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菊芋V型質(zhì)子泵c亞基基因HtVHAc1的克隆及其工程應(yīng)用的制作方法

文檔序號(hào):11647230閱讀:334來源:國知局
本發(fā)明屬于基因工程
技術(shù)領(lǐng)域
:,涉及菊芋液泡型(v型)質(zhì)子泵c亞基基因htvhac1的克隆及其工程應(yīng)用。
背景技術(shù)
::植物細(xì)胞的顯著特征之一是有一個(gè)或幾個(gè)巨大的液泡,在成熟的植物細(xì)胞中,液泡的體積一般可達(dá)到細(xì)胞體積的90%以上。液泡是植物細(xì)胞中養(yǎng)分離子(如氮,磷,鉀)或有害離子(如重金屬和大量的鈉離子)的主要的儲(chǔ)存器官。在鹽土中過量的鈉離子是對植物造成離子特異傷害的最初原因(flowers,1997;testeranddavenport,2003;kronzuckerandbritto,2011)。目前全世界總共大約2.3億公頃的灌溉農(nóng)地中約20%在不同程度上受到灌溉和施肥造成的鹽漬化危害(flowers,1977;zhu,2002;flowers,2004)。提高植物將鈉離子儲(chǔ)存(區(qū)隔)入液泡是提高植物抗鹽性的重要途徑之一((cardenetal.,2003;cuinetal.,2003))。另外鉀是植物生長的必須的大量元素,由于鉀,鈉同屬堿金屬家族,離子水化半徑和活性有著較大的相似性,增強(qiáng)對鉀的吸收和儲(chǔ)存是控制作物k+/na+離子平衡,提高植物的抗鹽性的重要途徑(shabalaandcuin,2008)。植物細(xì)胞膜電位為負(fù)值而液泡膜電位為正值,通常情況下將陽離子(如鉀、鈉等)區(qū)隔入液泡是一個(gè)耗能過程(汪香梅和黃敏仁,2001)。在液泡膜上的很多離子轉(zhuǎn)運(yùn)體都不能直接催化atp產(chǎn)生能量,而是需要利用間接的、跨液泡膜的質(zhì)子梯度所提供的能量(趙可夫和范海,2000)。跨液泡膜的質(zhì)子梯度主要有膜上的焦磷酸水解酶(h+-ppase)和液泡型質(zhì)子泵(v-h+-atpas)提供。植物v-h+-atpase是一個(gè)分子質(zhì)量為400~650kd的多聚體復(fù)合酶,由多個(gè)亞基組成,呈現(xiàn)出“球莖”結(jié)構(gòu),這種結(jié)構(gòu)與葉綠體及線粒體的f-h+-atpase極為相似,如圖1所示,它由兩部分組成,膜外親水結(jié)構(gòu)域(v1)和膜內(nèi)疏水結(jié)構(gòu)域(v0)。v1部分由8個(gè)亞基(a~h)構(gòu)成,v0部分由6個(gè)亞基(a,c,c’,c”,d,e)構(gòu)成,其中c亞基是一個(gè)疏水亞基,參與質(zhì)子通道的形成,也是目前為止研究最多的一個(gè)(tsuyoshinishi,2002)。由于它在不同種屬間的同源性大大超過了65%,因此認(rèn)為它是目前已知的最為保守的脂質(zhì)蛋白。c亞基是分子量約為16kd,以4拷貝對稱排列同c’和c”形成一個(gè)六聚體(finbowme,1997),有6個(gè)質(zhì)子結(jié)合點(diǎn),c亞基中2/3的氨基酸殘基構(gòu)成4個(gè)跨膜的α螺旋,并在第四個(gè)跨膜的α螺旋上含有一個(gè)高度保守的谷氨酸(glu)殘基,推測它是質(zhì)子的結(jié)合位點(diǎn),同時(shí)也是v-h+-atpase活性抑制劑二環(huán)己碳二亞胺(dccd)的作用位點(diǎn),c亞基在v-h+-atpase的組裝中起非常重要的作用,是v-h+-atpase全酶的必要部分(nelson,2003)。技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:本發(fā)明的目的之一在于提供菊芋v型質(zhì)子泵c亞基的基因htvhac1,其序列如seqidno.1所示。