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用于檢測支原體的PCR引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法與流程

文檔序號:12813362閱讀:2346來源:國知局
用于檢測支原體的PCR引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法與流程
本發(fā)明涉及生物
技術(shù)領(lǐng)域
,尤其是涉及一種用于檢測支原體的pcr引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法。
背景技術(shù)
:支原體(mycoplasma)也稱作霉形體,其是一類缺乏細胞壁的原核微生物。支原體介于細菌和病毒之間,可在無生命培養(yǎng)基中生長繁殖,其結(jié)構(gòu)簡單、個體微小,形態(tài)成分枝狀或絲狀,能通過一般的微孔濾膜濾器(0.22-0.45μm)。自1956年robinson等首次從細胞培養(yǎng)中分離出支原體以來,國內(nèi)外關(guān)于支原體污染細胞和疫苗等生物制品的報道屢見不鮮,細胞培養(yǎng)物被支原體污染成為了極普遍的問題。kuppeve等應(yīng)用多種檢測方法發(fā)現(xiàn)歐洲各實驗室的細胞系均有不同程度的支原體污染。在中國,中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所通過檢測發(fā)現(xiàn)國內(nèi)來源的細胞株系受支原體污染率達到60%。目前已知有20多種支原體可以造成細胞培養(yǎng)的污染,其中又以口腔支原體、精氨酸支原體、發(fā)酵支原體、萊氏無膽甾原體和豬鼻支原體5種支原體為主。在細胞培養(yǎng)過程中,工作環(huán)境、實驗器材、培養(yǎng)基及操作者本身都是污染的來源,因此都會存在支原體污染的風(fēng)險。而支原體污染后會與細胞長期共存,對細胞生長產(chǎn)生不同程度的抑制作用,改變生產(chǎn)細胞的目的基因及其蛋白的表達,也會造成細胞轉(zhuǎn)染效率降低,并且在污染的后期導(dǎo)致細胞變形,對教學(xué)、科研以及生產(chǎn)都會產(chǎn)生嚴重的影響。因此,檢測細胞培養(yǎng)中支原體污染十分必要,且應(yīng)該進行定期檢測監(jiān)控。用于檢測細胞培養(yǎng)中支原體污染的方法有多種,常用的有分離培養(yǎng)法、dna熒光染色法、pcr法、探針法、elisa等多種方法。其中pcr技術(shù)作為一種快速、靈敏、特異且簡便的基因診斷技術(shù)已廣泛應(yīng)用于科學(xué)研究和疾病的診斷。1989年首次報告有應(yīng)用pcr方法檢測診斷支原體感染,隨后不斷出現(xiàn)用pcr方法檢測各種支原體。至今很多檢測支原體的pcr方法在引物選擇上都使用16srrna序列的保守區(qū),但若使用一步法pcr,這些設(shè)計的引物都難以避免與生態(tài)學(xué)上相關(guān)的細菌有交叉反應(yīng),出現(xiàn)假陽性的結(jié)果,又或者出現(xiàn)部分特異性好的引物不能擴增出多數(shù)常見支原體的dna,而出現(xiàn)假陰性結(jié)果。技術(shù)實現(xiàn)要素:基于此,有必要提供一種檢測準(zhǔn)確性高、且能夠用于多種別支原體檢測的用于檢測支原體的pcr引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法。本發(fā)明解決上述技術(shù)問題的技術(shù)方案如下。一種用于檢測支原體的pcr引物,所述pcr引物的序列分別如seqidno:1和seqidno:2所示。本發(fā)明創(chuàng)造性地通過比較選擇不同種別的支原體中所共有的保守序列進行pcr引物的設(shè)計選擇,設(shè)計特異性的pcr引物用于擴增支原體16srna和23srna間的間隔區(qū)的一端基因片段(序列如seqidno:5所示),該基因片段涵蓋多數(shù)的支原體種別,因而可以用于針對多種別的支原體進行pcr擴增檢測。