本發(fā)明涉及一種綠豆品種的鑒定方法,特別涉及一套適于栽培綠豆品種鑒定的SSR引物組合以及利用該SSR引物組合進(jìn)行栽培綠豆品種鑒定的方法。本發(fā)明屬于種質(zhì)資源鑒定技術(shù)領(lǐng)域。
背景技術(shù):
綠豆是最主要的食用豆類栽培種之一,在溫帶、亞熱帶和熱帶高海拔地區(qū)被廣泛種植,主要分布在印度、中國(guó)、巴基斯坦、緬甸等亞洲國(guó)家。綠豆在中國(guó)的年均種植面積約80萬(wàn)公頃,年均產(chǎn)量約100萬(wàn)噸,是中國(guó)的重要出口創(chuàng)匯農(nóng)產(chǎn)品之一。綠豆具有生育期短、抗旱耐瘠等特點(diǎn),且可以與根瘤菌共生固氮,在農(nóng)業(yè)種植結(jié)構(gòu)調(diào)整中發(fā)揮著重要作用。近年來(lái)隨著綠豆雜交育種技術(shù)的發(fā)展,綠豆新品種數(shù)量不斷增加。為了加快育種進(jìn)度,提高選擇效率,各育種單位往往選用少數(shù)優(yōu)良品種作為骨干親本,從而導(dǎo)致育成品種的遺傳基礎(chǔ)越來(lái)越窄,品種相似性越來(lái)越高,加大了利用外觀表型性狀區(qū)分不同綠豆品種的難度,給品種管理和保護(hù)造成了困難。
此外,外觀表型鑒定還存在著鑒定周期長(zhǎng)、工作量大、受季節(jié)和地域限制的缺陷。分子標(biāo)記檢測(cè)技術(shù)具有測(cè)試周期短、不受環(huán)境影響和季節(jié)限制、供選擇的標(biāo)記數(shù)量多、且可以進(jìn)行高通量測(cè)試分析等優(yōu)勢(shì),已逐步應(yīng)用于作物新品種鑒定、種子純度及品種真實(shí)性檢測(cè)中。
因此,尋找和開發(fā)合適的分子標(biāo)記,利用分子標(biāo)記技術(shù)建立DNA指紋圖譜,可以為綠豆種質(zhì)資源和品種鑒別、純度檢測(cè)等提供有力的工具。RFLP、RAPD、AFLP等分子標(biāo)記曾先后用于綠豆的遺傳多樣性分析、遺傳圖譜構(gòu)建以及QTL定位等研究,但由于上述標(biāo)記或者由于操作過(guò)程較為繁瑣,不易掌握,或者由于重復(fù)性差等缺陷,限制了它們?cè)诰G豆遺傳研究中應(yīng)用。
隨著對(duì)綠豆的分子遺傳及分子生物學(xué)研究的進(jìn)步,綠豆轉(zhuǎn)錄組和基因組相繼公布,這為其他DNA分子標(biāo)記的開發(fā)鑒定提供了條件。其中,以微衛(wèi)星序列為基礎(chǔ)的SSR(Simple sequence repeat)分子標(biāo)記具有獨(dú)特的優(yōu)越性,它不僅覆蓋范圍廣、呈共顯性遺傳、重復(fù)性好、多態(tài)性豐富,而且操作簡(jiǎn)單,成本低廉。可以高效準(zhǔn)確的應(yīng)用于綠豆品種和種質(zhì)資源的鑒定與分析。
本發(fā)明是基于SSR分子標(biāo)記鑒定法建立的,利用多態(tài)性好、PCR擴(kuò)增穩(wěn)定的30對(duì)SSR引物組成的一套引物組合對(duì)不同綠豆品種進(jìn)行鑒定的技術(shù)體系。該技術(shù)體系能夠快速、準(zhǔn)確的對(duì)不同栽培綠豆品種進(jìn)行鑒定,能準(zhǔn)確區(qū)分綠豆品種間差異并最大限度準(zhǔn)確反映綠豆品種間的親緣關(guān)系。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的在于提供一套基于綠豆轉(zhuǎn)錄組和基因組序列開發(fā)的SSR核心引物組,這些引物具有擴(kuò)增穩(wěn)定、電泳條帶清晰、多態(tài)性豐富的優(yōu)點(diǎn),可有效用于DNA指紋圖譜構(gòu)建、品種鑒定等研究。
為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用了以下技術(shù)手段:
本發(fā)明的一套適于栽培綠豆品種鑒定的SSR引物組合,該引物組合由30對(duì)多態(tài)性好、擴(kuò)增穩(wěn)定的SSR引物組成,所述的30對(duì)多態(tài)性好、擴(kuò)增穩(wěn)定的SSR引物序列分別如SEQ ID NO.1-60所示。
一種適于栽培綠豆品種鑒定的試劑盒,其含有本發(fā)明所述的SSR引物組合以及PCR檢測(cè)用試劑。
進(jìn)一步的,本發(fā)明還提出了所述的SSR引物組合在栽培綠豆品種鑒定中的用途。
一種使用本發(fā)明所述的SSR引物組合鑒定綠豆品種的方法,包括如下步驟:
(1)提取待鑒定綠豆籽粒樣品基因組DNA;
(2)采用權(quán)利要求1所述的SSR引物組進(jìn)行PCR擴(kuò)增;
(3)將步驟(2)的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳分析;
(4)根據(jù)特異性圖譜進(jìn)行綠豆品種的鑒定。
在本發(fā)明所述的方法中,優(yōu)選的,步驟(1)中采用CTAB法或改良的CTAB法進(jìn)行待鑒定綠豆籽粒樣品基因組DNA的提取。
在本發(fā)明所述的方法中,優(yōu)選的,步驟(2)中用于擴(kuò)增所述分子標(biāo)記的PCR反應(yīng)體系和擴(kuò)增程序?yàn)椋?/p>
PCR反應(yīng)體系為10μL,含1×PCR緩沖液,0.2mM dNTPs,上下游引物各0.2μM,20ng待測(cè)綠豆品種的基因組DNA,0.5U Taq酶;
PCR擴(kuò)增程序:95℃預(yù)變性5min,然后每個(gè)循環(huán):95度變性30s,55℃退火45s,72℃延伸45s,共進(jìn)行35次循環(huán),最后72℃延伸10min。
在本發(fā)明所述的方法中,優(yōu)選的,步驟(3)中所述的非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳分析為使用8%(w/w)非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物,在PCR產(chǎn)物中加2μL上樣緩沖液,280V恒電壓電泳1h,0.1%(w/w)AgNO3染色10min,使用含0.5%(v/v)甲醛1.5%(w/w)NaOH溶液顯影。
相較于現(xiàn)有技術(shù)本發(fā)明的有益效果為:
本發(fā)明利用一套多態(tài)性好、PCR擴(kuò)增穩(wěn)定的SSR引物對(duì)鑒定品種的遺傳信息進(jìn)行分析,與現(xiàn)在廣泛使用的表型鑒定方法和之前報(bào)道的分子鑒定方法相比更加準(zhǔn)確。另外本發(fā)明直接利用綠豆籽粒提取基因組DNA,省去了將待測(cè)品種進(jìn)行發(fā)芽或育苗后再取樣的過(guò)程,鑒定過(guò)程更加簡(jiǎn)潔迅速。
