用于提取果膠的方法
【專利摘要】本文所提供的方法的實施方式允許使用用于提取含果膠的材料的草酸來從含果膠的植物材料中提取高品質(zhì)的果膠。一般而言，用于提取具有高的聚合度的果膠的方法包括：制備含果膠的植物材料的水懸浮液；以足以提供具有在3.0和3.6之間的pH和大于鈣（II）的總摩爾濃度的草酸鹽的總摩爾濃度的混合物的量，將草酸和/或水溶性草酸鹽添加到水懸浮液；將混合物加熱至從約50℃至約80℃的溫度，持續(xù)足以從含果膠的植物材料中提取果膠的時間；以及從混合物分離經(jīng)提取的果膠。期望地，經(jīng)提取的果膠以具有至少72的酯化度（DE）和高的聚合度為特征，所述聚合度通過大于約6.5dL/g的特性粘度來表征。
【專利說明】用于提取果膠的方法【技術領域】
[0001]本說明書的實施方式涉及用于提取高品質(zhì)的果膠的方法。尤其，本說明書涉及用于從柑橘類的果皮中提取果膠的低溫方法，該方法避免了果膠在提取過程期間的顯著降解。
[0002]背景
[0003]果膠是與植物細胞壁相關的復合多糖。它包含用鼠李糖殘基插入且用中性糖側鏈和非糖組分比如乙?；⒓谆桶⑽核峄鶊F改性的α 1-4鍵連接的多聚半乳糖醛酸主鏈。包括阿拉伯聚糖(arabinan)和阿拉伯半乳聚糖的中性糖側鏈被附接到主鏈中的鼠李糖殘基上。
[0004]由于其作為食物產(chǎn)品、食用纖維和在高等植物中的細胞壁的組分的重要性，且由于許多藥理活性的增進的了解，因此已經(jīng)對果膠進行了大量的研究。然而，目前提取果膠的方法沒有生產(chǎn)出品質(zhì)足以用于所有此類用途的果膠。
[0005]常規(guī)的果膠提取方法需要在酸性介質(zhì)(pH低于2.2)中在亞沸溫度(sub-boilingtemperature)(大約65_85°C )下延長加熱含果膠的植物材料,持續(xù)I至10小時。然而，這些方法具有高的停留時間和能量需要，且使用逆流方法(即，使用數(shù)量為η的提取階段的方法，關于所述方法，初始原料轉到提取階段#1，初始的純水進入階段#η，且對于任何階段#i，假設l〈i〈n，液體來自階段i+Ι，而固體來自階段i_l)僅可以提供中等收率(20-30%)的果膠。因此，由于酸性條件是腐蝕性的(aggressive),且由于相當大部分的果膠變得反復暴露于酸性條件，因此果膠通常在常規(guī)的提取過程期間降解。
[0006]如本領域的技術人·員將理解的，用盡可能低的成本提取到具有盡可能高的聚合度(DP)的果膠是期望的。生產(chǎn)條件如固/液比率、酸度、溫度等的選擇都影響這些相沖突的考慮。例如，為了用常規(guī)方法來達到甚至適當高的收率，提取條件必須是腐蝕性的。此外，在提取后，固-液分離應盡可能的徹底，因為在分離后由固體保留的液體將被再次暴露于腐蝕性提取條件(歸因于逆流提取設置)。然而，對于將盡可能徹底的分離，液體的粘度應優(yōu)選地是低的，這是通過在高溫下分離、用低的固/液比率來分離或兩者的組合來實現(xiàn)的。然而，高溫結合低PH的使用不利于果膠品質(zhì)(例如，其聚合度)。相反，低的固/液比率變得成本高，因為需要通過蒸發(fā)或通過醇的蒸餾來從果膠中除去較大量的水。因此，依然存在對用于提取果膠而沒有損害經(jīng)提取的果膠的品質(zhì)的有成本效益的方法的需要。
[0007]此外，還重要的是，最終的果膠是不含不想要的污染物的，污染物包括用于提取果膠的酸(及其鹽)的任何殘余存在。因此，在果膠制造工業(yè)中還存在對減少添加用于提取的酸的殘余存在的有成本效益的方式的需要。
[0008]額外的方面將在以下的說明書中部分陳述，且從說明書中將部分地明顯，或可以通過下文所述的方面的實踐來學習。下文所描述的優(yōu)勢將通過在所附的權利要求中特別指出的元件和組合來實現(xiàn)和獲得。將理解的是，前述的概述和以下詳述兩者僅是示例性的和解釋性的，而不是限制性的。
[0009]附圖簡述[0010]圖1是根據(jù)特定實施方式的用于提取果膠的系統(tǒng)的示意圖。
