本發(fā)明屬于細(xì)菌遺傳改造技術(shù)領(lǐng)域,具體地說,涉及一種基于自然轉(zhuǎn)化的擬態(tài)弧菌高效遺傳重組方法及應(yīng)用。
背景技術(shù):
自然轉(zhuǎn)化(naturaltransformation)技術(shù)構(gòu)建基因缺失株,是于2010成功應(yīng)用于霍亂弧菌的基因編輯,并隨后不斷的予以完善。該方法的理論基礎(chǔ)是基于細(xì)菌的自然轉(zhuǎn)化(naturaltransformation)原理,弧菌營(yíng)養(yǎng)饑餓條件下通過幾丁質(zhì)誘導(dǎo)可成為自然感受態(tài)攝取外源dna,當(dāng)外源dna與自身靶基因同源時(shí)可與細(xì)菌靶基因發(fā)生同源重組交換。但該技術(shù)還未在擬態(tài)弧菌上應(yīng)用成功?;蛉笔У姆椒ㄟ€包括:自殺質(zhì)粒介導(dǎo)的基因重組技術(shù)和λ-red重組技術(shù)。自殺質(zhì)粒介導(dǎo)的基因重組技術(shù)如下:1、通過含有抗性基因和靶基因同源的自殺質(zhì)粒;2、通過結(jié)合轉(zhuǎn)移或電轉(zhuǎn)化的方式將構(gòu)建的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化進(jìn)入打靶菌株,自殺質(zhì)粒的同源部分會(huì)與細(xì)菌靶基因發(fā)生同源重組交換;3、通過抗生素平板對(duì)陽性缺失株進(jìn)行篩選。該技術(shù)實(shí)驗(yàn)過程繁瑣,重組效率低下。
λ-red重組技術(shù)如下:1、電轉(zhuǎn)化將pkd46質(zhì)粒轉(zhuǎn)化進(jìn)入目的菌株,加入l-阿拉伯糖培養(yǎng)(pkd46質(zhì)??赏ㄟ^l-阿拉伯糖誘導(dǎo)表達(dá)exo、beta和gam蛋白,gam蛋白可抑制核酸酶降解打靶dna,exo和beta蛋白介導(dǎo)打靶dna發(fā)生同源重組);2、電擊轉(zhuǎn)化打靶dna;3、通過抗生素平板對(duì)陽性缺失株進(jìn)行篩選;λ-red重組技術(shù)基于大腸桿菌λ噬菌體開發(fā)的基因敲除技術(shù),較為廣泛的應(yīng)用于大腸桿菌或與大腸桿菌親緣性相近的物種;擬態(tài)弧菌由于與大腸桿菌親緣性較遠(yuǎn)將導(dǎo)致敲除效率低下;且操作繁瑣。
現(xiàn)已能通過λ-red重組技術(shù)構(gòu)建擬態(tài)弧菌的基因缺失,但是其缺點(diǎn)如下:第一、λ-red重組技術(shù)基于大腸桿菌λ噬菌體開發(fā)的基因敲除技術(shù),較為廣泛的應(yīng)用于大腸桿菌或與大腸桿菌親緣性相近的物種;擬態(tài)弧菌由于與大腸桿菌親緣性較遠(yuǎn)將導(dǎo)致敲除效率低下;第二、需通過兩次電轉(zhuǎn)將pkd46質(zhì)粒和打靶dna轉(zhuǎn)化至目的菌株,操作過程繁瑣。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
有鑒于此,本發(fā)明針對(duì)上述的問題,提供了一種基于自然轉(zhuǎn)化的擬態(tài)弧菌高效遺傳重組方法及應(yīng)用。
為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明公開了一種基于自然轉(zhuǎn)化的擬態(tài)弧菌高效遺傳重組方法,包括以下步驟:
1)以擬態(tài)弧菌sccf01株基因組為模板,使用目的基因上臂和目的基因下臂引物對(duì)擴(kuò)增目的基因上臂序列和下臂序列;以pkd4質(zhì)粒為模板,使用kan引物對(duì)擴(kuò)增卡那霉素抗性基因片段;
2)將擴(kuò)增得到的卡那霉素抗性基因片段、目的基因上臂序列和下臂序列片段進(jìn)行融合,得到含有卡那霉素抗性基因片段、目的基因上臂序列和下臂序列片段的融合pcr產(chǎn)物;
3)將步驟2)獲得融合pcr產(chǎn)物與受體擬態(tài)弧菌sccf01株進(jìn)行自然轉(zhuǎn)化,經(jīng)過對(duì)抗性標(biāo)記基因的篩選,獲得擬態(tài)弧菌sccf01株的缺失株。
進(jìn)一步地,步驟1)中的pcr擴(kuò)增的反應(yīng)體系均為:
