本發(fā)明涉及一種抑制蕓苔屬植物花柱nadph氧化酶基因表達(dá)的方法,涉及互補(bǔ)核苷酸鏈的設(shè)計(jì)與應(yīng)用,屬于分子生物學(xué)領(lǐng)域。
背景技術(shù):
nadph氧化酶基因經(jīng)過轉(zhuǎn)錄翻譯以后形成nadph氧化酶。nadph氧化酶位于質(zhì)膜上,是一類以生成活性氧類物質(zhì)為主要功能的酶類。它可以將電子轉(zhuǎn)移給氧氣分子,使其形成轉(zhuǎn)變成超氧陰離子,進(jìn)一步形成羥基自由基、過氧化氫自由基等一類活性氧族。由于細(xì)胞存在的氧化應(yīng)激反應(yīng),活性氧族濃度的高低可以調(diào)節(jié)細(xì)胞數(shù)量的動(dòng)態(tài)平衡。
目前,已知沉默基因表達(dá)的方式主要是rna干擾、基因敲除、激活目的基因的抑制基因等。但是這些方法的實(shí)驗(yàn)成本比較高,周期比較長,對(duì)技術(shù)的要求高,部分方式的靶向性比較差,實(shí)驗(yàn)效果不能盡如人意。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是提供一種抑制蕓苔屬植物花柱nadph氧化酶基因表達(dá)的方法,利用互補(bǔ)核苷酸鏈抑制nadph氧化酶基因表達(dá),nadph氧化酶基因(genbank登陸號(hào):xm_009114548.2)。
通過提取經(jīng)互補(bǔ)核苷酸鏈處理過的蕓苔屬植物柱頭的rna,反轉(zhuǎn)錄成cdna后,利用熒光定量pcr測(cè)定其nadph氧化酶的表達(dá)量。
本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是:
一種抑制蕓苔屬植物花柱nadph氧化酶基因表達(dá)的方法,包含以下步驟:
1)互補(bǔ)核苷酸鏈和引物合成:根據(jù)目的基因的序列,設(shè)計(jì)熒光定量pcr引物;并根據(jù)其二級(jí)結(jié)構(gòu),在其莖環(huán)處設(shè)計(jì)一段互補(bǔ)核苷酸鏈;所述目的基因?yàn)閚adph氧化酶基因;
2)培養(yǎng)基配置:10%ms培養(yǎng)基、1.0%瓊脂糖、80mm蔗糖,加入互補(bǔ)核苷酸鏈,使其終濃度達(dá)到400μm;
3)花柱培養(yǎng):將蕓苔屬植物花柱切下,放入培養(yǎng)基中培養(yǎng),4小時(shí)后,提取其花柱rna,并反轉(zhuǎn)錄成cdna。
4)基因表達(dá)量測(cè)定:將反轉(zhuǎn)錄的cdna作為模板,通過熒光定量pcr測(cè)定其nadph氧化酶基因表達(dá)量。
進(jìn)一步地,所述互補(bǔ)核苷酸鏈?zhǔn)窃谒瞿康幕虬l(fā)卡環(huán)、內(nèi)部環(huán)、膨脹環(huán)和多分枝環(huán)等可能的結(jié)合位點(diǎn)上,設(shè)計(jì)出互補(bǔ)核苷酸鏈,并進(jìn)行硫代硫酸酯修飾和hplc純化。
更進(jìn)一步地,所述互補(bǔ)核苷酸鏈(5’-3’)為:attcttgtccactatgtc。
進(jìn)一步地,基因表達(dá)量測(cè)定中根據(jù)nadph氧化酶基因(登陸號(hào):xm_009114548.2)的基因序列設(shè)計(jì):引物序列(5’-3’)為:正向:gaacagcacaggaagcaaca;反向:agctctgccacttcgttcat。
更進(jìn)一步地,反應(yīng)體系為:正向、反向引物(10μm)各1μl;模板1μl;ssofastevagreensupermix(熒光定量pcr測(cè)定的試劑盒名字)10μl;無酶水7μl。
本發(fā)明的有益效果:
1)本方法能夠快速、高效抑制nadph氧化酶基因在蕓苔屬植物花柱的表達(dá);
2)本方法具有準(zhǔn)確度高特點(diǎn),可以用于目標(biāo)基因的功能特性鑒定,具有良好的前景。
3)本方法耗時(shí)較短、成本較低,而且對(duì)于目標(biāo)基因的功能特性鑒定有重要的意義。
附圖說明
圖1是本發(fā)明所述方法的實(shí)驗(yàn)流程圖。
圖2是本發(fā)明花柱培養(yǎng)示意圖。
圖3是本發(fā)明nadph氧化酶基因表達(dá)量。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合具體方案實(shí)施例,進(jìn)一步闡釋本發(fā)明的步驟與方法,不是對(duì)本發(fā)明保護(hù)范圍的限制。
本實(shí)例以甘藍(lán)為實(shí)驗(yàn)材料,操作如下,可參考圖1:
1)從genebank上獲得nadph氧化酶基因序列(登陸號(hào)為:xm_009114548.2),在其發(fā)卡環(huán)、內(nèi)部環(huán)、膨脹環(huán)和多分枝環(huán)等可能的結(jié)合位點(diǎn)上,設(shè)計(jì)出互補(bǔ)核苷酸鏈,并進(jìn)行硫代硫酸酯修飾和hplc純化。
所述互補(bǔ)核苷酸鏈(5’-3’):attcttgtccactatgtc
2)培養(yǎng)基配置:10%ms培養(yǎng)基、1.0%瓊脂糖、80mm蔗糖。加入互補(bǔ)核苷酸鏈,使其終濃度達(dá)到400μm。
3)將蕓苔屬花柱切下,插入含有400μm的培養(yǎng)基中培養(yǎng),并設(shè)置空白對(duì)照組(ck)(圖2)。4小時(shí)后,提取其花柱rna,并反轉(zhuǎn)錄成cdna。
4)以轉(zhuǎn)錄的cdna為模板,進(jìn)行熒光定量pcr。反應(yīng)體系為:正向、反向引物(10μm)各1μl;模板1μl;ssofastevagreensupermix10μl;無酶水7μl。
5)引物序列(5’-3’)為:
正向:gaacagcacaggaagcaaca;
反向:agctctgccacttcgttcat
6)經(jīng)整理分析得出:經(jīng)過處理后的nadph氧化酶基因的表達(dá)量顯著減少(圖3,ck是未作處理的空白試驗(yàn))。