[0011]圖2是用于提取果膠的常規(guī)系統(tǒng)的示意圖；
[0012]圖3是闡述作為草酸的用量的函數(shù)的果膠的鈣含量的圖。
[0013]圖4是闡述pH對果膠提取收率的影響的圖。
[0014]圖5是闡述作為pH的函數(shù)的經(jīng)提取的果膠的特性粘度的圖；
[0015]圖6是闡述在果皮的存在下草酸的用量與果膠的收率的圖；
[0016]圖7是闡述作為草酸用量的函數(shù)的(果膠收率乘以果膠特性粘度)的乘積的圖。
[0017]詳述
[0018]本發(fā)明的實施方式涉及使用用于提取含果膠的材料的草酸來從含果膠的植物材料中提取高品質(zhì)的果膠的方法。主要描述的用于在單個階段的提取中提取具有高的聚合度的果膠的方法包括:制備含果膠的植物材料的水懸浮液；以足以提供具有在3.0和3.6之間的pH和大于鈣(II)的總摩爾濃度的草酸鹽的總摩爾濃度的混合物的量，將草酸和/或水溶性草酸鹽添加到水懸浮液；將混合物加熱至從約50°C至約80°C的溫度，持續(xù)足以從含果膠的植物材料中提取果膠的時間；以及從混合物分離經(jīng)提取的果膠。期望地，經(jīng)提取的果膠以具有至少72的酯化度(DE) 和高的聚合度為特征，該聚合度以大于約6dL/g的特性粘度來表征。
[0019]含果膠的植物材料是本領域熟知的，且包括新鮮的和處理過的材料以及植物殘余物。期望地，含果膠的植物材料是水果，其非限制性實例包括核果類比如桃子，仁果類水果比如蘋果，及柑橘類水果比如酸橙、檸檬、橘子和葡萄柚?？梢杂萌魏魏线m的方法和含果膠的植物材料的任何合適的部位來制備用于提取的材料，例如，通過對含果膠的植物材料或其部分進行榨汁、剝皮、粗切、研磨或壓碎。在特定的實施方式中，含果膠的植物材料是果皮。如本文所使用的，柑橘類水果的果皮是指外皮、白色內(nèi)皮和在榨汁水果后留下的果汁囊(juice sack)(果肉囊)。在可選擇的實施方式中，含果膠的植物材料是果皮的一個或多個部分(例如，白色內(nèi)皮、白色內(nèi)皮的部分、果汁囊或其組合)。
[0020]在實施方式中，將草酸和/或水溶性草酸鹽添加到含果膠的植物材料的水溶液中。含果膠的植物材料通常以混合物的按重量計從約2%至約5%的量存在。草酸和/或水溶性草酸鹽以從約20至約50g每千克的含果膠植物材料的干燥材料的量存在。期望地，混合物具有在3.0和3.6之間的pH，在3.1和3.4之間的pH或在3.2和3.3之間的pH。還期望地，混合物具有大于鈣(II)的總摩爾濃度的草酸鹽的總摩爾濃度。本領域的技術人員將理解的是，使用本領域已知的方法，連同草酸和/或水溶性草酸鹽一起，可以用少量的合適的堿(例如，NaOH)或酸(例如，硝酸)的添加來改變混合物的pH。
[0021]然后，通過將混合物加熱至從約50°C至約80°C的溫度，持續(xù)足以提取果膠的時間，來從含果膠的植物材料中提取果膠。在果膠提取期間，期望地，用本領域的技術人員已知的方法來溫和地攪拌和/或攪動混合物。在特定的實施方式中，將混合物加熱至從約60°C至約80°C的溫度或至從約70°C至約80°C的溫度。盡管收率通常隨提取時間的增加而增加，但時間優(yōu)選地被最小化，以減少被提取的果膠的聚合度的任何損失。因此，在特定的實施方式中，足以提取果膠的時間為從約0.5小時至約5小時，從約I小時至約3小時，或從約1.5小時至約2.5小時。
[0022]在從含果膠的植物材料中提取果膠后，可以用任何合適的方式例如通過一個或多個過濾步驟(例如，粗過濾和/或精濾)，從經(jīng)提取的果膠的混合物中除去不溶性固體(即，含果膠的植物材料的殘余物)。然后，經(jīng)提取的果膠可以從混合物中沉淀，例如，通過將提取物倒入有效量的醇中。有用的醇包括但不限于，與食物應用相容且有效地使果膠沉淀并溶解醇溶性材料的任何醇。在特定的實施方式中，醇為異丙醇、正丙醇、乙醇或甲醇。沉淀后，經(jīng)提取的果膠可以與溶液分離且用醇洗滌，以除去盡可能多的醇溶性雜質(zhì)。然后，可以干燥果膠且加工成粉末或用本領域已知的方法進一步改性(例如，脫酯化和/或酰胺化)。