菊芋v型質(zhì)子泵c亞基基因htvhac1的克隆,包括如下步驟:1)提取南菊芋塊莖的rna反轉(zhuǎn)錄為cdna,以cdna作為模板;2)登入ncbi網(wǎng)站查找不同物種的vhac基因的蛋白或者cdna編碼的氨基酸序列,進(jìn)行多序列比對,確定了合適的保守區(qū)域,利用引物設(shè)計(jì)軟件primer5.0設(shè)計(jì)引物序列p1和p2,p1如seqidno.2所述,p2為seqidno.3所述;3)htvhac1基因pcr擴(kuò)增:pcrbuffer2.5μl,dntpmix2μl,上下游引物各1μl,模板1μl,kod高保真酶0.5μl,雙蒸水17μl,pcr擴(kuò)增程序如下:94℃預(yù)變性3min,94℃變性30s,58℃復(fù)性延伸2min,35個(gè)循環(huán)后,72℃5min充分延伸,10℃保持,pcr擴(kuò)增后的產(chǎn)物通過0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測,htvhac1基因的大小為549b,序列如seqidno.1所示;4)htvhac1基因載體的構(gòu)建,將htvhac1基因pcr產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳分離后切膠回收,將純化后片段與pmd19-t中間載體連接,酶連體系包含1μl的pmd19-t載體,7μl的pcr純化產(chǎn)物,1μlt4連接酶,1μlt4buffer,16℃連接過夜,再轉(zhuǎn)入大腸桿菌dh5α感受態(tài)細(xì)胞中涂在含有50μg/mlamp的lb固體培養(yǎng)基上生長12h-16h后,挑取陽性菌落進(jìn)行測序,將測序正確的菌液加入等體積體積比30%甘油于-70℃保存?zhèn)溆茫@得含有htvhac1基因全長序列的重組質(zhì)粒,命名為htvhac1-p。本發(fā)明還公開了菊芋v型質(zhì)子泵c亞基基因htvhac1的應(yīng)用,其特征在于,包括如下步驟:1)擴(kuò)增基因htvhac1、bamhi和kpni酶切位點(diǎn),與peasy-blunt中間載體連接,獲得重組質(zhì)粒htvhac1-pea;2)將步驟1)獲得的重組質(zhì)粒htvhac1-pea插入到ptck303載體構(gòu)建表達(dá)載體ptck303-htvhac1;3)經(jīng)酶切驗(yàn)證后的表達(dá)載體ptck303-htvhac1轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌,將獲得的轉(zhuǎn)有ptck303-htvhac1質(zhì)粒的農(nóng)桿菌侵染水稻愈傷組織,共培養(yǎng)后經(jīng)過選擇培養(yǎng)、分化、生根、煉苗得到轉(zhuǎn)基因植株。優(yōu)選的,基因htvhac1在增強(qiáng)植物耐鹽能力中的應(yīng)用。優(yōu)選的,基因htvhac1在提高植物在貧瘠土壤中的產(chǎn)量中的應(yīng)用。優(yōu)選的,基因htvhac1在開發(fā)耐鹽水稻新品種中的應(yīng)用。優(yōu)選的,基因htvhac1在培育貧瘠土壤中高產(chǎn)水稻新品種中的應(yīng)用。本發(fā)明的有益效果:1.本發(fā)明中,首次克隆htvhac1基因并發(fā)現(xiàn)htvhac1基因構(gòu)建的重組表達(dá)載體,通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)的水稻轉(zhuǎn)基因技術(shù)轉(zhuǎn)染到野生型水稻日本晴中,達(dá)到理想耐鹽性并能提高作物產(chǎn)量。2.對htvhac1的亞細(xì)胞定位情況進(jìn)行分析,htvhac1定位為液泡膜型。3.對htvhac1轉(zhuǎn)基因材料進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定,獲得單拷貝且能穩(wěn)定遺傳的轉(zhuǎn)基因水稻株系。