進(jìn)一步地,步驟1)中的pcr擴(kuò)增條件:98℃預(yù)變性3min;98℃變性10s,60℃退火10s,72℃延伸150s共35個(gè)循環(huán)72℃延伸10min。
進(jìn)一步地,所述目的基因?yàn)閠lh基因,其對(duì)應(yīng)的目的基因上臂和目的基因下臂引物對(duì)分別是tlh-up和tlh-down引物對(duì),所述tlh-up引物對(duì)包括tlh-up-f和tlh-up-r,其核苷酸序列分別為seqidno.1和seqidno.2所示;所述tlh-down引物對(duì)包括tlh-down-f和tlh-down-r,其核苷酸序列分別為seqidno.3和seqidno.4所示;所述kan引物對(duì)包括kan-f和kan-r,其核苷酸序列分別為seqidno.5和seqidno.6所示。
進(jìn)一步地,步驟2)中的融合具體為:
第一步pcr反應(yīng)體系:
第二步pcr反應(yīng)體系
進(jìn)一步地,步驟3)中的自然轉(zhuǎn)化具體為:
3.1)將保存于-80℃的擬態(tài)弧菌sccf01株復(fù)蘇于lb培養(yǎng)基或者接種于tcbs瓊脂培養(yǎng)基,含30℃培養(yǎng)24h,挑取單菌落接種于10mllb液體培養(yǎng)基,在30℃條件下180r/min振蕩培養(yǎng)至od600約為0.4,將5ml菌液8000×g離心5min,棄上清后使用1ml滅菌無葡萄糖m9培養(yǎng)液洗滌一次后,再用1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液重懸,其中,無葡萄糖m9培養(yǎng)液中加入32mmmgso4和5mmcacl2;
3.2)向重懸菌加入80mg高溫滅菌后的幾丁質(zhì),30℃孵育24h;
3.3)輕輕吸去孵育后的上清,重新加入1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液重懸和dna總量大于500ng的重組片段pcr產(chǎn)物,30℃孵育24h,其中,無葡萄糖m9培養(yǎng)液中加入32mmmgso4和5mmcacl2;
3.4)將孵育后的細(xì)菌渦旋振蕩20s,吸取100μl菌液涂于lb+kan平板上篩選缺失株。
本發(fā)明還提供一種上述的基于自然轉(zhuǎn)化的擬態(tài)弧菌高效遺傳重組方法在構(gòu)建擬態(tài)弧菌缺失株中應(yīng)用。
與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明可以獲得包括以下技術(shù)效果:
1)本發(fā)明操作過程相較于自殺質(zhì)粒介導(dǎo)的基因重組技術(shù)和λ-red重組技術(shù),無需電轉(zhuǎn)質(zhì)?;虼虬衐na,操作簡(jiǎn)單。
2)本發(fā)明重組效率高,減少通過抗生素平板對(duì)陽性缺失株進(jìn)行篩選的工作量。
3)該技術(shù)方案敲除基因僅需要3天就可完成,縮短研究周期。
4)本發(fā)明可用于研究擬態(tài)弧菌基因功能以及開發(fā)擬態(tài)弧菌基因缺失疫苗。
當(dāng)然,實(shí)施本發(fā)明的任一產(chǎn)品并不一定需要同時(shí)達(dá)到以上所述的所有技術(shù)效果。
附圖說明
此處所說明的附圖用來提供對(duì)本發(fā)明的進(jìn)一步理解,構(gòu)成本發(fā)明的一部分,本發(fā)明的示意性實(shí)施例及其說明用于解釋本發(fā)明,并不構(gòu)成對(duì)本發(fā)明的不當(dāng)限定。在附圖中:
圖1是本發(fā)明融合pcr反應(yīng);
圖2是本發(fā)明自然轉(zhuǎn)化流程示意圖;
圖3是本發(fā)明實(shí)施例2中卡那霉素基因檢測(cè)和tlh基因檢測(cè);其中,a表示卡那霉素基因檢測(cè),1代表陽性對(duì)照,2代表△tlh-sccf01,3代表wt-sccf01,4代表陰性對(duì)照,m為mark標(biāo)記;b表示tlh基因檢測(cè);1代表△tlh-sccf01,2代表wt-sccf01,3代表陰性對(duì)照;