[0023] 在還其它特定的實施方式中，在從醇-水混合物分離經(jīng)提取的果膠之前或之后，可以從經(jīng)提取的果膠中除去殘余物。這樣的殘余物可以包括例如少量的用于提取的草酸和草酸鹽殘余物。盡管用于提取過程的常用的酸(例如，硝酸)的適度存在通常是可接受的，但是由于缺乏之前的管理使用和在商購的果膠產(chǎn)品中的評估，可能將僅允許極其低的量的草酸殘余物。因此，期望的是從經(jīng)提取的果膠中除去草酸和草酸鈣殘余物。因此，在特定的實施方式中，方法還包括在從溶液分離經(jīng)提取的果膠之前，將經(jīng)提取的果膠的溶液暴露于陽離子交換樹脂，從而顯著減少最終經(jīng)提取的果膠中的草酸鹽和鈣殘余物。合適的陽離子交
換樹脂的非限制性實例包括Lewatit1? S1668和Lewatit* S1468 (Lanxess DeutschlandGmbH,勒沃庫森,德國)、Purollte* ClOOE (Purolite International Ltd.,蘭特里森特，英
國)和AmberHte" SRlL Na (Rohm and Haas，費城，賓夕法尼亞州)。經(jīng)提取的果膠的溶液
可以在任何合適的溫度下且可以根據(jù)需要被加熱或冷卻。例如，在實施方式中，經(jīng)提取的果膠的溶液可以在從約55°C至約70°C的溫度下。
[0024]用本文所提供的方法得到的果膠具有較高的酯化度(DE)和較高的聚合度(DP)，同時以高于常規(guī)方法的收率被提取。期望地，經(jīng)提取的果膠具有大于或等于75的酯化度和通過約6.5至約9dL/g的特性粘度表征的聚合度。在特定的實施方式中，經(jīng)提取的果膠具有至少76，至少77或至少78的酯化度，和通過至少7.0dL/g,至少7.5dL/g，至少7.8dL/g或至少8.0dL/g的特性粘度表征的聚合度。
[0025]然而，本領域的技術人員將理解的是，果膠性質(zhì)取決于植物材料的種類、植物材料的成熟度及在處理植物材料前的延遲。例如，在實施方式中，從高品質(zhì)的檸檬果皮中提取的果膠具有約75-78的酯化度和約9dL/g的特性粘度(相比于在用常規(guī)方法提取時的74-76的酯化度和約7.5dL/g的特性粘度)。然而，在另一個實施方式中，從低品質(zhì)的植物材料提取的果膠具有大于73的酯化度和約6.5dL/g的特性粘度。
[0026]還期望地，本文所提供的方法提供高于常規(guī)的果膠提取方法的收率/果皮(yieldper peel)。在特定的實施方式中，收率/果皮大于約23，大于約25，或大于約27。然而，本領域的技術人員將理解的是，預期的收率取決于原料的品質(zhì)和原料的自然變異。
[0027]收率/果皮可以從下式來估計:
[0028]Υρ%=0.1.ys.M/ffp
[0029]其中，Yp是以％計的收率/果皮，ys是以g/kg計的溶液(液體提取物)的收率，M是剛好在過濾前的提取混合物的總質(zhì)量，且Wp是用于提取混合物的果皮的重量。本領域的技術人員將理解的是，收率/果皮的該計算僅是近似的，因為其忽略了提取混合物的總質(zhì)量的一小部分是不溶的，且因此代表了溶解的果膠沒有分散在其中的體積。
[0030]在特定的實施方式中，本文所提供的方法的值以收率/果皮和特性粘度的乘積為特征。期望地，通過本文所提供的方法得到的果膠的收率/果皮和特性粘度的乘積大于通過常規(guī)方法得到的果膠的收率/果皮和特性粘度的乘積。例如，在特定的實施方式中，果膠的收率/果皮和特性粘度的乘積大于約160,大于約165,大于約175,或大于約185。
