI酶切位點(diǎn)。利用合成的弓I物通過兩次重疊PCR從pAAV-Kal質(zhì)粒中擴(kuò)增出人Kal成熟蛋白對(duì)應(yīng)的DNA序列。目的片段回收、酶切后插入至pPIC9載體的BamHI-EcoRI位點(diǎn)之間。轉(zhuǎn)化后經(jīng)菌落PCR、酶切等方法篩選出符合要求的陽性克隆,委托大連寶生物公司對(duì)pPIC9-Ka103進(jìn)行測(cè)序。3.2工程菌株Kal03的構(gòu)建與鑒定按照1.2步驟同法操作。4工程菌株的篩選將從不同工程菌株所得到的Kal表達(dá)水平和N-端序列測(cè)定結(jié)果進(jìn)行分析工程菌株Kal03的表達(dá)產(chǎn)物N-端序列與天然產(chǎn)物一致,但表達(dá)水平很低;工程菌株KalOl的表達(dá)產(chǎn)物N-端序列出現(xiàn)與天然產(chǎn)物不一致現(xiàn)象,但表達(dá)水平高;工程菌株Kal02的表達(dá)產(chǎn)物N-端序列與天然產(chǎn)物一致,表達(dá)水平也很高。工程菌株Kal02發(fā)酵上清液的WesternBlot分析見圖1。5發(fā)酵條件的優(yōu)化5.l培養(yǎng)基選取B匪和B匪Y兩種常用培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),將培養(yǎng)上清直接進(jìn)行電泳分離,B匪Y培養(yǎng)基的上清液可見清晰的Kal條帶,而B匪培養(yǎng)基的上清液中Kal蛋白條帶非常模糊。經(jīng)ELISA測(cè)定B匪、B匪Y培養(yǎng)基中的Kal表達(dá)水平(見表1),B匪Y培養(yǎng)基中的表達(dá)是B匪的53倍。表1培養(yǎng)基成份對(duì)Kal蛋白表達(dá)i<table>tableseeoriginaldocumentpage6</column></row><table>表2)。5.2pH值選用不同pH的B匪Y培養(yǎng)基進(jìn)行發(fā)酵,ELISA測(cè)得發(fā)酵上清液中Kal蛋白含量(見可見該菌種最佳表達(dá)的PH值為7.0。表2pH對(duì)Kal蛋白表達(dá)量影響(n=3)<table>tableseeoriginaldocumentpage6</column></row><table>5.3甲醇濃度在pH7的B匪Y培養(yǎng)基中進(jìn)行發(fā)酵,選用不同濃度的甲醇誘導(dǎo)Kal蛋白的表達(dá),ELISA法測(cè)得發(fā)酵上清液Kal蛋白含量(見表3)。可見誘導(dǎo)Kal蛋白表達(dá)的最佳甲醇濃度為2%。表3甲醇濃度對(duì)Kal蛋白表達(dá)影響(n=3)<table>tableseeoriginaldocumentpage6</column></row><table>5.4發(fā)酵時(shí)間在pH7的BMMY培養(yǎng)基中進(jìn)行發(fā)酵,采用2%甲醇誘導(dǎo),在不同的發(fā)酵時(shí)間取樣,ELISA法測(cè)定發(fā)酵上清中Kal蛋白含量。隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,Kal的表達(dá)逐漸增加,產(chǎn)物的時(shí)間積累效果顯著,在第5天達(dá)到最高水平,之后上清中雜蛋白條帶增多,Kal蛋白含量降低(SDS-PAGE圖譜見圖2)。6Kal蛋白的純化Kal蛋白純化過程包括發(fā)酵上清液的硫酸銨預(yù)處理和連續(xù)的兩步層析。預(yù)處理后的上清液經(jīng)過PhenylSuperose介質(zhì)疏水層析,平衡緩沖液為20mmol/LTris-HCl,l.5mol/L硫酸銨,pH6.O,用20,1/LTris-HCl,O.4mol/L硫酸銨,pH6.0緩沖液洗脫;洗脫液透析后經(jīng)過H印arinS印haroseFF介質(zhì)親和層析,用20mmol/LTris-HCl,0.5mol/LNaCl,pH6.0緩沖液洗脫,此步洗脫液經(jīng)過透析后過濾除菌就得到Kal蛋白原液。