4.htvhac1超表達(dá)后不但增強(qiáng)了轉(zhuǎn)基因水稻的耐鹽能力,而且與對照野生型相比,在低養(yǎng)分條件下生物量明顯增大,低鉀環(huán)境下各株系趨勢更加顯著。附圖說明圖1v-atpase的分子結(jié)構(gòu);圖2htvhac1基因cdna全長的克隆電泳檢測圖;圖3htvhac1的跨膜結(jié)構(gòu)分析;圖4植物vhac1的系統(tǒng)進(jìn)化樹分析;圖5htvhac1轉(zhuǎn)基因材料real-timepcr鑒定;圖6htvhac1基因的亞細(xì)胞定位結(jié)果;圖7htvhac1轉(zhuǎn)基因材料正常處理結(jié)果;圖8htvhac1轉(zhuǎn)基因材料低鉀處理結(jié)果;圖9htvhac1轉(zhuǎn)基因材料低營養(yǎng)脅迫結(jié)果;圖10ptck303載體圖;圖11pmd19-t載體圖。具體實(shí)施方式下面結(jié)合具體實(shí)施例方式對本發(fā)明做進(jìn)一步的詳細(xì)說明,以令本領(lǐng)域技術(shù)人員參照說明書文字能夠據(jù)以實(shí)施。具體實(shí)施如下:1.菊芋htvhac1基因的獲得,其步驟如下:1)提取南菊芋1號(hào)塊莖的rna反轉(zhuǎn)錄為cdna,以cdna作為模板。2)登入ncbi網(wǎng)站查找不同物種的vhac基因的蛋白或者cdna編碼的氨基酸序列,進(jìn)行多序列比對,確定了合適的保守區(qū)域,利用引物設(shè)計(jì)軟件primer5.0設(shè)計(jì)引物序列p1和p2,p1如seqidno.2所述,p2為seqidno.3所述;p1:5’-atgtcagaaactgcgatatt-3’(seqidno.2);p2:5’-ctacacagtagtaggccatg-3’(seqidno.3)。3)htvhac1基因pcr擴(kuò)增:pcrbuffer2.5μl,dntpmix2μl,上下游引物各1μl,模板1μl,kod高保真酶0.5μl,雙蒸水17μl,pcr擴(kuò)增程序如下:94℃預(yù)變性3min,94℃變性30s,58℃復(fù)性延伸2min,35個(gè)循環(huán)后,72℃5min充分延伸,10℃保持,pcr擴(kuò)增后的產(chǎn)物通過0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測,htvhac1基因的大小為549b,序列如seqidno.1所示;seqidno.1如下:4)htvhac1基因載體的構(gòu)建,將htvhac1基因pcr產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳分離后切膠回收,將純化后片段與pmd19-t中間載體連接,酶連體系包含1μl的pmd19-t載體,7μl的pcr純化產(chǎn)物,1μlt4連接酶,1μlt4buffer,16℃連接過夜,再轉(zhuǎn)入大腸桿菌dh5α感受態(tài)細(xì)胞中涂在含有50μg/mlamp的lb固體培養(yǎng)基上生長16h后,挑取陽性菌落進(jìn)行測序,將測序正確的菌液加入等體積體積比30%甘油于-70℃保存?zhèn)溆?,獲得含有htvhac1基因全長序列的重組質(zhì)粒,命名為htvhac1-p。2.植物表達(dá)載體ptck303-htvhac1的構(gòu)建,其步驟如下:根據(jù)htvhac1基因序列,加上bamhi和kpni酶切位點(diǎn)。以htvhac1-p質(zhì)粒為模板,利用引物設(shè)計(jì)軟件primer5.0設(shè)計(jì)引物序列:p1:5’-cgcggatccatgtcagaaactgcgatatt-3’(seqidno.4);p2:5’-cgcggtaccctacacagtagtaggccatg-3’(seqidno.5)。htvhac1基因pcr擴(kuò)增:pcrbuffer2.5μl,dntpmix2μl,上下游引物各1μl,模板1μl,kod高保真酶0.5μl,雙蒸水17μl。