本發(fā)明涉及DNA的體外重組技術領域，具體涉及一種大分子DNA的無縫分步組裝連接的方法。

背景技術：

通過DNA體外重組技術合成大分子DNA片段在基因功能研究上的需求越來越多。大片段合成的一個最基本的要求就是將多個小的DNA片段按照一定的方向和精確的堿基順序組裝在一起形成較大的DNA分子。傳統(tǒng)的方法依賴于限制性內切酶的酶切和DNA連接酶的連接。在載體構建中，這種方法一般適用于小于3kb的DNA片段的插入，一旦插入的DNA分子過大，常常會導致沒有合適的酶切位點用來連接插入片段和載體，如果用稀有酶切位點來分段酶切和連接，又會引入不需要的酶切位點堿基，破壞了原來DNA序列的結構。位點特異性重組是一種不依賴于酶切位點的活體內重組方法，該方法依賴于小范圍同源序列的聯(lián)會，重組也只發(fā)生在兩個特異的同源短序列的范圍之內，但該方法如果應用于大分子DNA序列的分段組裝同樣也會在原來序列中引入重組所必須的特異位點堿基，這些特異位點堿基也破壞了原來DNA序列的結構。為了不破壞DNA序列的原有結構，研究人員又開發(fā)了一種不依賴連接(ligation-independent cloning，LIC)的克隆方法。LIC方法中，線性化的骨架質粒可以通過酶切或PCR獲得，插入片段一般通過PCR獲得，在設計插入片段的引物時，使線性化的質粒片段與插入片段之間具有15-35bp的同源末端，同源末端在核酸外切酶的作用下特異切割DNA的5’端序列產(chǎn)生互補配對的單鏈末端，通過退火使互補配對的單鏈末端兩兩結合在一起，再在DNA聚合酶作用下在形成有單堿基缺口的不穩(wěn)定的環(huán)狀DNA分子，將環(huán)狀DNA分子轉化到大腸桿菌后，可以在大腸桿菌體內修復缺口形成完整的環(huán)狀質粒。該方法在兩種酶的作用下，可以將多個片段一次組裝到質粒中而不破壞原來DNA序列的結構，因此LIC方法又被稱為一步克隆無縫酶促組裝。由于酶促組裝方法能一次無縫組裝兩個以上的片段，具有靈活，省時和省工的優(yōu)勢，使得該方法有逐步替代傳統(tǒng)的酶切-連接方法的趨勢，市場上也已經(jīng)出現(xiàn)了多種商業(yè)化試劑盒，比如國外的Gibson Cloning Kit、 HD Cloning Kit和國內北京全式金的pEASY-Uni Seamless Cloning and Assembly Kit等。然而，在實際應用中一步克隆酶促組裝法的成功率極易受組裝片段數(shù)目的影響，Nick S.Berrow等報道一個質粒骨架片段和一個插入片段即兩個片段的一步克隆酶促組裝的成功率大于60％，一個質粒骨架片段和兩個插入片段即三個片段的一步組裝的成功率低于40％，而三個以上片段的一步酶促組裝的成功率小于10％，即使在三個以上片段的一步組裝反應中能獲得幾個組裝 成功的質粒，但往往由于被組裝的DNA序列片段過長導致PCR過程中容易引入堿基錯配，使得實驗功虧一簣。因此，三個以上片段的一步酶促組裝很難得到序列完全正確的組裝質粒。由于兩個片段酶促組裝的成功率遠大于三個及以上片段的一步酶促組裝成功率，因此也可以將大分子DNA片段隨機分成多個小片段，采用“兩片段酶促組裝+多個酶促反應步驟”的模式將長鏈DNA片段克隆到質粒上，這種模式不僅極大地提高了酶促組裝的成功率，而且可以在第一個小片段組裝成功后立即測序，獲得序列完全正確的組裝產(chǎn)物后再進行下一個片段的組裝，更容易獲得序列完全正確的最終酶促組裝產(chǎn)物。但這種模式的酶促組裝需要在上一次組裝成功后恢復一個酶切位點用于產(chǎn)生下一次酶促組裝的裝配入口，同時被恢復的酶切位點的堿基序列又不能破壞原有的DNA序列結構。目前還沒有相關的方法報導能通過“分段+分步酶促組裝”模式實現(xiàn)大分子DNA的無縫組裝的目標。