附圖說(shuō)明
圖1為29個(gè)綠豆栽培品種基于30對(duì)綠豆SSR引物的聚類分析圖。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合具體實(shí)施例和附圖來(lái)進(jìn)一步描述本發(fā)明,本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)和特點(diǎn)將會(huì)隨著描述而更為清楚。但這些實(shí)施例僅是范例性的,并不對(duì)本發(fā)明的范圍構(gòu)成任何限制。本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解的是,在不偏離本發(fā)明的精神和范圍下可以對(duì)本發(fā)明技術(shù)方案的細(xì)節(jié)和形式進(jìn)行修改或替換,但這些修改和替換均落入本發(fā)明的保護(hù)范圍內(nèi)。
實(shí)施例1綠豆SSR引物的開發(fā)及篩選
利用SSRLocatorI V.1軟件掃描綠豆轉(zhuǎn)錄組和基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中的SSR位點(diǎn),并設(shè)計(jì)引物。在上海英駿生物技術(shù)有限公司合成其中的3000對(duì)引物,利用6份代表性綠豆資源進(jìn)行多態(tài)性引物篩選,從中選擇出30對(duì)多態(tài)性好、擴(kuò)增穩(wěn)定的SSR引物作為品種鑒定分析的核心引物(見表1)。
表1 30對(duì)綠豆SSR引物信息
實(shí)施例2本發(fā)明的SSR引物組合在栽培綠豆品種鑒定中的應(yīng)用
1、綠豆基因組DNA提取
選取29份主栽綠豆栽培品種作為鑒定材料(表2)。
表2 本發(fā)明中用于綠豆品種鑒定的材料信息
DNA提取具體步驟如下:
1)各取3-5粒參試綠豆材料的種子,利用研缽或組織研磨儀研成粉末,置于2ml離心管中,加入800μl 65℃預(yù)熱的CTAB提取液,渦旋震蕩1min。
2)將離心管置于65℃水浴40min,每10min顛倒混勻一次。將樣品從水浴鍋中取出,靜置片刻,加入800μl氯仿與異戊醇的混合液(24氯仿:1異戊醇),混勻15min,然后靜置10min,10000rpm室溫離心10min。
3)取600μl上清液于另一新的2ml離心管中,加入900μl 95%乙醇,-20℃放置30min。10000rpm離心10min,倒掉上清液,留沉淀。
4)加入500μl 75%乙醇,輕輕將沉淀彈起,10000rpm離心5min,倒掉上清液。
5)重復(fù)步驟4)一次。
6)將離心管開口朝下傾斜放置,便于多余乙醇流出,室溫干燥1h或50℃烘干20min。加入150μl滅菌ddH2O或1×TE。置65℃水浴鍋溶解1h。
7)取出離心管,放置至室溫,10000rpm離心2min,將上清液吸取到新的1.5ml離心管中,以便去除淀粉等沉淀物。利用nanodrop2000進(jìn)行DNA濃度測(cè)定和質(zhì)量檢測(cè),-20℃冰箱保存,備用。
2、鑒定材料PCR擴(kuò)增
利用實(shí)施例1表1中給出的SSR引物對(duì)待鑒定材料DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系和擴(kuò)增程序如下:
PCR反應(yīng)體系為10μL,含1×PCR緩沖液,0.2mM dNTPs,上下游引物各0.2μM,20ng待測(cè)綠豆品種的基因組DNA,0.5UTaq酶;
PCR擴(kuò)增程序:95℃預(yù)變性5min,然后每個(gè)循環(huán):95度變性30s,55℃退火45s,72℃延伸45s,共進(jìn)行35次循環(huán),最后72℃延伸10min。
3、8%(w/w)非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳與銀染檢測(cè)
采用8%(w/w)非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物。在PCR產(chǎn)物中加2μL上樣緩沖液,每一個(gè)加樣孔加入1.5μL樣品,280V恒電壓電泳1h。0.1%(w/w)AgNO3染色10min,1.5%(w/w)NaOH(含0.5%(v/v)甲醛)溶液顯影5-10min。最后用蒸餾水漂洗2次。
4、根據(jù)DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)和引物的遷移率記錄結(jié)果,遷移率最大(分子量最小)的條帶記為01,遷移率次之的記為02,依次類推,無(wú)條帶記為00,建立供試材料SSR基因型信息數(shù)據(jù)庫(kù)。
統(tǒng)計(jì)每個(gè)品種在引物中的擴(kuò)增情況,構(gòu)建DNA指紋圖譜(表3),通過(guò)比較各引物擴(kuò)增位點(diǎn)的差異,發(fā)現(xiàn)任意2個(gè)品種的DNA指紋圖譜都不相同。
表3. 28份綠豆品種DNA指紋數(shù)據(jù)
5、利用NTSYSpc2.10分析軟件計(jì)算綠豆各品種間的遺傳相似系數(shù),然后基于相似系數(shù)矩陣,利用SHAN子程序按照UPGMA算法進(jìn)行聚類分析(圖1)。
在相似系數(shù)為1(兩個(gè)品種基因型完全相同時(shí),二者相似系數(shù)=1)時(shí),29個(gè)綠豆栽培品種各自處于不同的分支上,表明29個(gè)測(cè)試材料為不同品種。在相似系數(shù)0.39處,29個(gè)測(cè)試材料分為明顯的兩類,其中一類主要集中了來(lái)自北京、河北石家莊、河北保定的綠豆品種,如中綠5號(hào)、中綠8號(hào)、中綠11號(hào)、中綠12號(hào)均為中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所育成;冀綠7號(hào)、冀綠10號(hào)、冀綠11號(hào)、冀綠13號(hào)、冀綠0518、冀綠0509均為河北省農(nóng)林科學(xué)院糧油作物研究所育成;冀綠2號(hào)和保942均為保定市農(nóng)科院育成。同時(shí),在該分類內(nèi)的一些品種具有親緣關(guān)系,如冀綠7號(hào)、冀綠10號(hào)、保942均使用了冀綠2號(hào)作為雜交親本之一,冀綠0509則使用了保942作為雜交親本之一。另一類則主要集中了來(lái)自于東北和內(nèi)蒙古地區(qū)的綠豆品種。如白綠8號(hào)、白綠9號(hào)、白綠11號(hào)、吉綠4號(hào),吉綠5號(hào)、遼綠8號(hào)、內(nèi)蒙古綠豆、科綠1號(hào)等。這部分品種多具有半直立生長(zhǎng)的特性。
