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檢測土壤中10種常見病原微生物的基因液相芯片及其檢測方法_2

文檔序號:9270998閱讀:來源:國知局
0),充分懸浮,37 °C溫浴20分鐘。
[00引](4)加入10uL20mg/血溶菌酶,37°C溫浴20分鐘。
[002引 (5)加入1. 5化20mg/mL蛋白酶K,輕柔混勻。
[002引(6)加入15yL10%SDS,50°C水浴2小時至溶液澄清,期間輕輕顛倒混勻若干次。[0024] (7)加 2yL20mg/mLRNAse,65°C水浴 30 分鐘。
[00巧](8)用剪去尖頭的槍頭將上述溶液移到新的潔凈離屯、管中。
[0026] (9)在通風榻中加入250uL苯酪;氯仿;異戊醇(25:24:1),充分混勻,12000 rpm,4°C離屯、10分鐘,上清液轉移到新的離屯、管,重復一次。
[0027] (10)在通風榻中加入250yl氯仿;異戊醇(24 ;1),充分混勻,12000巧m,4°C離 屯、10分鐘,上清液轉移到新的離屯、管。
[002引 (11)加入2. 5倍體積的提前預冷的無水己醇,輕搖,于-80°C沉淀DNA。12000巧m ,4°C離屯、15min。
[0029] (12)用1血70%冰己醇洗漆DM沉淀,然后在65°C,10min烘干。
[0030] (13)用30uLTE溶解,并于-20。C冰箱備用。
[00引]實施例4、樣本PCR擴增 W回收的上清液作為PCR反應的模板,PCR反應體系及反應條件: PCR反應體系; 表3A組PCR反應體系
表4B組PCR反應體系
反應結束后W2%的瓊脂糖凝膠電泳檢查擴增情況。
[0032] 實施例5、巧片雜交、染色、上機 (1) 懸搖、超聲處理微球(已交聯(lián)探針)20秒W重懸之; (2) 配制混合微球工作液:用1. 5XTMAC雜交液將各組微球稀釋至150個All;(注; 每個反應需要33ul混合微球工作液) (3) 懸搖、超聲處理微球20秒W混勻工作液; (4) 向每個反應孔及空白對照孔中加入33ul工作液; (5) 向每個空白孔中加入17ulTE(P服.0);而向每個樣品孔中分別加入已生物素化的 擴增產(chǎn)物17ul; (6) 用槍上下吹吸數(shù)次W混勻各反應孔; (7) 蓋好反應板W防止揮發(fā),將其置于95-100°C5分鐘W使PCR產(chǎn)物雙鏈變性; (8) 之后再將反應板置于52°C15分鐘; (9) 配制新鮮的顯色液;用lxTMAC雜交液將streptavidin-R-phycoeirt虹in(鏈霉 親和素-藻紅蛋白)配成2-4ug/ml;(注;每孔需75ul顯色液) (10) 用1XTMAC雜交液將1. 2um的Milliporefilterplate預濕一下,之后再負壓 抽空;之后將雜交好的反應液移入已預濕的孔中,用負壓抽空W去除上清;之后再每孔加 入75ul顯色液,并用排槍上下吹吸數(shù)次W重懸反應液;迅速將反應液移回PCR板中; (11) 將反應板再置于雜交溫度120r/min解育15分鐘; (12) 反應完成后,在52°C上,用Luminex100機器檢測; (13化lO-Plex檢測系統(tǒng),通過紅、綠兩束激光檢測,紅色激光激發(fā)微球基質的染料從而 對微球編號進行識別,綠色激光對微球表面結合的巧光染料進行識別,實現(xiàn)捕獲探針捕獲 的PCR產(chǎn)物的定量分析。