技術實現(xiàn)要素：

本發(fā)明要解決的技術問題是克服現(xiàn)有技術的不足，提供一種能通過“分段+分步酶促組裝”模式實現(xiàn)大分子DNA的無縫組裝的目標的方法。

為解決上述技術問題，本發(fā)明提出的技術方案為一種基于酶切位點拼接策略的DNA分步無縫酶促組裝方法，這個方法可以像堆積木一樣將DNA小片段一個一個逐步無縫組裝到骨架質粒中，形成最終所需要的質粒載體。包括以下步驟：

(1)分析被組裝序列的酶切位點，獲得所有不出現(xiàn)在被組裝序列中的酶切位點；

(2)從上述不出現(xiàn)在被組裝序列中的酶切位點對應的限制性內切酶中選擇合適的一個酶切骨架載體，使載體線性化并產(chǎn)生組裝入口。優(yōu)先選用常用的限制性內切酶。線性化載體的兩個末端分別包含酶切位點的部分堿基或一半堿基，命名為拼接堿基。例如粘性末端酶BamHI酶切載體補平末端后的5’-3’正義鏈兩端分別殘留堿基GGATC和GATCC，GGATC和GATCC稱為BamHI的兩個拼接堿基。而平端酶SmaI酶切載體后，5’-3’正義鏈兩端分別殘留CCC和GGG，CCC和GGG稱為SmaI的兩個拼接堿基。識別位點同為6個堿基的BamHI(GGATCC)和SmaI(CCCGGG)，粘性末端酶的拼接堿基為5個堿基，而平末端酶為3個堿基，拼接堿基的堿基數(shù)越少則它在序列中出現(xiàn)的頻率越高，有利于后續(xù)的分段和引物設計，因此粘性末端酶和平端酶中優(yōu)選平端酶。

(3)同一組裝酶的兩個拼接堿基在被組裝序列中出現(xiàn)的頻率和位置都不同，優(yōu)選在被組裝序列中出現(xiàn)頻次高且大致均勻分布的拼接堿基。根據(jù)以上原則選擇合適的拼接堿基并根據(jù)拼接堿基選擇對應的組裝方向，以BamHI為例，拼接堿基GGATC對應的組裝方向為5′→3′，拼接堿基GATCC對應的組裝方向為3′→5′。幾種常用的限制性內切酶的拼接堿基及對應的 組裝方向見表1；

表1 幾種常用的限制性內切酶的拼接堿基及對應的組裝方向

(4)選擇合適數(shù)目的拼接堿基將大片段DNA分成幾個小的DNA組裝片段，設計一套重疊引物來擴增組裝片段。拼接堿基的數(shù)目不宜過多也不能太少，過多則組裝步驟多，太少則組裝片段過長增加了PCR的難度，合適的組裝片段長度為1.5-3.5kb。引物設計的原則如下：i，所有引物都包含重疊序列和片段特異序列，重疊序列是與相鄰片段同源的序列，長度為15-25bp；為了獲得特異PCR產(chǎn)物建議將片段特異序列長度設計為25-35bp，退火溫度等于或大于68℃。ii，可以編輯與線性化載體同源的重疊序列，實現(xiàn)在擴增產(chǎn)物中移除和恢復原有酶切位點或引入新的酶切位點的目的。iii，每個組裝片段的一對引物中，一條引物消除酶切位點，另一條通過拼接堿基與載體同源的重疊序列拼出一個酶切位點，該酶切位點可以通過限制性內切酶的切割產(chǎn)生裝配入口用于下一步的酶促組裝；

(6)用所設計重疊引物擴增組裝片段，PCR反應程序為：①98℃預變性3min；②5循環(huán)(98℃10s，70℃3-5min)；30循環(huán)(98℃10s，68℃3-5min)③最后延伸68℃5min；④4℃保存；所用PCR酶為擴增長片段的高保真DNA聚合酶；

(7)瓊脂糖凝膠回收線性化的載體和組裝片段；

(8)通過酶促反應將第一個組裝片段組裝到載體中。裝配產(chǎn)物將恢復一個酶切位點。酶促反應體系為：全式金2×Assembly Mix 5ul，線性化載體和插入片段各2.5ul，總體積10ul。反應條件：50℃，40min；