[0031]通過提供如下的方法，前述方法改進了果膠提取的現(xiàn)有技術方法:(1)在過濾過程中，在最小化果膠聚合度損失的同時，實現(xiàn)了低的粘度；(2)在減少對再生離子交換樹脂的需要的同時，消除了 Ca++;(3)與消耗的原料的量相比，在最小化果膠聚合度損失的同時，增加了果膠收率；(4)減少了需要從經(jīng)提取的果膠中除去的水的量；及(5)減少了被添加用于提取的酸在最終產(chǎn)物中的殘余物。
[0032]不希望受到任何理論的束縛，認為本文所提供的方法部分地通過提取介質(zhì)選擇(草酸)、PH和溫度的特定平衡來實現(xiàn)了這些期望的結果。此外，認為大部分的Ca++離子作為草酸鈣的沉淀減少了溶解的果膠在Ca++離子的存在下變粘的趨勢，從而降低了過濾過程中混合物的粘度且減少了最終產(chǎn)物中的殘余的草酸。良好的收率和低粘度的組合還使得用過濾的液體中的相對高的果膠濃度來操作成為可能，從而減少了必須從果膠中除去的水的量。最后，在使果膠從溶液沉淀之前，通過使液體果膠提取物暴露于陽離子交換樹脂，進一步減少殘余的草酸在最終的果膠中的存在。
[0033]還通過以下實施例來闡述本說明書的實施方式，這些實施例將不以任何的方式解釋成對本說明書的范圍構成限制。相反，將清楚地理解，手段可以為各種其它實施方式、改進及其等效物，在閱讀了本文的說明書之后，本領域的技術人員可以想到所述各種其它實施方式、改進及其等效物，而沒有背離本發(fā)明的精神和/或所附的權利要求的范圍。除非另外說明，否則以百分數(shù)(％)提及的量是按重量計(wt%)。
實施例
[0034]用以下方案來分析以下實施例中的酯化度(DE)、特性粘度(IV)、強度、殘余的鈣含量及殘余的草酸鹽含量。
[0035]方案1:酯化度的測定:`[0036]酯化度是用FAO JECFA Monographs4 (2007)中陳述的方法來測量的。將IOOmL的酸醇(100mL60%IPA+5mL37%發(fā)煙HCl)添加到2.0Og果膠中，同時用磁性攪拌器攪拌10分鐘。使混合物通過具有濾紙的布氏漏斗并用90mL酸醇來沖洗燒杯且又通過該具有濾紙的布氏漏斗。然后，濾液首先用1000mL60%IPA洗滌且然后用約30mL100%IPA洗滌。樣品然后在具有真空抽吸的布氏漏斗上干燥約15分鐘。
[0037]稱取約0.40g的果膠樣品用于雙份測定的測量(雙份測定之間的偏差必須不超過
1.5%絕對值，否者重復測試)。首先用約2mL100%IPA來濕潤果膠樣品。然后，在用磁性攪拌器攪拌的同時，將大約IOOmL去離子水添加到濕潤的樣品中。然后通過借助于指示劑或通過使用PH計/自動滴定器的滴定來評估樣品。
[0038]使用指示劑的滴定。將5滴酚酞指示劑添加到樣品中且用0.1M NaOH滴定，直至觀察到顏色改變(將其記錄為Vl滴定量)。在攪拌的同時，添加20.0mL0.5M NaOH，且用箔覆蓋，持續(xù)正好15分鐘。在攪拌的同時，添加20.0mL0.5M HC1，直到顏色消失。然后添加3滴酚酞指示劑且用0，IM NaOH滴定，直至觀察到顏色改變(將其記錄為V2滴定量)。為了補償分別平衡20mL的0.5M NaOH和HCl的兩個部分的可能誤差，進行所謂的“盲測”(即，以與樣品溶液相同的方式來處理IOOmL的去離子水，包括滴定)。然后將最終的滴定結果記錄為BI滴定量。然后，酯化度通過以下計算來表征。
[0039]Vt=Vl+(V2-B1)
[0040]%DE (酯化度)=[(V2_B1)/Vt]*100
[0041]方案2:特性粘度的測定 [0042]用Viscotek GPC max VE2001GPC溶劑/樣品模塊或AS3500自動進樣器來制備樣品，除非已知樣品包含不可溶的材料(在這種情況下，樣品是手動制備的)。然后用尺寸排阻色譜法(SEC)來測定樣品中的果膠的分子量、特性粘度和分子量分布。通過凝膠滲透色譜法根據(jù)它們的尺寸來分離分子，且來自色譜柱的流出物通過三個檢測器(R1、RALLS和粘度檢測器)。Viscotek軟件將檢測器信號轉化成分子量和特性粘度，且計算整個總體的加權平均值。