并且由于各種別間隔區(qū)基因結(jié)構(gòu)不同,從而可以根據(jù)擴增產(chǎn)物的大小和酶切部位的不同,作為鑒別種別的根據(jù),為支原體的種別鑒定提供了技術(shù)支持。一種用于檢測支原體的陽性質(zhì)粒的構(gòu)建方法,使用含限制性內(nèi)切酶識別位點序列及seqidno:1所示序列的上游引物和含限制性內(nèi)切酶識別位點序列及seqidno:2所示序列的下游引物對含有支原體的模板進行pcr擴增,并將pcr擴增得到的產(chǎn)物酶切后轉(zhuǎn)入同樣酶切的表達載體中,得到的連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化細菌細胞,篩選陽性克隆,提取質(zhì)粒即得。在其中一個實施例中,所述上游引物中限制性內(nèi)切酶識別位點序列為bamhi識別位點序列,所述上游引物的序列如seqidno:3所示;所述下游引物中限制性內(nèi)切酶識別位點序列為ecori識別位點序列,所述下游引物的序列如seqidno:4所示。在其中一個實施例中,pcr擴增程序為:95℃變性2~5min后進入循環(huán),循環(huán)的參數(shù)為95℃,30s;58℃,30s;72℃,30~40s,30~40個循環(huán)后在72℃延伸5~7min。在其中一個實施例中,所述表達載體是pcdna3.1(+)。在其中一個實施例中,在將pcr擴增得到的產(chǎn)物酶切后轉(zhuǎn)入同樣酶切的表達載體中時,將pcr擴增得到的產(chǎn)物與表達載體分別酶切后,再按照物質(zhì)的量8~3:1的比例將酶切后的pcr擴增得到的產(chǎn)物與酶切后的表達載體混合,并加入t4dna連接酶進行連接反應(yīng)。在其中一個實施例中,所述細菌細胞為e.colidh5α感受態(tài)細胞。一種用于檢測支原體的陽性質(zhì)粒,采用上述任一實施例所述的構(gòu)建方法構(gòu)建得到。一種用于檢測支原體的試劑盒,包括含有pcr引物的試劑和陽性質(zhì)粒,所述含有pcr引物的試劑中的pcr引物的序列分別如seqidno:1和seqidno:2所示,所述陽性質(zhì)粒為上述用于檢測支原體的陽性質(zhì)粒。在其中一個實施例中,所述含有pcr引物的試劑中pcr引物的濃度是4μm,所述含有pcr引物的試劑中還含有1~1.5u的taqdna聚合酶、濃度為150~200μm的dntp以及濃度為1.8~2.5mm的mg2+。一種細胞培養(yǎng)時支原體的檢測方法,使用上述用于檢測支原體的試劑盒,所述檢測方法包括如下步驟:直接將待測的細胞培養(yǎng)樣品與所述含有pcr引物的試劑混合,進行pcr擴增;以所述陽性質(zhì)粒為模板與所述含有pcr引物的試劑混合,進行pcr擴增;比較所述待測的細胞培養(yǎng)樣品與所述陽性質(zhì)粒的pcr擴增結(jié)果。在檢測時(包括上述陽性質(zhì)粒的構(gòu)建時),pcr擴增通過優(yōu)化的pcr擴增程序,可以有效的擴增出所需的片段,如在其中一個實施例中,優(yōu)化的pcr擴增程序為:95℃變性2~5min后進入循環(huán),循環(huán)的參數(shù)為95℃,30s;58℃,30s;72℃,30~40s,30~40個循環(huán)后在72℃延伸5~7min。上述用于檢測支原體的pcr引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法靈敏度和檢測準(zhǔn)確性高,可檢測出核酸含量低至103拷貝/μl以及稀釋倍數(shù)高達64倍的受污染的細胞培養(yǎng)樣品。該試劑盒及檢測方法使用簡單,可以免去樣品預(yù)處理(煮沸)節(jié)省操作時間和污染風(fēng)險,操作簡便,可大批量生產(chǎn)和推廣應(yīng)用于支原體尤其是細胞培養(yǎng)物中支原體的檢測。附圖說明圖1為16srrna和23srrna間的間隔區(qū)特異性片段獲取電泳圖,其中m為dnamaker,dnamakeriii;1、2均為陽性細胞樣品模板;3為以ddh2o為模板的陰性對照。圖2為重組的陽性參照質(zhì)粒zyt-pcdna的菌液pcr鑒定結(jié)果圖,其中m為dnamaker,dnamakeriii;1~5:篩選后的菌液樣品;6:以ddh2o為模板的陰性對照。