(9)重復(7)和(8)將所有組裝片段一個接一個地通過多步酶促反應組裝到載體上。

分步無縫酶促組裝的關鍵原理是用出現(xiàn)在被組裝大分子DNA中的拼接堿基將被組裝的大分子DNA分成若干小的組裝片段，在設計重疊引物時一條引物都通過拼接堿基與線性化 載體的重疊區(qū)的拼接恢復原有的酶切位點，因此所擴增出來的每個組裝片段裝配到線性化載體后都能恢復原有的酶切位點，該酶切位點可以被切割產(chǎn)生裝配入口用于下一次的酶促組裝。下一次酶促組裝完成后，前一個組裝片段和后一個組裝片段的分界點即為拼接堿基，由于拼接堿基本身存在于被組裝序列中，所以前一個組裝片段和后一個組裝片段之間沒有引入額外的堿基，實現(xiàn)了兩個組裝片段之間的無縫連接。

與現(xiàn)有技術相比，本發(fā)明提供的一種能通過“分段+分步酶促組裝”模式實現(xiàn)大分子DNA的無縫組裝的目標的方法，其有益效果在于：1、利用拼接堿基可以將大片段DNA分子分成若干個小片段，降低了PCR的難度，并由于拼接堿基的存在實現(xiàn)了分步無縫組裝的目標。2、與傳統(tǒng)的酶切連接方法相比，本發(fā)明不依賴于連接，幾乎不受到酶切位點的限制。3、克服了傳統(tǒng)酶切連接方法和位點特異性重組方法容易引入額外堿基的缺點，實現(xiàn)了分步無縫連接的目的。4、本發(fā)明的方法比多個片段一步克隆酶促組裝具有更可控的組裝成功率和更高的序列準確率。

附圖說明

圖1 不出現(xiàn)在4.98kb DNA序列中的酶切位點

圖2 骨架載體pLDR

圖3 選取2個拼接堿基GGATC將4.98kb的DNA序列分成三個大小差不多的DNA片段，長度分別為1995bp,1657bp和 1332bp

圖4 分步無縫組裝4.98kb DNA序列，其中pLDR表示骨架載體的序列；BF1表示第一個片段的序列；BF2表示第二個片段的序列；BF3表示第三個片段的序列，方框中的序列為BamHI的拼接堿基。A為第一輪酶促組裝反應，將第一個片段BF1裝配至骨架質粒pLDR中，形成中間質粒pLDR-BF1；B為第二輪酶促組裝反應，將第二個片段BF2裝配至質粒pLDR-BF1中，形成中間質粒pLDR-BF1～BF2；C為第三輪酶促組裝反應，將第三個片段BF3裝配至質粒pLDR-BF1～BF2中，形成最終質粒pLDR-BF1～BF3

圖5 PCR篩選陽性單克隆，M為TAKARA 1kb DNA ladder。A：從24個單克隆中PCR篩選到21個陽性的pLDR-BF1質粒；B：從24個單克隆中PCR篩選到10個陽性的pLDR-BF1～BF2質粒；C：從24個單克隆中PCR篩選到15個陽性的pLDR-BF1～BF3質粒

圖6 對終載體pLDR-BF1～BF3進行酶切驗證，其中M為TAKARAλ-HindIII digest DNA marker；1為BamHI酶切后能獲得預期的14777bp條帶；2為SalI酶切后能獲得預期的12629bp和2148bp的條帶

圖7 不出現(xiàn)在7.09kb DNA序列中的酶切位點

圖8 選取1個的拼接堿基GGG將7.09kb的DNA序列分成兩個大小差不多的DNA片段，長度分別為3586bp和 3507bp

圖9 分步無縫組裝7.09kb DNA序列，其中，pLDR表示骨架載體的序列；PF1表示第一個片段的序列；PF2表示第二個片段的序列；方框中的序列為SmaI的拼接堿基。A為第一輪酶促組裝反應，將第一個片段PF1裝配至骨架質粒pLDR中，形成中間質粒pLDR-PF1；B為第二輪酶促組裝反應，將第二個片段PF2裝配至質粒pLDR-PF1中，形成最終質粒pLDR-PF1～PF2