以上結(jié)果說(shuō)明本發(fā)明的綠豆SSR引物組合可以很好的區(qū)分綠豆栽培品種,并反映出品種的親緣、地理來(lái)源等信息,可用于綠豆品種鑒定及多樣性分析。
序列表
<110> 河北省農(nóng)林科學(xué)院糧油作物研究所
<120> 一套適于栽培綠豆品種鑒定的SSR引物組合及其應(yīng)用
<130> KLPI161247
<160> 60
<170> PatentIn 3.5
<210> 1
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 1
gtgatggtgc tgcttttc 18
<210> 2
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 2
atgcgtgggg agaagtaa 18
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 3
ttcacaccct tttctgattc 20
<210> 4
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 4
gtttccttct tggtctcc 18
<210> 5
<211> 24
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 5
acgttcattg ttcctttccc tctg 24
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 6
gtgctcgaag agttcgtctt cctc 24
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 7
acggctattc atcgttttgc 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 8
caacccgaag ccaaaaacta 20
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 9
cagcaacgga aagaaaatcg 20
<210> 10
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 10
tgttgtgaag gcaccaacat 20
<210> 11
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 11
ttcccctttc tgcttcttca 20
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 12
acgctgacgt tgactcctct 20
<210> 13
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 13
tctcttcctc tatggctt 18
<210> 14
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 14
gctcctcttt ttgctgca 18
<210> 15
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 15
gtcgtttccg gaaactgt 18
<210> 16
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 16
gatccgaacc tctttctg 18
<210> 17
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 17
gaagggaatg aaaatgaa 18
<210> 18
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 18
gttcaatcca ttcagtct 18
<210> 19
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 19
agaagaaccc taccacag 18
<210> 20
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 20
ccaaaaacgt tccctcag 18
<210> 21
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 21
ccggggtgaa attgatacac 20
<210> 22
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 22
caaaggggct atgaacagga 20
<210> 23
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 23
gaggttccaa catctcagcc 20
<210> 24
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 24
ggatggacaa tgttgtgctg 20
<210> 25
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 25
atgtttgagg catttccctg 20
<210> 26
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 26
atcaggcaac aacaaccaca 20
<210> 27
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 27
acgcaaagag aggtgcagat 20
<210> 28
<211> 21
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 28
tccctaccat tttccagatc a 21
<210> 29
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 29
gcaggcaata cgaggagttc 20