[0043]儀器:ViscotekTDA302 三重檢測器或 TDA305 ;Viscotek GPC max VE2001GPC 溶劑/樣品模塊或AS3500自動進樣器；樣品制備模塊；Metler Toledo天平和Microlab.500分配器；Pierce React1-Therm III 加熱 / 攬祥模塊；柱:BioBasis SEC60 (300x7.8),SEC120 (300x7.8)，SEC300 (300x7.8)，SEC1000 (300x7.8)，均來自 Thermo，或 Shodex guardSB400G-8B, SB401-8F, SB402, 5-8F, SB403-8F, SB404-8F ;或在具有 CPkelco Special (來自 GE Health Care 的 SuperDex Peptid)或來自 Thermo 的 BioBasis SEC60 (150x7.8)的FIPA設置中；RALLS檢測器(直角激光散射檢測器);LALLS檢測器(低角度激光散射檢測器)；RI檢測器(折射率)；粘度計檢測器；計算機軟件:0mniSEC。
[0044]手動樣品制備:手動地溶解且尚心(10.000G，持續(xù)10分鐘)已知包含不溶性材料的樣品，且在注射之前將上清液轉移至新的小瓶中。
[0045]使用樣品制備模塊、Metier Toledo天平和Mikrolab.500分配器及PierceReact1-Therm III加熱/攪拌模塊的樣品制備:在omniSEC軟件中，在分析前，用SASP程序來制備樣品。量/容量比率為在20ml小瓶中的約30mg粉末比15ml洗脫液(2mg/ml)。制備樣品后，在加熱攪拌模塊中，將小瓶置于70°C下，持續(xù)30分鐘。
[0046]在使用AS3500自動進樣器時，使用天平和加熱/攪拌模塊的樣品制備:將約
2.0mg果膠稱取至自動進樣器小瓶中且放置在自動進樣器架中。使用來自AS3500自動進樣器的模板4，使用以下單元:稀釋循環(huán)次數(shù):3 ;加熱器:打開；溫度:70°C ;裝載20 μ I溶劑S-1 (S-1 =96%乙醇)；將10 μ I添加至樣品中；裝載1500 μ I溶劑S_2 (S_2=0.3M醋酸鋰緩沖液);將1300 μ I添加到樣品(0.1%果膠溶液-lmg/ml)中；混合9.9分鐘；混合9.9分鐘；等待10.0分鐘；使得能夠疊加:是(YES)(在用于運行樣品的分析結束之前，開始下一樣品的制備)。將在自動進樣器處的運行時間設定為50分鐘且使用100 μ L的全環(huán)路注射。在使用自動進樣器時，通過放置在自動進樣器環(huán)路后面的0.5 μ m在線過濾器來自動過濾樣品。
[0047]方案3:果膠強度的測定(YogSimBuf方法)
[0048]YOG SIM BUF ρΗ3.75 緩沖液(2000mL)。通過溶解 13.03g 乳酸鈣(C6H10O6Ca, 5*Η20)、2.79g 磷酸氫二鉀(K2HPO4)、2.0Og 苯甲酸鈉、2.03g 磷酸二氫鉀(KH2PO4),40.0Og 乳糖(C12H22O11)'300.0Og 蔗糖(C12H22O11)來制備緩沖液。稱出 7.23g 乳酸(90%)且添加到溶液中并用離子交換水來沖洗燒杯。最后，將0.43g氫氧化鈉(NaOH)溶解在燒瓶中且用去離子水將溶液稀釋至2000mL。通過添加檸檬酸來調(diào)節(jié)緩沖溶液的pH，直至得到3.68 ±0.02的pH讀數(shù)，這得到在最終的果膠-緩沖液系統(tǒng)中的3.75 ±0.05的pH。在沉淀之前，這個緩沖溶液是穩(wěn)定的。
[0049]果膠儲備溶液(1.2%)(IOOmL)0通過在燒瓶中用5.0Oml 100%IPA來濕潤1.20g果膠來制備果膠儲備溶液。在攪拌的同時將95ml煮沸的去離子水(>85°C)添加到燒瓶中且在攪拌的同時將混合物放置在75°C下的水浴加熱器/干式恒溫器(block heater)上，持續(xù)30分鐘。使溶液冷卻至室溫且添加去離子水以將溶液稀釋至100.0g。