圖10 PCR篩選陽性單克隆，M為TAKARA 1kb DNA ladder。A：從12個單克隆中PCR篩選到6個陽性的pLDR-PF1質粒；B：從12個單克隆中PCR篩選到7個陽性的pLDR-PF1～PF2質粒

圖11 對終載體pLDR-BP1～PF3進行酶切驗證，其中M為TAKARAλ-HindIII digest DNA marker；1～5為KpnI酶切pLDR-BP1～PF3的第1號、3號、7號、8號和10號質粒，酶切后能獲得預期的12615bp和4271bp的條帶。

具體實施方式

實施例1

以產(chǎn)生粘性末端的限制性內切酶切割質粒產(chǎn)生組裝入口的方式，從5′→3′方向組裝日本晴的Chr.3:3700958-3705941的DNA序列(seq1)，序列長度為4.98kb。步驟如下：

1、用DNAssit 2.0的軟件分析4.98kb的DNA序列的酶切位點，共有44個酶切位點不出現(xiàn)在該DNA序列中，其中包括4個常見的酶切位點，分別為BamHI，PstI，SpeI和XbaI(圖1)。

2、選擇BamHI酶切骨架載體pLDR(圖2)，那么被組裝序列的拼接堿基可以選擇GGATC也可以選擇GATCC，但由于GGATC比較均勻地分布在4.98kb的DNA序列中，故選擇GGATC作為拼接堿基，對應的組裝方向為5′→3′方向。

3、在4.98kb的DNA序列中共有6個GGATC的拼接堿基，挑選其中2個將4.98kb的DNA序列分成三個大小差不多的DNA片段BF1、BF2和BF3。三個DNA片段的長度分別為1995bp,1657bp和1332bp(圖3)。GGATCC

4、設計擴增三個DNA片段的重疊引物(表2)，其中在第一個片段BF1的正向引物B1-F的重疊序列中刪除一個堿基C從而消除BamHI位點，反向引物B1-R則通過第一個拼接堿基GGATC與重疊序列中的堿基C拼出一個BamHI酶切位點，當BF1與線性化載體pLDR與組裝后，第一輪組裝產(chǎn)物pLDR-BF1將恢復一個BamHI位點用于產(chǎn)生第二輪酶促反應的組裝入口。第二個片段BF2的正向引物B2-F位于第一個拼接堿基附近，包含BF2的特異序列和BF1末端15bp的同源序列，反向引物B2-R與第一個片段的反向引物B1-R設計類似。第三個片段的引物B3-F和B3-R設計原則類似于第二個片段。

表2 組裝4.98kb的DNA序列的重疊引物

5、用步驟3中設計的第一個片段的引物B1-F和B1-R從日本晴基因組DNA中通過PCR擴增出第一個片段BF1，PCR反應程序為：①98℃預變性3min；②5循環(huán)(98℃10s，70℃2min)；30循環(huán)(98℃10s，68℃2min)③最后延伸68℃5min；④4℃保存；所用PCR酶為KOD FX DNA聚合酶。并用瓊脂糖凝膠電泳回收BF1和步驟2中酶切獲得的線性化載體pLDR。

6、將回收的BF1和線性化載體pLDR各2.5ul與5ul全式金2×Assembly Mix混合，于50℃條件下酶促反應40min，將第一個片段BF1組裝到質粒pLDR(圖4A)。酶促反應后將酶促產(chǎn)物通過熱擊方式轉化到大腸桿菌感受態(tài)細胞，轉化產(chǎn)物涂布于含有卡那霉素抗性的LB平板上過夜培養(yǎng)。第二天挑取單菌落用引物B1-F和B1-R進行菌落PCR檢測，24個單克隆中PCR檢測呈陽性的單克隆有21個，說明BF1組裝成功的質粒pLDR-BF1有21個(圖5A)。將pLDR-BF1-1、pLDR-BF1-2和pLDR-BF1-3三個PCR檢測呈陽性的單克 隆送測序公司測序，其中質粒pLDR-BF1-2中的第一個片段BF1序列測序完成正確，其他兩個質粒的BF1序列都有堿基突變，可能為PCR過程中由堿基錯配引入的突變。留選質粒pLDR-BF1-2用于第二輪的酶促組裝。