[0033] 在檢測時,同時WPCR陰性對照進行檢測作為檢測本底。對于每個檢測體系和 檢測本底,儀器輸出的數(shù)據(jù)是相應反應體系內一種編號微球群的巧光強度中位值(Median FluorescenceIntensity,MFI),也就是讀取的該種編號的微球群(〉100個)的每個微球 信號強度的統(tǒng)計平均值。結果判讀;當待檢測樣本的MFI值為其對應的檢測背景信號強度 的5倍W上時即判為陽性。
[0034] 實施例6巧片特異性檢測 特異性主要體現(xiàn)在我們所設計的10種菌的特異性探針只能與自己向對應的那種菌進 行雜交,而不能與另外9種或檢測范圍外的任何菌產(chǎn)生交叉反應。我們提取檢測范圍內10 種菌的基因組,經(jīng)過液相巧片方法,所得結果如表5和圖1所示。我們得到了 10個樣品與 10種探針雜交的巧光中位值,S/B即SampleMFI/BlankMFI,也就是在一次實驗中,每個樣 品所得的MFI與相對應的空白對照的MFI值的比率,我們規(guī)定當S/B乂時,結果就是陽性結 果。從下表看出,樣品與其相應探針雜交所得的MFI值較空白MFI值比率均大于5,而與其 他探針的S/B值低于5,其他范圍外的菌與所有探針的S/B值也均低于5。
[0035] 表5巧片特異性檢測結果
注;B為空白對照,^ /代表糞產(chǎn)堿桿菌,代表豬鏈球菌,公C代表蠟樣芽抱桿菌,# 7代表藤黃微球菌,《戈表馬紅球菌,7 戈表小腸結腸耶爾森菌,表奇異變形桿菌, ^n扭代表黑曲霉,^巧a代表黃曲霉,^ 代表煙曲霉。*11、*8等數(shù)字分別代表微球編 號,其所對應的探針號見表1。
[0036] 實施例7多種菌同時檢測 由于在實際環(huán)境檢測中,±壤往往存在不止一種致病菌,因此為了提高檢測巧片檢測 的效率,進行多種菌的同時檢測是必要的。我們在前期單重PCR驗證完每種探針的特異性 之后,將十種菌分為A、B兩組,詳細分組信息見表1,進行多重PCR擴增、雜交、檢測。W提取 的樣本基因組為模板,將基因組濃度稀釋至100ng/ul,建立五重PCR擴增體系,進行PCR擴 增。A、B多重PCR反應體系見表3、4。依據(jù)模板組合的不同,分別進行任意一種菌的檢測、 或同時進行任意兩種、任意S種、任意四種乃至5種菌的檢測。
[0037] 本研究10種致病菌分為A/B兩組,每組設及5種致病菌,即建立5重PCR擴增體 系的液相巧片檢測法。當在多重PCR體系中,只加入模板基因組1~5種中的任意一種,混合 微球中對應該模板的探針微球就能檢測到相應1種特異信號;當在多重PCR反應體系中加 入模板1~5種的任意2種模板基因組,混合微球中應該能檢測到2種特異信號,該種組合方 式一共有10種;當在多重PCR反應體系中加入模板1~5種的任意3種模板基因組,混合微 球中應該能檢測到3種特異信號,該種組合方式一共有10種;當在多重PCR反應體系中加 入模板1~5種的任意4種模板基因組,混合微球中應該能檢測到4種特異信號,該種組合方 式一共有5種;當在多重PCR反應體系中加入模板1~5種的任意5種模板基因組,混合微球 中應該能檢測到5種特異信號,該種組合方式一共有1種。
[0038] 其中W巧片同時檢測4種菌為例,說明本實驗的可靠性,結果如表6及圖2所示: 表6A組液相巧片檢測任意四種致病菌結果