圖4是本發(fā)明實(shí)施例3中tonb1基因檢測(cè)和exbb1-exbd1基因檢測(cè);其中,a為tonb1基因檢測(cè),1代表△tonb1,2代表wt-sccf01,3代表陰性對(duì)照,m為mark標(biāo)記;b為exbb1-exbd1基因檢測(cè),1代表△exbb1-exbd1,2代表wt-sccf01,3代表陰性對(duì)照,m為mark標(biāo)記;c為tonb1基因檢測(cè)(1~3泳道)和exbb1-exbd1基因檢測(cè)(4~6泳道):1代表△exbb1-exbd1-tonb1,2代表wt-sccf01,3代表陰性對(duì)照;4代表△exbb1-exbd1-tonb1,5代表wt-sccf01,6代表陰性對(duì)照,m為mark標(biāo)記;
圖5是本發(fā)明卡那霉素基因檢測(cè);其中,1代表△tonb1,2代表△exbb1-exbd1,3代表△exbb1-exbd1-tonb1,4代表wt-sccf01,5代表陰性對(duì)照,m為mark標(biāo)記。
具體實(shí)施方式
以下將配合實(shí)施例來詳細(xì)說明本發(fā)明的實(shí)施方式,藉此對(duì)本發(fā)明如何應(yīng)用技術(shù)手段來解決技術(shù)問題并達(dá)成技術(shù)功效的實(shí)現(xiàn)過程能充分理解并據(jù)以實(shí)施。
實(shí)施例1
步驟1、打靶片段的構(gòu)建:使用細(xì)菌基因組dna提取試劑盒(dp302)提取擬態(tài)弧菌sccf01株基因組(保藏于四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)獸醫(yī)系,編號(hào):cvm2013034),以sccf01株基因組為模板,使用目的基因上臂和目的基因下臂引物對(duì)擴(kuò)增目的基因上臂序列和下臂序列,pkd4質(zhì)粒為模板,使用kan引物對(duì)擴(kuò)增卡那霉素抗性基因片段,進(jìn)行重疊pcr擴(kuò)增;
三個(gè)dna片段pcr擴(kuò)增的反應(yīng)體系均為:
步驟2、將擴(kuò)增得到的卡那霉素抗性基因片段、目的基因上游和下游同源臂進(jìn)行融合;
融合三個(gè)片段分兩步進(jìn)行,第一步pcr反應(yīng)體系:
步驟3、自然轉(zhuǎn)化
步驟3.1、將保存于-80℃的擬態(tài)弧菌sccf01株復(fù)蘇于lb培養(yǎng)基或者接種于tcbs瓊脂培養(yǎng)基,含30℃培養(yǎng)24h,挑取單菌落接種于10mllb液體培養(yǎng)基,在30℃條件下180r/min振蕩培養(yǎng)至od600約為0.4,將5ml菌液8000×g離心5min,棄上清后使用1ml滅菌無葡萄糖m9培養(yǎng)液洗滌一次后,再用1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液(添加32mmmgso4和5mmcacl2)重懸;
步驟3.2、向重懸菌加入80mg高溫滅菌后的幾丁質(zhì),30℃孵育24h;
步驟3.3、輕輕吸去孵育后的上清,重新加入1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液(添加32mmmgso4和5mmcacl2)重懸和dna總量大于500ng的打靶片段(重新?lián)Q液是為了防止孵育過程中細(xì)菌產(chǎn)生核酸酶降解打靶片段),30℃孵育24h;
步驟3.4、將孵育后的細(xì)菌渦旋振蕩20s,吸取100μl菌液涂于lb+kan平板上篩選缺失株。
步驟4、缺失株特異性pcr鑒定:挑取傳代后具有卡那霉素抗性的菌落,于10mllb液體培養(yǎng)基,180r/min振蕩培養(yǎng)過夜后提取基因組為模板,分別使用2對(duì)引物進(jìn)行pcr反應(yīng)鑒定缺失株,該2對(duì)引物分別為目的基因上下游引物和kan上下游引物。采用目的基因上下游引物鑒定sccf01株的目的基因是否完全通過同源重組缺失,判定結(jié)果wt-sccf01株為陽性,△目的基因-sccf01為陰性;kan-f、r引物(kan上下游引物)鑒定卡那霉素抗性基因是否重組整合進(jìn)入sccf01基因組,判定結(jié)果:wt-sccf01株為陰性,△目的基因-sccf01為陽性。
pcr反應(yīng)體系:12.5μlmix-reactionbuffer,上下游引物各1μl(10μmol/l),模板1μl,8.5μlddh2o。pcr擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性4min;94℃變性30s,60℃退火30s,72℃延伸2min共30個(gè)循環(huán);72℃延伸10min,1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)pcr擴(kuò)增產(chǎn)物的大小。