7、正確組裝第一個片段BF1后，重復步驟5和6將第二個片段BF2組裝到質粒pLDR-BF1-2(圖4B)，經(jīng)PCR檢測獲得10個陽性質粒pLDR-BF1～BF2(圖5B)，經(jīng)測序其中pLDR-BF1～BF2-7的序列完全正確，留選用于第三輪的酶促組裝。

8、正確組裝第二個片段后，重復步驟5和6將第三個片段BF3組裝到質粒pLDR-BF1～BF2-7(圖4C)，經(jīng)PCR檢測獲得15個陽性質粒pLDR-BF1～BF3(圖5C)，經(jīng)測序其中pLDR-BF1～BF3-1的序列完全正確。對終載體pLDR-BF1～BF3進行酶切驗證，其中BamHI酶切后能獲得預期的14777bp條帶，SalI酶切后能獲得預期的12629bp和2148bp的條帶(圖6)，說明4.98kb的DNA序列被正確組裝到質粒載體pLDR中。

實施例2

以產(chǎn)生平端的限制性內切酶切割質粒產(chǎn)生組裝入口的方式，從3’→5’方向組裝日本晴的Chr.9:16782917-16790009的DNA序列(seq2)，序列長度為7.09kb。步驟如下：

1、用DNAssit 2.0的軟件分析4.98kb的DNA序列的酶切位點，共有26個酶切位點不出現(xiàn)在該DNA序列中，其中包括8個平端酶切位點，分別為FspAI、PmeI、SmaI、SnaBI、SrfI、SspI、SwaI和XmnI(圖7)。

2、選擇常用的SmaI酶切骨架載體pLDR，那么被組裝序列的拼接堿基可以選擇CCC也可以選擇GGG，由于組裝方向為3’→5’方向，故選擇GGG作為拼接堿基。

3、在7.09kb的DNA序列中共有多個GGG的拼接堿基，在序列的中部挑選其中1個拼接堿基將7.09kb序列分成兩個大小差不多的DNA片段PF1和PF2，兩個DNA片段的長度分別為3586bp和3507bp(圖8)。設計擴增兩個DNA片段的重疊引物，其中在第一個片段PF1的正向引物P1-F中通過第一個拼接堿基GGG與重疊序列中的堿基CCC拼出一個SmaI酶切位點，當PF1與線性化載體pLDR與組裝后，第一輪組裝產(chǎn)物pLDR-PF1將恢復一個SmaI位點用于產(chǎn)生第二輪酶促反應的組裝入口；反向引物P1-R的重疊區(qū)因為無拼接堿基故不能拼接出SmaI位點。第二個片段PF2的正向引物P2-F與P1-F設計類似；反向引物P2-R位于第一個拼接堿基附近，包含PF2的特異序列和PF1末端15bp的同源序列(表3)。

表3 組裝7.09kb的DNA序列的重疊引物

4、用步驟3中設計的擴增第一個片段的引物P1-F和P1-R從日本晴基因組DNA中通過PCR擴增出第一個片段PF1，PCR反應程序為：①98℃預變性3min；②5循環(huán)(98℃10s，70℃3.5min)；30循環(huán)(98℃10s，68℃3.5min)③最后延伸68℃5min；④4℃保存；所用PCR酶為KOD FX DNA聚合酶。并用瓊脂糖凝膠電泳回收PF1和步驟2中酶切獲得的線性化載體pLDR。

5、將回收的PF1和線性化載體pLDR各2.5ul與5ul全式金2×Assembly Mix混合，于50℃條件下酶促反應40min，將第一個片段PF1組裝到質粒pLDR(圖9A)。酶促反應后將酶促產(chǎn)物通過熱擊方式轉化到大腸桿菌感受態(tài)細胞，轉化產(chǎn)物涂布于含有卡那霉素抗性的LB平板上過夜培養(yǎng)。第二天挑取單菌落用引物P1-F和P1-R進行菌落PCR檢測，12個單克隆中PCR檢測呈陽性的單克隆有6個，說明PF1組裝成功的質粒pLDR-PF1有6個(圖10A)。將pLDR-PF1-4、pLDR-PF1-5、pLDR-PF1-6、pLDR-PF1-8和pLDR-PF1-9五個PCR檢測呈陽性的單克隆送測序公司測序，其中質粒pLDR-PF1-5和pLDR-PF1-8兩個質粒中的第一個片段PF1序列測序完成正確。留選質粒pLDR-PF1-5用于第二輪的酶促組裝。