實施例8 巧片檢測靈敏度實驗 采用建立的多重PCR體系及液相巧片檢測方法進行擴增和檢測。實驗結果表明;糞產(chǎn) 堿桿菌的檢測靈敏度為1pg/ul、蠟樣芽抱桿菌為10fg/ul、豬鏈球菌為100fg/ul、小腸結 腸耶爾森菌為100pg/ul、藤黃微球菌為100fg/ul、馬紅球菌為10fg/ul、奇異變形桿菌 為100pg/ul、黑曲霉為10fg/ul、黃曲霉為100fg/ul、煙曲霉為10pg/ul。巧片檢測靈 敏度極高,fg數(shù)量極的樣本基因組經(jīng)PCR擴增后都能通過液相巧片檢測出來。其中W藤黃 微球菌的實驗結果為例說明,實驗結果如圖3所示。
【主權項】
1. 檢測土壤中10種常見致病菌的核苷酸,其特征在于所述的核苷酸具有:SEQ ID NO: 1-30所示的核苷酸。2. -種采用權利要求1所述核苷酸檢測土壤中10種常見致病菌的方法,其特征在于: 包括如下步驟: (1) 借助生物信息學知識和相關生物信息學軟件,對NCBI中能夠檢索到的所有馬紅球 菌、糞產(chǎn)堿桿菌、奇異變形桿菌、蠟樣芽孢桿菌、小腸結腸耶爾森菌、豬鏈球菌、藤黃微球菌 的16S rDNA~23S rDNA間區(qū)序列和黑曲霉、黃曲霉、煙曲霉的18S rDNA~28S rDNA間區(qū)序列 進行同源性分析,找出保守區(qū)域,設計出針對各自基因片段的特異性探針和引物; (2) 采用多重PCR與一步不對稱PCR技術相結合的PCR方法,多重PCR即將十種菌分為 A/B兩組,每組各含五種菌,PCR時,五對引物混合可以同時對五個相應模板進行同時擴增; 一步不對稱PCR即要求PCR擴增中加入的上、下游引物量不同,以致PCR產(chǎn)物大多數(shù)為單鏈 產(chǎn)物,同時保證PCR產(chǎn)物片段大小,以利于同單鏈特異探針進行雜交,提高雜交信號強度; (3) 特異性探針的5'端進行C12和氨基化修飾,與熒光編碼的微球進行偶聯(lián);將PCR擴 增產(chǎn)物與偶聯(lián)有特異性探針的微球混合液溫育雜交,SA-PE染色,最后用Luminex 100進行 檢測; (4) 由(1)- (3)所建立的液相芯片檢測體系,涉及一種檢測試劑盒的開發(fā),該檢測試 劑盒包括以上全部步驟。3. 權利要求1所述的檢測土壤中10種常見致病菌的核苷酸在制備識別土壤中的馬紅 球菌、奠產(chǎn)堿桿菌、奇異變形桿菌、賭樣芽孢桿菌、小腸結腸耶爾森菌、豬鏈球菌、藤黃微球 菌、黑曲霉、黃曲霉、煙曲霉中的應用。
【專利摘要】本發(fā)明涉及一種檢測10種常見病原微生物的基因液相芯片及其制備方法。本發(fā)明還涉及利用所述的基因液相芯片進行檢測的方法。本發(fā)明以細菌16S rDNA~23S rDNA、真菌18S rDNA~28S rDNA轉錄間隔區(qū)(ITS)為靶基因,建立了檢測10種土壤常見病原微生物液相芯片和檢測方法,為土壤病原微生物的檢測提供一條可信的途徑。本發(fā)明還提供利用上述基因芯片檢測土壤中常見致病菌的試劑盒。利用本發(fā)明的基因芯片和試劑盒檢測土壤中致病菌,具有特異性強、靈敏度高、重復性好等諸多優(yōu)點。
【IPC分類】C12Q1/14, C12Q1/04, C12Q1/68, C12N15/11
【公開號】CN104988144
【申請?zhí)枴緾N201510365878
【發(fā)明人】王磊, 徐洋洋, 田振陽, 王素微, 曹博陽, 馮露
【申請人】南開大學
【公開日】2015年10月21日
【申請日】2015年6月26日
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