其中,1、用于融合pcr使用的dna聚合酶應(yīng)選擇高保真酶,原因:普通pcr使用的酶為taq酶,該酶易產(chǎn)生錯(cuò)配堿基,同時(shí)會(huì)在末端添加a堿基,將影響三段pcr融合。
2、幾丁質(zhì)是擬態(tài)弧菌形成自然感受態(tài)的關(guān)鍵試劑,因此幾丁質(zhì)應(yīng)選擇正確,購買的幾丁質(zhì)應(yīng)成片狀不溶于水。
3、配置m9培養(yǎng)液應(yīng)避免營(yíng)養(yǎng)成分,原因:擬態(tài)弧菌形成自然感受態(tài)重要必要條件是在饑餓狀態(tài)。
4、用于制備自然轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)菌的od600的取值范圍:0.3~0.5,該時(shí)期細(xì)菌生長(zhǎng)處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,新陳代謝活躍,更易于形成自然感受態(tài);
5、用于孵育的無葡萄糖m9培養(yǎng)液中mgso4和cacl2的濃度分別為32mm和5mm,在該濃度條件下自然轉(zhuǎn)化率最高。
實(shí)施例2以tlh為目的基因的遺傳重組方法
1、打靶片段的構(gòu)建
使用細(xì)菌基因組dna提取試劑盒(dp302)提取擬態(tài)弧菌sccf01株基因組(保藏于四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)獸醫(yī)系,編號(hào):cvm2013034),以sccf01株基因組為模板,使用tlh-up-f、r和tlh-down-f、r(表1)兩對(duì)引物分別擴(kuò)增tlh上游和下游同源臂(核苷酸序列分別如seqidno.1和seqidno.2所示);以pkd4質(zhì)粒為模板,使用kan-f、r引物(表1)擴(kuò)增卡那霉素抗性基因片段(核苷酸序列如seqidno.3所示)。三個(gè)dna片段pcr擴(kuò)增的反應(yīng)體系均為:
表1引物列表
注:引物序列小寫字母表示與pkd4質(zhì)粒同源。
融合三個(gè)片段分兩步進(jìn)行,如圖1所示,第一步pcr反應(yīng)體系:
2、自然轉(zhuǎn)化
如圖2所示,(1)將保存于-80℃的擬態(tài)弧菌sccf01株復(fù)蘇于lb培養(yǎng)基,挑取單菌落接種于10mllb液體培養(yǎng)基,在30℃條件下180r/min振蕩培養(yǎng)至od600約為0.4,將5ml菌液8000×g離心5min,棄上清后使用1ml滅菌無葡萄糖m9培養(yǎng)液洗滌一次后,再用1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液(添加32mmmgso4和5mmcacl2)重懸;(2)向重懸菌加入80mg高溫滅菌后的幾丁質(zhì),30℃孵育24h;(3)輕輕吸去孵育后的上清,重新加入1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液(添加32mmmgso4和5mmcacl2)重懸和dna總量大于500ng的打靶片段(重組片段pcr產(chǎn)物),重新?lián)Q液是為了防止孵育過程中細(xì)菌產(chǎn)生核酸酶降解打靶片段,30℃孵育24h;(4)將孵育后的細(xì)菌渦旋振蕩20s,吸取100μl菌液涂于lb+kan平板上篩選缺失株。
3、缺失株特異性pcr鑒定
挑取傳代后具有卡那霉素抗性的菌落,于10mllb液體培養(yǎng)基,180r/min振蕩培養(yǎng)過夜后提取基因組為模板,分別使用2對(duì)引物進(jìn)行pcr反應(yīng)鑒定缺失株。tlh-f、r鑒定sccf01株的tlh基因是否完全通過同源重組缺失,判定結(jié)果wt-sccf01株為陽性,△tlh-sccf01為陰性;kan-f、r引物鑒定卡那霉素抗性基因是否重組整合進(jìn)入sccf01基因組,判定結(jié)果:wt-sccf01株為陰性,△tlh-sccf為陽性。