圖3為重組質(zhì)粒zyt-pcdna酶切鑒定圖,其中m為dnamaker,dnamakeri;1:ecori和bamhi兩種內(nèi)切酶雙酶切的質(zhì)粒zyt-pcdna;2:不酶切的質(zhì)粒zyt-pcdna;3:以ddh2o為模板的陰性對照。圖4為基于陽性參照的靈敏度測試結(jié)果圖,其中m為dnamaker,dnamakeriii;1:拷貝數(shù)為1.16×109拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;2:拷貝數(shù)為1.16×108拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;3:拷貝數(shù)為1.16×107拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;4:拷貝數(shù)為1.16×106拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;5:拷貝數(shù)為1.16×105拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;6:拷貝數(shù)為1.16×104拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;7:拷貝數(shù)為1.16×103拷貝/μl的陽性參照質(zhì)粒;8:陰性對照。圖5為檢測陽性細胞樣品的靈敏度測試結(jié)果圖,其中m為dnamaker,50kbdnaladder;1:稀釋倍數(shù)為8倍的細胞樣品;2:稀釋倍數(shù)為16倍的細胞樣品;3:稀釋倍數(shù)為32倍的細胞樣品;4:稀釋倍數(shù)為64倍的細胞樣品;5:陽性參照;6:陰性對照。圖6為預(yù)混pcr反應(yīng)試劑2×mycoplasmapcrmastermix對細胞培養(yǎng)物的檢測分析結(jié)果圖,其中m為dnamaker,dnamakeri;1:受污染的細胞培養(yǎng)上清液(cho);2:受污染的細胞培養(yǎng)上清液(293t);3:受污染的細胞懸液(jurkat);4:無污染的細胞培養(yǎng)上清液(cho);5:無污染的細胞培養(yǎng)上清液(293t);6:無污染的細胞培養(yǎng)上清液(jurkat);7:無污染的細胞懸液(cho);8:無污染的細胞懸液(jurkat);9:陽性參照;10:陰性對照。具體實施方式為了便于理解本發(fā)明,下面將參照相關(guān)附圖對本發(fā)明進行更全面的描述。附圖中給出了本發(fā)明的較佳實施例。但是,本發(fā)明可以以許多不同的形式來實現(xiàn),并不限于本文所描述的實施例。相反地,提供這些實施例的目的是使對本發(fā)明的公開內(nèi)容的理解更加透徹全面。除非另有定義,本文所使用的所有的技術(shù)和科學(xué)術(shù)語與屬于本發(fā)明的
技術(shù)領(lǐng)域
的技術(shù)人員通常理解的含義相同。本文中在本發(fā)明的說明書中所使用的術(shù)語只是為了描述具體的實施例的目的,不是旨在于限制本發(fā)明。本文所使用的術(shù)語“和/或”包括一個或多個相關(guān)的所列項目的任意的和所有的組合。下述實施例中的實驗材料,若無特別說明,均是來源于商業(yè)途徑。所述的實驗方法,若無特別說明,均為通用實驗方法。實施例1:陽性質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定(1)16srrna和23srrna間的間隔區(qū)特異性片段的獲取以已知受支原體污染的細胞培養(yǎng)物為模板,利用引物p1/p2擴增16srrna和23srrna間的間隔區(qū)特異性片段,并在上下游中分別引入bamhi和ecori酶切位點,并在酶切位點前添加5個保護性堿基,引物序列如下:p1:5'-gatcagaattcgggagcaaacaggattagtatccct-3'(seqidno:3);p2:5'-catacggatcctgcaccatctgtcactctgttaccctc-3'(seqidno:4)。