6、正確組裝第一個片段后，重復步驟4和5將第二個片段PF2組裝到質粒pLDR-PF1(圖9B)，經(jīng)PCR檢測和測序獲得最終的載體pLDR-PF1～PF2(圖3)。經(jīng)PCR檢測獲得7個陽性質粒pLDR-PF1～PF2(圖10B)，經(jīng)測序其中第1號、3號、7號、8號和10號的序列完全正確。用KpnI對上述五個測序正確的質粒進行酶切驗證，酶切后能獲得預期的12615bp和4271bp的條帶(圖11)，說明7.09kb的DNA序列被正確組裝到質粒載體pLDR中。

SEQUENCE LISTING

<110> 湖南雜交水稻研究中心;湖南農業(yè)大學

<120> 一種大分子DNA的體外無縫組裝方法

<130> 20161207-2

<160> 2

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 4984

<212> DNA

<213> 水稻種（Oryza）

<400> 1

ggacaagatc ttgaaagtgc tcgacgtcaa ttgcttgacc gaggacgcag cgccatccgc 60

caatctgctc ggcagcaatg gcgtcgtcaa ctgcggcgtc gggctgtgga tcttgccggc 120

gttcatcaac cactcgtgcc accccaacgc ccggcgcacc cacgtcggcg accacgccat 180

tgtccacgcg tcaagggaca tcaaagccgg ggaggagatc acattcgcct acttcgacgt 240

gctcaccccg gcgagcaagc gcagggaggc agcgagagcg tggggcctcg aatgccaatg 300

cgatcggtgc aggttcgaag ccagcgacgc cattgttggg caagaactca caaaacttga 360

gaacgaattg gtcaatggcc gaggaggaga catgggagca ctggtggtga ggctggagga 420

gaggatgaga aagtccatgg tgaaggagag gaggaaggcg ttcttgcgcg cgtcgttctg 480

gagcgcgtac tccgcgctgt tcgactccga caagctggtg aggaagtggg ggaggcgcgt 540

ccccggtgag gccgccgtcg cagagagcgt cgccggcgca atcggcggga acgagagcgt 600

gctgagggca atgctgaggg gtgccgacaa tggcaacggc tgcggcaatc ggctcgaggt 660

ggaagacaag gtggtgagga ttgggagggc tacctatggc agggtagtga agaggcaggc 720

aatgagagct ctcttcagac ttacattgga tgctgacagt aacaaaagcc tgtaggtttt 780

gatactcttg attgattgtt tatttagtta cctagtatct tcagtaacag atgagagatt 840

tattcagcaa atgctccggt ttgctcgaag gttgtaataa gagtgtgggc aagaatcaag 900

gtcaatccat aagagcacta ttttcatgct cttctgatct tggtttcaga cttgtttcag 960

tgttgacatt ggttatttct caattcattc gagtatttgt tgttacatca caaaggataa 1020

gttctataga aaaaatcttc cttttcaagt gatgttcttt aattttctgt agaattgtgc 1080

cctgcaattt ctcaaatctt tgatagatgg cttatttgta ttgactggaa aagaaattag 1140

ttgtcaataa ctagaagctt tagagatgca aagtattgga tatatcttgg caatagtatt 1200

ttatattgct tgtttatgtg agaatgtttt aactagatgg caactgattt ctgggacaaa 1260

atcgcttcta caatagcatt ttatggaact cgtactcgtc gatagcattt cttggatttg 1320

ggtgtttgta aatggcattt cttggatttt ctcttcatta aaatagccta ttcagatgaa 1380

gtagaattca ggtgaagtag aaaccaacta ctttgggttc acaatttata tttcttttga 1440

ggatacccca tttcatttta gttgtcatca aagactagac aatatcgaca gaaaatggta 1500

agcctggttt cagttggtga caatttaaca gaattcagat ggatatggtt ctgatattag 1560

aaggtggcat acctttagtc gctgcaaacg cttcagttat ctgaacaaaa caacgaactt 1620

ggctgagcag gggaaaaaaa tactgtagca ttcattttgt gtttacatga gtaacgattc 1680

ttttctaggt ggacagatca caaaaagaaa actaaagcta agatccaact cctaagggtg 1740

ttaggttagg gacaccatat gaatgagaca atcttaattc ttggtcacac aaagattgtc 1800

tcaaggttgg tagcatcagt gcccaatata tcacctaact atgccatcca aaatgctaca 1860