pcr擴(kuò)增程序如下:菊芋htvhac1基因在94℃預(yù)變性3min,94℃變性30s,58℃復(fù)性延伸30s,30個(gè)循環(huán)后,72℃5min充分延伸,10℃保持。pcr擴(kuò)增后的產(chǎn)物通過0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測,將htvhac1基因pcr產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳分離后切膠回收,將純化后片段與peasy-blunt中間載體連接,酶連體系包含1μl的peasy-blunt載體,4μl的pcr純化產(chǎn)物,25-28℃連接25min;再轉(zhuǎn)入大腸桿菌dh5α感受態(tài)細(xì)胞中涂在含有50μg/mlkana(卡那霉素)的lb固體培養(yǎng)基上生長16h后,挑取陽性菌落進(jìn)行測序。將測序正確的菌液加入等體積體積比30%甘油于-70℃保存?zhèn)溆?,獲得含有htvhac1基因全長序列的重組質(zhì)粒,命名為htvhac1-pea。測序正確的htvhac1-pea質(zhì)粒用bamhi和kpni雙酶切得到含特定酶切位點(diǎn)的基因片段,回收片段。同時(shí)用bamhi和kpni雙酶切表達(dá)載體ptck303(如圖10所示)(eamensal,blanchardcl,dennises,etal.abidirectionalgenetrapconstructsuitablefort‐dnaandds‐mediatedinsertionalmutagenesisinrice(oryzasatival.)[j].plantbiotechnologyjournal,2004,2(5):367-380.),回收片段,與從中間載體上切下htvhac1的基因片斷通過t4dna連接酶定向連接。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌dh5α感受態(tài)細(xì)胞中,涂在含有50μg/ml卡那霉素的lb固體培養(yǎng)基上生長16h后,挑取陽性克隆,保存陽性克隆,提取大腸桿菌質(zhì)粒送公司測序。最后通過電擊法將ptck303-htvhac1質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至eha105農(nóng)桿菌感受態(tài)細(xì)胞中,轉(zhuǎn)化后涂在含有利弗平(rfp)、卡那霉素(kana)和鏈霉素(str)均為50μg/ml的yep固體培養(yǎng)基上生長72h后,挑取陽性菌落,提取質(zhì)粒,回轉(zhuǎn)大腸桿菌,提取質(zhì)粒經(jīng)測序驗(yàn)證無誤后,將農(nóng)桿菌菌液加入等體積30%甘油于-70℃冰箱保存,后續(xù)試驗(yàn)備用。3.轉(zhuǎn)基因水稻的獲得,其步驟如下:將以上獲得的轉(zhuǎn)有ptck303-htvhac1質(zhì)粒的農(nóng)桿菌,侵染水稻愈傷組織,共培養(yǎng)(暗培)2.5天后洗菌,將晾干的愈傷轉(zhuǎn)入含500mg/l羧芐青霉素(car)和50mg/l潮霉素(hyg)的選擇培養(yǎng)基上進(jìn)行第一輪選擇培養(yǎng),28℃光照培養(yǎng)2周,將長有抗性愈傷的愈傷轉(zhuǎn)到含500mg/l羧芐青霉素和80mg/l潮霉素的選擇培養(yǎng)基上進(jìn)行第二輪選擇培養(yǎng),28℃光照培養(yǎng),直到長出顆粒性的抗性愈傷組織。挑取同一愈傷來的顏色鮮黃的抗性愈傷轉(zhuǎn)入裝有分化培養(yǎng)基的塑料廣口瓶中分化培養(yǎng),等待分化成苗(30d),待苗長至2-3cm左右,放入生根培養(yǎng)基中壯苗。將分化好的苗從生根管挑出,加入適量無菌水,煉苗一周。洗去根部瓊脂培養(yǎng)基,移栽到水稻營養(yǎng)液中生長并進(jìn)行陽性苗鑒定,陽性苗轉(zhuǎn)入大田至收獲,得到t1代轉(zhuǎn)基因種子。