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磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法

文檔序號:6224875閱讀:255來源:國知局
專利名稱:磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法
技術(shù)領(lǐng)域
磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法,屬于生物分析技術(shù)領(lǐng)域。
背景技術(shù)
卩比咯并喹呤醌(pyrroloquinolinequinine PQQ)是一種新的氧化還原酶輔基,主要分布于原核生物以及部分植物和哺乳動(dòng)物之中,在牛奶尤其母乳中含量較高,被認(rèn)為是體內(nèi)必需的維生素之一。生物樣本中PQQ的分析方法有氣相色譜-質(zhì)譜法、高效液相色譜、毛細(xì)管電泳法等[文獻(xiàn)方法 I:Zdene " k Glatz*, Martina Moravcova 1 , Oldr " ich Janiczek,Determination of pyrroloquinoline quinone by capillary zone Electrophoresis,Journal of Chromatography B, 739 (2000) 101 - 107.] 毛細(xì)管電泳是二十世紀(jì) 80 年代發(fā)展起來的一種快速分析方法,具有分析速度快、分離效率高、樣品和試劑消耗量少的優(yōu)點(diǎn)。與高效液相色譜法相比,毛細(xì)管柱容易清洗、使用壽命長。文獻(xiàn)報(bào)道的PQQ毛細(xì)管電泳檢測法是在緩沖體系加入β -丙氨酸,采用反相C18小柱固相萃取分離富集細(xì)胞培養(yǎng)基中的PQQ,檢出限為0.1 0.2 μ M,PQQ峰型存在拖尾現(xiàn)象,固相萃取所用的C18小柱價(jià)格昂貴,而且步驟繁瑣,工作量大。近年來,磁納米固相萃取技術(shù)在生物樣品制備領(lǐng)域受到廣泛關(guān)注。由于磁性萃取介質(zhì)直接分散于樣品溶液中,接觸面大,對生物樣品和液體中含固體懸浮物的樣品尤其適合,樣品處理簡單。本發(fā)明采用SiO2與不同極性的吸附劑混合組成,這些吸附劑對疏水性能不同的化合物具有不同的選擇性,從而能夠有效的進(jìn)行分離。本方法快速、簡便,首次應(yīng)用磁固相萃取技術(shù)結(jié)合毛細(xì)管電泳測定牛奶中PQQ的含量。本方法采用的毛細(xì)管電泳法加入了修飾劑環(huán)糊精,首次在毛細(xì)管電泳緩沖體系中加入三氟乙酸,解決了毛細(xì)管電泳圖中峰的拖尾問題。峰的對稱性明顯好于文獻(xiàn)報(bào)道。與文獻(xiàn)方法對比,分離效率提高了 6倍。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于提供一種磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法,使PQQ與其他較難分離的電中性雜質(zhì)達(dá)到高效快速的分離。本發(fā)明的技術(shù)方案:一種磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法:( I)毛細(xì)管選擇及預(yù)處理:選用未涂層的41.5cmX50ym石英毛細(xì)管柱; 新毛細(xì)管柱先依次用甲醇沖洗IOmin,蒸懼水沖洗5min, lmol/L NaOH溶液沖洗30min,蒸懼水沖洗5min,最后再用運(yùn)行緩沖液沖洗10-15min ;每次進(jìn)樣前,用蒸餾水及運(yùn)行緩沖液沖洗2min ;