pcr反應(yīng)體系:12.5μlmix-reactionbuffer,上下游引物各1μl(10μmol/l),模板1μl,8.5μlddh2o。pcr擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性4min;94℃變性30s,60℃退火30s,72℃延伸2min共30個(gè)循環(huán);72℃延伸10min,1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)pcr擴(kuò)增產(chǎn)物的大小。
缺失株特異性pcr鑒定顯示(圖3),從圖中可以看到,構(gòu)建的缺失株不能擴(kuò)增出tlh基因,而野生菌株則能;構(gòu)建的缺失株能擴(kuò)增出卡那霉素基因條帶,而野生菌株則不能;證明卡那霉素基因成功將tlh基因替換,突變體構(gòu)建成功。
實(shí)施例3擬態(tài)弧菌遺傳重組方法可靠性的驗(yàn)證
為了進(jìn)一步確認(rèn)遺傳重組方法的可靠性,本研究進(jìn)一步構(gòu)建tonb1單基因、exbb1-exbd1雙基因缺失和exbb1-exbd1-tonb1三個(gè)基因缺失的缺失株(擴(kuò)增引物見表2);按照實(shí)施例1的方法,首先用特異性的引物擴(kuò)增目的基因上臂序列和下臂序列,同時(shí)擴(kuò)增出對(duì)應(yīng)卡那霉素抗性基因,再以上述三個(gè)片段作為模板,進(jìn)行重疊pcr擴(kuò)增。所獲得pcr產(chǎn)物經(jīng)過切膠回收純化后按照步驟3)方法進(jìn)行自然轉(zhuǎn)化。自然轉(zhuǎn)化方法:
a)將受體菌接種于tcbs瓊脂培養(yǎng)基,含30℃培養(yǎng)24h,挑取單菌落接種于10mllb液體培養(yǎng)基,在30℃條件下180r/min振蕩培養(yǎng)至od600約為0.4,將5ml菌液8000×g離心5min,棄上清后使用1ml滅菌無葡萄糖m9培養(yǎng)液洗滌一次后,再用1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液重懸(添加32mmmgso4和5mmcacl2);
b)向重懸菌加入80mg高溫滅菌后的幾丁質(zhì),30℃孵育24h;
c)輕輕吸去孵育后的上清,重新加入1ml無葡萄糖m9培養(yǎng)液重懸(添加32mmmgso4和5mmcacl2)和dna總量大于500ng的重組片段pcr產(chǎn)物,30℃孵育24h;
d)將孵育后的細(xì)菌渦旋振蕩20s,吸取100μl菌液涂于lb+kan平板上篩選缺失株。
通過卡那霉素抗性平板篩選的菌株,利用pcr對(duì)缺失的目標(biāo)基因和卡那霉素基因進(jìn)行檢測(cè)(圖4和圖5),從圖中可以看到,相應(yīng)缺失株均不能擴(kuò)增出缺失的目標(biāo)基因,而野生菌株則能;且相應(yīng)缺失株均能擴(kuò)增出卡那霉素基因條帶,而野生菌株則不能;證明卡那霉素基因成功將缺失的目標(biāo)基因替換,突變體構(gòu)建成功。
表2構(gòu)建打靶dna引物列表
表3pcr檢測(cè)表
上述說明示出并描述了發(fā)明的若干優(yōu)選實(shí)施例,但如前所述,應(yīng)當(dāng)理解發(fā)明并非局限于本文所披露的形式,不應(yīng)看作是對(duì)其他實(shí)施例的排除,而可用于各種其他組合、修改和環(huán)境,并能夠在本文所述發(fā)明構(gòu)想范圍內(nèi),通過上述教導(dǎo)或相關(guān)領(lǐng)域的技術(shù)或知識(shí)進(jìn)行改動(dòng)。而本領(lǐng)域人員所進(jìn)行的改動(dòng)和變化不脫離發(fā)明的精神和范圍,則都應(yīng)在發(fā)明所附權(quán)利要求的保護(hù)范圍內(nèi)。
sequencelisting
<110>四川農(nóng)業(yè)大學(xué)
<120>一種基于自然轉(zhuǎn)化的擬態(tài)弧菌高效遺傳重組方法及應(yīng)用
<130>2017
<160>30
<170>patentinversion3.3
<210>1
<211>2114
<212>dna
<213>tlh-up
<400>1
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