<210> 30
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 30
agggtcggtc catcaacata 20
<210> 31
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 31
attcaagcca gagaaggcaa 20
<210> 32
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 32
ggtgggaggg tattggctat 20
<210> 33
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 33
aagactaaaa ggcgccgaac 20
<210> 34
<211> 24
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 34
aaggagaaag ataccgtttt caga 24
<210> 35
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 35
catgcagacg aagcagag 18
<210> 36
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 36
gagcgtcgtc gtttcgat 18
<210> 37
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 37
aagcactggc ttcaccagat 20
<210> 38
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 38
tcgcagcatt tgaaaaatca 20
<210> 39
<211> 22
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 39
tccaatgttt ggtttcatgt tt 22
<210> 40
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 40
tctgagctct gaggtgggat 20
<210> 41
<211> 24
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 41
cattcaacgc tgtgtaaggt ccag 24
<210> 42
<211> 24
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 42
ttgcagaaga gctttgtgat gagg 24
<210> 43
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 43
cccactgcag aggttatcgt 20
<210> 44
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 44
gaagatccag cacaacccat 20
<210> 45
<211> 21
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 45
tctgcgaaaa tcttcttcca a 21
<210> 46
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 46
ggtggggaaa agaaccctaa 20
<210> 47
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 47
tggaactcct tcccctcttt 20
<210> 48
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 48
ggaagcgagt ccacgagtag 20
<210> 49
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 49
gcttcacatg catagtac 18
<210> 50
<211> 18
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 50
ttaacttggg ttgtctgc 18
<210> 51
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 51
ctcattgtac cactggatat 20
<210> 52
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 52
gcctcctttc aggtgattgt 20
<210> 53
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 53
ggcagcataa gagaagccac 20
<210> 54
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 54
aacccccttt tcatgctctt 20
<210> 55
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 55
ctccatgtcc ctcttttcca 20
<210> 56
<211> 21
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 56
tgggttgagt ttgtttcttg g 21
<210> 57
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 57
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<210> 58
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 58
cgatctcatt cacgcacttt 20
<210> 59
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 59
gcctgcattt tggtttgaat 20
<210> 60
<211> 20
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 60
tcccaaagtc tgcaagatcc 20