本發(fā)明中實(shí)施例使用的培養(yǎng)基均為現(xiàn)有技術(shù)。4.菊芋htvhac1基因的生物信息學(xué)分析:通過blast和genomescan分析基因全長編碼區(qū)(即開放閱讀框,orf)。利用dnaman軟件對htvhac1編碼的氨基酸進(jìn)行同源性分析。htvhac1cdna全長549bp,預(yù)測編碼一條182個(gè)氨基酸組成的多肽鏈,預(yù)測蛋白分子量為20kda。tmhmm網(wǎng)站進(jìn)行跨膜蛋白預(yù)測。tmhmm預(yù)測跨膜結(jié)構(gòu)表明,htvhac1蛋白有4個(gè)跨膜結(jié)構(gòu),分別位于26-48,68-90,110-132,152-174氨基酸之間如圖3所示。菊芋htvhac1基因與蒺藜苜蓿mtvhac基因同源關(guān)系最近;與擬南芥atvhac1基因和互花米草savhac1基因同源關(guān)系較近;而與玉米zmvhac基因和小麥tavhac等基因同源關(guān)系較遠(yuǎn),如圖4所示。5.轉(zhuǎn)基因材料的分子生物學(xué)分析:我們將所獲得的htvhac1轉(zhuǎn)基因水稻材料分別篩選出4個(gè)獨(dú)立的t1代轉(zhuǎn)基因陽性株系的水稻種子于光照培養(yǎng)箱進(jìn)行發(fā)芽4d后,gus染色鑒定轉(zhuǎn)基因水稻陽性株系,利用7l塑料周轉(zhuǎn)箱作培養(yǎng)容器,每盆20株,用海棉固定在塑料板的孔中。開始一天用自來水培養(yǎng),一天后用1/4營養(yǎng)液(其中n:0.51mm;p:0.075mm;k:0.25mm)培養(yǎng)3d,再換1/2營養(yǎng)液(其中n:1.25mm;p:0.15mm;k:0.5mm)培養(yǎng)3d,隨后轉(zhuǎn)入全營養(yǎng)液(其中n:2.5mm;p:0.3mm;k:1mm)培養(yǎng)4周,分別采轉(zhuǎn)基因水稻葉片樣品-70℃保存待用。用trizol試劑提取組織中rna,takarakits反轉(zhuǎn)錄為cdna,使用abiprism7500real-timepcrsystem(appliedbiosystems,fostercity,ca,usa)儀分析轉(zhuǎn)基因水稻中htvhac1在材料地上部中的表達(dá)。轉(zhuǎn)基因水稻株系中htvhac1基因表達(dá)上調(diào)結(jié)果如圖5所示。6.htvhac1亞細(xì)胞定位情況的分析:通過準(zhǔn)備無菌生長的水稻苗,分離其原生質(zhì)體,經(jīng)peg介導(dǎo)的dna轉(zhuǎn)化,使用zeisslsm710nlo共聚焦激光掃描顯微鏡觀察原生質(zhì)體的熒光信號(hào)(63×油鏡)。觀察gfp和yfp熒光信號(hào)所用激發(fā)光/發(fā)射光波長分別為488nm/506~538nm,觀察rfp信號(hào)的波長參數(shù)則分別為561nm/575-630nm。如圖6所示,htvhac1的gfp融合蛋白在水稻原生質(zhì)體的亞細(xì)胞定位結(jié)果顯示,為液泡膜型。7.轉(zhuǎn)基因水稻耐鹽性及養(yǎng)分脅迫耐受性方面的差異:(1)處理方法:我們將htvhac1轉(zhuǎn)基因水稻材料分別篩選出4個(gè)獨(dú)立的t2代轉(zhuǎn)基因陽性株系的水稻種子于光照培養(yǎng)箱進(jìn)行發(fā)芽4d后,gus染色鑒定轉(zhuǎn)基因水稻陽性株系,挑選野生型日本晴水稻,htvhac1轉(zhuǎn)基因水稻4個(gè)株系;長勢一致的苗,每個(gè)株系4個(gè)重復(fù),利用7l塑料周轉(zhuǎn)箱作培養(yǎng)容器,每盆20株,用海棉固定在塑料板的孔中,移栽到人工氣候室進(jìn)行水培實(shí)驗(yàn)。以上為培苗方法,然后進(jìn)行處理。