純化的Kal蛋白經(jīng)Westernblotting鑒定為陽性,用ELISA測(cè)定Kal蛋白原液濃度為0.404mg/mL。通過該純化工藝,可以從每升發(fā)酵上清中獲得7g純度大于98X的的Kal蛋白。不同純化步驟產(chǎn)物的SDS-PAGE見圖3。7對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖的影響將血管內(nèi)皮細(xì)胞HUVEC細(xì)胞(lXl()S細(xì)胞/ml)接種至96孔板,每孔100iil,細(xì)胞貼壁后加入重組Kal蛋白,培養(yǎng)48h后MTT法檢測(cè)細(xì)胞活性。結(jié)果3iimol/LKal蛋白組抑制率為60%±1%,1.5iimol/LKal蛋白組抑制率為25%±1%,0.75踐ol/LKal蛋白組抑制率為15%±2%,表現(xiàn)出量效關(guān)系,陽性對(duì)照藥內(nèi)皮抑素(3iimol/L)抑制率為32%±0.9%。權(quán)利要求一種表達(dá)人kallistatin的分泌型表達(dá)載體,該載體含有一個(gè)重組基因表達(dá)框,其特征在于表達(dá)框中含有去除了原信號(hào)肽序列的人kallistatin的cDNA序列,原信號(hào)肽序列被更換為人白蛋白信號(hào)肽序列,該表達(dá)框被插入至甲醇酵母分泌型表達(dá)載體pPIC9的BamHI和EcoRI位點(diǎn),構(gòu)建成人kallistatin分泌型表達(dá)載體。2.—種重組酵母菌株,其特征在于由權(quán)利要求1所述的分泌型表達(dá)載體轉(zhuǎn)化畢赤酵母GS115(his4)宿主菌所得,可以分泌表達(dá)人kallistatin。3.—種重組酵母菌株的培養(yǎng)條件,其特征為采用B匪Y培養(yǎng)基,培養(yǎng)基的pH范圍為58,甲醇濃度為0.5%3%,培養(yǎng)時(shí)間為25天。4.一種優(yōu)選的重組酵母菌株的培養(yǎng)條件,其特征為采用B匪Y培養(yǎng)基,培養(yǎng)基的pH范圍為6.57.5,甲醇濃度為2%,培養(yǎng)時(shí)間為5天。5.—種人kal1istatin的純化工藝,其特征為采用權(quán)利要求3或權(quán)利要求4所述的培養(yǎng)條件對(duì)權(quán)利要求2所述的重組酵母菌株進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)上清液經(jīng)硫酸銨預(yù)處理,PhenylSuperose疏水層析,H印arinS印haroseFF親和層析后,除菌過濾得到人kallistatin原液。6如權(quán)利要求5所述的PhenylSuperose疏水層析,其平衡緩沖液為20mmol/LTris-HCl,1.5mol/L硫酸銨,pH6.0;其洗脫液為20mmol/LTris-HC1,0.4mol/L硫酸銨。7.如權(quán)利要求5所述的H印arinS印haroseFF親和層析,其洗脫液為20mmol/LTris-HCl,O.5mol/LNaCl,pH6.0。全文摘要本發(fā)明涉及抗腫瘤藥物人Kallistatin的生產(chǎn)方法和工藝。本發(fā)明涉及分泌表達(dá)人Kallistatin的酵母工程菌株構(gòu)建的關(guān)鍵技術(shù)、構(gòu)建結(jié)果及利用它來生產(chǎn)人Kallistatin的最佳發(fā)酵條件和純化方法。文檔編號(hào)C07K1/20GK101724650SQ20091026322公開日2010年6月9日申請(qǐng)日期2009年12月17日優(yōu)先權(quán)日2009年12月17日發(fā)明者刁勇,李招發(fā),許瑞安,黃曉平申請(qǐng)人:刁勇;許瑞安
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