[0050]緩沖溶液、果膠儲備溶液和去離子水保持在23±2°C的溫度下。根據(jù)下表，用去離子水稀釋果膠儲備溶液。
【權利要求】
1.一種用于提取具有高的聚合度的果膠的方法，包括: 以足以提供具有在3.0和3.6之間的pH和大于鈣(II)的總摩爾濃度的草酸鹽的總摩爾濃度的混合物的量，將草酸和/或水溶性草酸鹽添加到果皮的水懸浮液中； 將所述混合物加熱至從約50°C至約80°C的溫度，持續(xù)足以提取果膠的時間；以及 通過使經(jīng)提取的果膠從所述混合物中沉淀，從所述混合物分離所述經(jīng)提取的果膠，其中所述經(jīng)提取的果膠具有至少72的酯化度(DE)和如通過大于約6.5dL/g的特性粘度表征的高的聚合度。
2.根據(jù)權利要求2所述的方法，其中在從所述混合物分離所述經(jīng)提取的果膠之前，所述混合物的pH在3.1和3.4之間。
3.根據(jù)權利要求2所述的方法，其中在分離所述經(jīng)提取的果膠的過程中，所述混合物被加熱至從約70°C至約80°C的溫度。
4.根據(jù)權利要求1所述的方法，還包括在提取所述果膠之后且在分離所述經(jīng)提取的果膠之前，過濾所述混合物以除去不溶性固體。
5.根據(jù)權利要求1所述的方法，還包括在分離所述經(jīng)提取的果膠之前，使包含所述經(jīng)提取的果膠的所述混合物與離子交換樹脂接觸。
6.根據(jù)權利要求5所述的方法，其中所述離子交換樹脂包括選自由Lewatit?S1668、Lewatit? s 1468、PuroHte1: ciooe 和 Ambertite? sril Na 組成的組的陽離子交換樹脂。
7.根據(jù)權利要求5所述的方法，其中所述經(jīng)提取的果膠具有小于2.0mg/lg果膠的總草·酸鹽含量。
8.根據(jù)權利要求5所述的方法，其中所述經(jīng)提取的果膠具有小于lmg/g的總鈣含量。
9.根據(jù)權利要求1所述的方法，在分離所述經(jīng)提取的果膠后，還包括洗滌、壓縮、干燥及研磨所述經(jīng)提取的果膠的步驟中的一個或多個，以獲得最終的果膠產(chǎn)品。
10.根據(jù)權利要求1所述的方法，其中收率/果皮(Yp)大于約23%，其中Yp=0.1 *ys -M/評卩且ys是以g/kg計的溶液(液體提取物)的收率，M是在分離所述經(jīng)提取的果膠之前所述混合物的總質(zhì)量，且Wp是用于所述水懸浮液的所述果皮的重量。
11.根據(jù)權利要求10所述的方法，其中所述收率/果皮和特性粘度的乘積大于約165%.dL/g。
12.根據(jù)權利要求1所述的方法，其中所述經(jīng)提取的果膠具有至少75的酯化度(DE)。
13.根據(jù)權利要求1所述的方法，其中所述經(jīng)提取的果膠具有至少7.8dL/g的特性粘度(IV)0
14.根據(jù)權利要求1所述的方法，其中所述經(jīng)提取的果膠具有至少8.5dL/g的特性粘度(IV)0
15.一種通過權利要求1所述的方法生產(chǎn)的果膠，其中所述果膠具有至少75%的酯化度和至少6.0dL/g的特性粘度。
16.根據(jù)權利要求15所述的果膠，具有至少76的酯化度。
17.根據(jù)權利要求15所述的果膠，具有至少78的酯化度。
18.根據(jù)權利要求15所述的果膠，具有至少6.5dL/g的特性粘度。
19.根據(jù)權利要求15所述的果膠，具有至少7.5dL/g的特性粘度。
20.根據(jù)權利要求15所述的果 膠，具有至少8.0dL/g的特性粘度。
【文檔編號】C08B37/00GK103596986SQ201280027593
【公開日】2014年2月19日 申請日期:2012年3月27日 優(yōu)先權日:2011年6月6日
【發(fā)明者】索倫·沃德斯特魯普·詹森, 蘇珊娜·奧克森伯爾·索倫森, 克勞斯·羅林 申請人:Cp凱可股份公司