引物p1/p2擴增條件為:95℃變性2min后進入循環(huán);循環(huán)參數(shù)為:95℃30s,58℃30s,72℃30s;35個循環(huán)后72℃延伸7min。將圖1所示的pcr產(chǎn)物純化回收后于-20℃保存?zhèn)溆谩?2)質(zhì)粒zyt-pcdna的構(gòu)建與鑒定分別以擴增的16srrna和23srrna間的間隔區(qū)特異性片段和載體pcdna3.1(+)(賽默飛公司)為底物,用bamhi和ecori雙酶切后,兩者按照物質(zhì)的量比例為3:1混合,利用takara公司的t4dnaligase按照使用說明于16℃下過夜連接。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化e.colidh5α感受態(tài)細胞,進行氨芐抗性平板篩選,進行菌液pcr(如圖2)獲得陽性質(zhì)粒種菌。陽性質(zhì)粒種菌進行擴大培養(yǎng),提取質(zhì)粒,獲得重組的陽性質(zhì)粒zyt-pcdna。用bamhi和ecori對獲得的質(zhì)粒進行酶切鑒定,結(jié)果如圖3所示,并對該質(zhì)粒進行序列測定,如seqidno:1所示,鑒定結(jié)果證實構(gòu)建正確。將菌液按3:1與石蠟混合,作種菌保存于-20℃。(3)陽性參照的獲得取保存的種菌擴大培養(yǎng),按1:1000比例加入新的lb培養(yǎng)基中,培育16h后,提取質(zhì)粒zyt-pcdna,溶于eb溶液中,作為陽性參照。實施例2:預(yù)混pcr反應(yīng)試劑2×mycoplasmapcrmastermix的配制將引物p3/p4按照4μm的濃度溶解于含有1u的taqdna聚合酶、150μmdntp以及2.0mmmg2+的mix溶液中,獲得2×mycoplasmapcrmastermix,其引物序列如下:p3:5'-gggagcaaacaggattagtatccct-3'(seqidno:1);p4:5'-tgcaccatctgtcactctgttaccctc-3'(seqidno:2)。實施例3:支原體檢測試劑盒靈敏度分析(1)基于陽性參照質(zhì)粒的靈敏度分析將陽性質(zhì)粒種菌進行擴大培養(yǎng),提取質(zhì)粒,利用dna濃度測定儀測定質(zhì)粒濃度。根據(jù)公式:拷貝數(shù)(copies/μl)=[(質(zhì)粒濃度ng/μl×10-9)×(6.02×1023)]÷(陽性參照質(zhì)粒長度×660),計算陽性參照質(zhì)粒的拷貝數(shù)。將陽性參照質(zhì)粒按10倍梯度稀釋,稀釋倍數(shù)分別從10倍到107倍。以各稀釋倍數(shù)的陽性參照質(zhì)粒為模板,利用2×mycoplasmapcrmastermix進行pcr擴增,其反應(yīng)體系如下:pcr擴增條件為:95℃變性2min后進入循環(huán);循環(huán)參數(shù)為:95℃30s,58℃30s,72℃30s;30個循環(huán)后72℃延伸7min。pcr產(chǎn)物于2%瓊脂糖凝膠上跑電泳,電壓100v下進行40min。于紫外下觀察,本檢測方法靈敏度高,在103拷貝/μl下仍可以擴增出270bp左右的目的條帶,結(jié)果如圖4。(2)基于陽性細胞樣品的靈敏度分析將陽性質(zhì)粒按2倍梯度稀釋,稀釋倍數(shù)分別從4倍到64倍。以各稀釋倍數(shù)的陽性細胞樣品為模板,利用2×mycoplasmapcrmastermix進行pcr擴增,其反應(yīng)體系如下:組分體積(μl)2×mycoplasmapcrmastermix10ddh2o8模板(細胞樣品或ddh2o)2總體積20pcr擴增條件為:95℃變性2min后進入循環(huán);循環(huán)參數(shù)為:95℃30s,58℃30s,72℃30s;30個循環(huán)后72℃延伸7min。pcr產(chǎn)物于2%瓊脂糖凝膠上跑電泳,電壓100v下進行40min。于紫外下觀察,本檢測方法對細胞樣品的靈敏度高,稀釋64倍的陽性細胞樣品仍可以擴增出270bp左右的目的條帶,結(jié)果如圖5。