運(yùn)行緩沖液及樣品溶液均用0.22 μ m微孔針頭過濾器過濾;(2)毛細(xì)管電泳分析條件:檢測波長為249nm,進(jìn)樣方式為0.5psi壓力進(jìn)樣,進(jìn)樣時(shí)間10.0秒,分離電壓為25kv,毛細(xì)管柱溫25°C ;運(yùn)打緩沖液為:pH=8.8、10mmol/L砸砂_10mmol/L β _環(huán)糊精_質(zhì)量濃度0.1% 二
氟乙酸的混合液。(3)生物樣本中吡咯并喹呤醌PQQ的檢測選用牛奶作為生物樣本的典型,①Fe3O4磁性納米粒子的制備:IOOmLl.25mM FeSO4.7Η2060 下攪拌,用 6Μ NaOH 調(diào) pH 至 10,Ih 后磁性沉淀物分離,用去離子水沖洗,60°C真空干燥6h,得Fe3O4磁性納米粒子;②改性的混合磁性功能納米粒子Fe304-Si02-Phenyl_C8的制備:將制備得到的Fe3O4磁性納米粒子加入到含ImM四甲氧基硅烷、ImM苯基三甲氧基硅烷和ImM辛基三甲氧基硅烷混合液中,四甲氧基硅烷:苯基三甲氧基硅烷:辛基三甲氧基硅烷體積比1:1:1,加50mL含w/v0.01%吐溫-100、w/v0.02%十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)的v/vl2.5%甲醇和0.3mL w/v25%NH3作催化劑,120°C攪拌回流12 16h,用水、丙酮、正己烷依次清洗多次,60°C真空干燥6h,得磁性功能納米粒子Fe304-Si02-Phenyl-C8 ;

③牛奶樣品去除蛋白ImL牛奶加5mL甲醇,潤旋振蕩2min,4000rpm離心IOmin,上清液用50mLMcIlvaine buffer緩沖液稀釋,以備磁性固相萃??;McIlvaine buffer緩沖液為:ρΗ7.0,0.1M檸檬酸調(diào)0.2Μ磷酸氫二鈉溶液;④磁性固相萃取稱取上述制備好的50mg磁性功能納米粒子Fe304-Si02-Phenyl_C8于安普瓶中,分別用ImL的甲醇和水活化;加入步驟③處理后的牛奶樣品溶液10mL,渦旋萃取lmin,甲醇解吸3min,解吸液經(jīng)氮?dú)獯蹈?,用pH7.0、100 μ L磷酸緩沖液稀釋,進(jìn)行毛細(xì)管電泳分析。本發(fā)明的有益效果:本發(fā)明采用SiO2與不同極性的吸附劑混合組成,這些吸附劑對疏水性能不同的化合物具有不同的選擇性,從而能夠有效的進(jìn)行分離。本方法快速、簡便,首次應(yīng)用磁固相萃取技術(shù)結(jié)合毛細(xì)管電泳測定牛奶中PQQ的含量。本方法采用的毛細(xì)管電泳法加入了修飾劑環(huán)糊精,首次在毛細(xì)管電泳緩沖體系中加入三氟乙酸,解決了毛細(xì)管電泳圖中峰的拖尾問題。峰的對稱性明顯好于文獻(xiàn)報(bào)道。與文獻(xiàn)方法對比,分離效率提高了 6倍。


圖1pH對PQQ保留時(shí)間的影響。圖2PQQ毛細(xì)管電泳圖,運(yùn)行緩沖液10mmol/L硼砂-10mmol/LP -環(huán)糊精,pH=8.8,分尚電壓25kV。圖3PQQ毛細(xì)管電泳圖,運(yùn)行緩沖液10mmol/L硼砂-10mmol/LP -環(huán)糊精,pH=8.8,
0.1 % 二氣乙酸,分尚電壓25kV。圖4PQQ標(biāo)準(zhǔn)曲線。
圖5a:牛奶磁固相萃取后的毛細(xì)管電泳圖,b:含20μ g/mL PQQ標(biāo)準(zhǔn)品的牛奶溶液經(jīng)磁固相萃取后的毛細(xì)管電泳圖。