tagcatctct tgtagactga acccttcatg aagagcccca tggaggaagc tcatgcaatg 1920

ccagtgacat cattcttccc agtagcagga atccacaagc tcatagctat cttccttgtt 1980

gtcctctcat ggatcttggt ccacaagtgg agcctgagga accagaaagg gccaagatca 2040

tggccaatca tcggcgcgac agtggagcaa ctgaagaact accacaggat gcatgactgg 2100

cttgtcgagt acttgtcgaa ggacaggacg gtgaccgtcg acatgccttt cacctcctac 2160

acctacattg ccgacccggt gaacgtcgag catgtcctga agaccaactt caccaattac 2220

cccaaggtaa aagaaccata ggatcttcag tgtactgtaa aatgtgcctt gcacagtact 2280

aacactgaca caaaaaatgt ctgaaaatat gcagggtgaa gtgtacaggt cttacatgga 2340

tgtgctgctc ggtgatggca tattcaatgc cgacggcgag atgtggagga agcaaaggaa 2400

gacggcgagc ttcgagtttg cctccaagaa cttgagagac ttcagcactg tggtgttcag 2460

ggagtactcc ctgaagctat caagcattct gagccaagca tgcaaggccg gcagagttgt 2520

agacatgcag gtaaccaact gaattccttg cctaatacct aaacatttct tgagaaacca 2580

aattgttcag aattctgatg caagaactaa ccaaaattca ggaattgttc atgaggatga 2640

cactggactc gatctgcaag gtcgggtttg gggttgagat cgggacgctg tcacctgatc 2700

tcccggagaa cagctttgcc caggcattcg acgctgccaa catcatcgtc acgctgcggt 2760

tcatcgatcc tctgtggcgt ctgaagaagt tcttgcacgt cggatcagag gctctcctcg 2820

agcagagcat gaagctggtt gatgacttca cctacagcgt gatccgccgc cgcaaggctg 2880

agatcttgca ggctcgagcc agcggcaagc aagagaaggt gatccttcct ctcttgctca 2940

aagaatcagt agaactgaac tgacatggta atggtgatga tcagatcgga aaaggttttg 3000

tttcttgata tcgttgattt gtaatggcga gcagatcaag cacgacatac tgtcgcggtt 3060

catcgagctc ggggaggccg gcggcgacga ggggggcggc agcttcgggg acgacaagag 3120

cctccgcgac gtggtgctca acttcgtgat cgccgggcgt gacacgacgg cgacgacgct 3180

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tgaatttgaa atttgaatgt accatgtttg attctaggat ttgttggtcc tagaccctgc 3960

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atgtttgcac atttttaaac ctgtaatctg gtttgaattt gaatgtacca tgacaccatg 4140

tttgcaaaac tttacatgaa tgtttgagaa aaaatatgga gaactgttca attagtatgc 4200

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atgt 4984

<210> 2

<211> 7093

<212> DNA

<213> 水稻（Oryza）

<400> 2

gtcatgcatt cagccgtcag aaaggctcag atttatttcc gtggaataaa cagaaatctc 60

caaaagacaa ctctagcctt ggagttaaca agtggatggt gcttactgat tctgcttgga 120

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attattttcc tttgtatccc tccagttttt ctttttcttt tgactaattc agtttttttt 240

ccttgaaggg tggtagtgca ttgactctga aaatgatcta tgaatcggta ggtatactgt 300

tttatgaagt tagattgatt ttactttttc ttacagcatc attagacatt aatggactta 360

tcatcatggt agttagccaa gagactatct ggaaagctgc tcatggaggc tggtaaatat 420

gagataaaga aagaacttct aaagcaggta tatgtatttt agttgatatc tgtaagcaat 480

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