上述實驗結(jié)果表明:(1)本支原體檢測方法的靈敏度高,可以檢測出核酸含量低至103拷貝/μl以及稀釋倍數(shù)高達64倍的受污染的細胞樣品;(2)試劑盒操作方便,僅需按體系要求加入樣品即可;(3)耗時短,2h左右即可獲得檢測結(jié)果。實施例4預(yù)混pcr反應(yīng)試劑2×mycoplasmapcrmastermix對細胞培養(yǎng)物的檢測分析利用預(yù)混pcr反應(yīng)試劑2×mycoplasmapcrmastermix分別對確認受支原體污染的細胞培養(yǎng)上清液和細胞懸液、無支原體污染的細胞培養(yǎng)上清液及細胞懸液進行pcr擴增,其體系如下:組分體積(μl)2×mycoplasmapcrmastermix10ddh2o8模板(細胞樣品或ddh2o)2總體積20pcr擴增條件為:95℃變性2min后進入循環(huán);循環(huán)參數(shù)為:95℃30s,58℃30s,72℃30s;30個循環(huán)后72℃延伸7min。pcr產(chǎn)物于2%瓊脂糖凝膠上跑電泳,電壓100v下進行40min。于紫外下觀察,確認受污染的3個細胞培養(yǎng)樣品均可擴增出270bp左右的目的條帶,確認無支原體污染的5個細胞培養(yǎng)樣品均無擴增條帶,如圖6。上述實驗結(jié)果表明:本支原體檢測試劑可適用于檢測細胞培養(yǎng)的上清液或細胞懸液是否有支原體的污染,能擴增出目的條帶的說明受支原體污染,無擴增條帶的說明不受支原體污染。以上所述實施例的各技術(shù)特征可以進行任意的組合,為使描述簡潔,未對上述實施例中的各個技術(shù)特征所有可能的組合都進行描述,然而,只要這些技術(shù)特征的組合不存在矛盾,都應(yīng)當(dāng)認為是本說明書記載的范圍。以上所述實施例僅表達了本發(fā)明的幾種實施方式,其描述較為具體和詳細,但并不能因此而理解為對發(fā)明專利范圍的限制。應(yīng)當(dāng)指出的是,對于本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員來說,在不脫離本發(fā)明構(gòu)思的前提下,還可以做出若干變形和改進,這些都屬于本發(fā)明的保護范圍。因此,本發(fā)明專利的保護范圍應(yīng)以所附權(quán)利要求為準(zhǔn)。sequencelisting<110>廣東順德工業(yè)設(shè)計研究院(廣東順德創(chuàng)新設(shè)計研究院)<120>用于檢測支原體的pcr引物、陽性質(zhì)粒及其構(gòu)建方法、試劑盒及檢測方法<160>5<170>patentinversion3.3<210>1<211>25<212>dna<213>人工序列<400>1gggagcaaacaggattagtatccct25<210>2<211>27<212>dna<213>人工序列<400>2tgcaccatctgtcactctgttaccctc27<210>3<211>36<212>dna<213>人工序列<400>3gatcagaattcgggagcaaacaggattagtatccct36<210>4<211>38<212>dna<213>人工序列<400>4catacggatcctgcaccatctgtcactctgttaccctc38<210>5<211>272<212>dna<213>天然序列<400>5gggagcaaacaggattagtatccctggtagtccacgccgtaaacgatgatcattagttgg60tggaataatttcactaacgcagctaacgcgttaaatgatccgcctgagtagtatgctcgc120aagagtgaaacttaaaggaattgacgggaacccgcacaagcggtggagcatgtggtttaa180tttgaagatacgcgtagaaccttacccgctcttgacatcttctgcaaagctatagagata240tagtggagggtaacagagtgacagatggtgca272當(dāng)前第1頁12
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