對轉(zhuǎn)基因水稻和野生型水稻分別進(jìn)行了全營養(yǎng)液+100mmnacl(其中n:2.5mm;p:0.3mm;k:1mm)、全營養(yǎng)液(其中n:2.5mm;p:0.3mm;k:1mm)、1/4營養(yǎng)液(其中n:0.51mm;p:0.075mm;k:0.25mm)、1/4k營養(yǎng)液(其中n:2.5mm;p:0.3mm;k:0.25mm)、分開脅迫實(shí)驗(yàn)。每隔3天換一次營養(yǎng)液所用的營養(yǎng)液為國際水稻研究所配方,脅迫4個(gè)星期后,分地上和地下部分別采樣,統(tǒng)計(jì)鮮重。收樣并拍照,拍照結(jié)束后,將各個(gè)材料的根系用去離子水沖洗3遍,然后將根系用0.1mmcaso4漂洗1min。洗完以后將根系擦干,將植株樣品分為地上部和地下部兩部分,分別稱取兩部分的鮮重并記錄數(shù)據(jù)。105攝氏度殺青半小時(shí),常溫(60~70攝氏度)烘干3天。稱地上、地下干重,稱取0.05g干樣到15ml離心管,加入2ml的2mhcl130rpm搖床浸提3天。加去離子水定容15ml,用濾紙過濾殘?jiān)?,吸?ml液體稀釋兩倍?;鹧娣止夤舛扔?jì)測定na、k含量。然后對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。(2)處理結(jié)果:在養(yǎng)分充足、無鹽脅迫時(shí),htvhac1轉(zhuǎn)基因水稻材料對提高水稻生物量沒有明顯的作用(圖7),但是在低k下或者營養(yǎng)脅迫條件下,htvhac1基因均有提高水稻生物量的趨勢,推測htvhac1能增強(qiáng)水稻的耐鹽性,htvhac1轉(zhuǎn)基因水稻還可以提高水稻的營養(yǎng)脅迫耐受性(圖8、圖9)。盡管已經(jīng)示出和描述了本發(fā)明的實(shí)施例,對于本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員而言,可以理解在不脫離本發(fā)明的原理和精神的情況下可以對這些實(shí)施例進(jìn)行多種變化、修改、替換和變型,本發(fā)明的范圍由所附權(quán)利要求及其等同物限定。<110>南京農(nóng)業(yè)大學(xué)<120>菊芋v型質(zhì)子泵c亞基基因htvhac1及其工程應(yīng)用<130>2017<160>2<170>patentinversion3.5<210>1<211>549<212>dna<213>菊芋<400>1atgtcagaaactgcgatattggttggagcttcaagctcatgggctcgtgcgttagtcaag60atctcaccatacacgttttccgccatcggtatcgccatttccatcggagtctctgtcctc120ggtgctgcttggggaatttacattacaggaagtagcttaatcggtgctgccattaaagcc180ccacgtattacctctaaaaatctcatcagtgtaattttctgtgaggcggttgctatatat240ggagtaattgtggcaattattcttcaaacaaagctggagagtgtgccattatcacagaca300tatgctccagaatcccttagagctggatatgcaatatttgcctctggtataattgttgga360tttgcaaaccttgtttgtggattatgtgttggtataatcggaagcagttgtgcattatca420gatgcacaaaactcgtcgctttttgtaaaaattctggtaatagaaatcttcggaagtgca480cttggactgtttggagtaatcgttggcataataatgtctgctcaagcaacatggcctact540actgtgtag549<210>2<211>20<212>dna<213>人工合成序列<400>2atgtcagaaactgcgatatt20<210>3<211>20<212>dna<213>人工合成序列<400>3ctacacagtagtaggccatg20<210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