具體實(shí)施例方式實(shí)施例1( I)毛細(xì)管電泳分析條件:未涂層石英毛細(xì)管柱(41.5cmX50 μ m,河北永年縣銳灃色譜器件有限公司),新毛細(xì)管先用甲醇沖洗lOmin,蒸餾水沖洗5min,lmol/L NaOH溶液沖洗30min,蒸餾水沖洗5min,最后再用運(yùn)行緩沖液沖洗10_15min。運(yùn)行緩沖液及樣品溶液均用0.22 μ m微孔針頭過濾器過濾。每次進(jìn)樣前,用蒸餾水和運(yùn)行緩沖液沖洗2min。檢測波長是249nm,進(jìn)樣方式為壓力進(jìn)樣(0.5 ^,10.0秒),分離電壓為251^,毛細(xì)管柱溫25°C。運(yùn)行緩沖液為:10mmol/L硼砂-lOmmol/L β -環(huán)糊精混合液,ρΗ=8.8,含有質(zhì)量濃度0.1%的三氟乙酸。( 2)緩沖體系的選擇緩沖體系及濃度直接影響離子的遷移和分離。實(shí)驗(yàn)考察了 PQQ在甘氨酸緩沖液、磷酸緩沖液、硼砂緩沖體系中的分離情況。結(jié)果峰型很差,都達(dá)不到理想的分離狀況??赡躊QQ分子中具有多羧基的緣故,具有較低的淌度,其淌度方向和電滲流方向相反,影響它的流出,不能得到較好的峰型。因此,本實(shí)驗(yàn)考慮在背景電解液中加入環(huán)糊精,β-環(huán)糊精上的14個(gè)仲羥基位于空腔的寬口,其疏水性空腔可以選擇性地和分析物形成包合物。PQQ上的羧基與β_環(huán)糊精上的羥基能夠形成穩(wěn)定的包合物,從而影響樣品的權(quán)均淌度,因此改善了分離。我們在不同緩沖體系(甘氨酸緩沖液、磷酸緩沖液、硼砂緩沖液)中加入β環(huán)糊精,結(jié)果顯示,硼砂環(huán)糊精緩沖體系較好,與單純的硼砂相比,峰型有了很大的改善,能得到較尖銳的峰。( 3 )硼砂濃度的選擇緩沖液濃度是一個(gè)重要的指標(biāo),對選擇性的影響非常突出。我們分別用硼砂濃度5,10,15, 20mmol/L實(shí)驗(yàn),當(dāng)濃度大于10mmol/L時(shí),峰形嚴(yán)重不對稱,分離效果不佳。可能隨著濃度的增加,導(dǎo)電的離子數(shù)增加,毛細(xì)管的電流值增大,焦耳熱增加;而且隨著緩沖液濃度的增加,離子強(qiáng)度增加,電滲流速降低,溶質(zhì)在毛細(xì)管內(nèi)的遷移速度下降,遷移時(shí)間會(huì)延長。當(dāng)濃度小于10mmol/L時(shí),前沿拖尾較為嚴(yán)重。因此,我們選擇硼砂濃度為10mmol/L時(shí)最為合適。(4) pH值對遷移時(shí)間的影響緩沖液的pH值影響可解離分析物的有效電荷,決定其在電場中的遷移速度。同時(shí)它還影響Zeta電勢,通過pH值的選擇可有利調(diào)整電遷移和電滲的平衡,增加分離度。分別調(diào)pH3.0、5.0、7.0、8.0、9.0實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)pH7.0以下,峰很寬,pH大于8.0峰較好。分別測定樣品在pH值為8.5,8.8,9.0,9.5、10.0的硼砂-β環(huán)糊精緩沖溶液中遷移時(shí)間,發(fā)現(xiàn)pH值對保留時(shí)間有明顯的變化,以PH值為橫坐標(biāo),保留時(shí)間為縱坐標(biāo),作圖1。如圖1看出,pH值對其保留時(shí)間有一定的影響,當(dāng)pH大于9.0時(shí),遷移時(shí)間增加,且峰形嚴(yán)重不對稱,故選擇pH小于9.0較為合適,綜合考慮,最終選擇pH為8.8。(5) β-環(huán)糊精濃度的影響環(huán)糊精的濃度直接影響它對分析物的包合, 因此,其濃度的選擇非常重要。我們改變?chǔ)?環(huán)糊精的濃度,分別取5,10,12,15,20mmol/L實(shí)驗(yàn)。當(dāng)β-環(huán)糊精濃度高于20mmol/L時(shí),分離效果欠佳,峰型不理想;當(dāng)β -環(huán)糊精濃度為lOmmol/L時(shí),峰形對稱性有很大的改善,但峰的前沿和拖尾現(xiàn)象始終存在,有待繼續(xù)優(yōu)化,如圖2。(6)有機(jī)溶劑的影響為了進(jìn)一步優(yōu)化分離,我們考慮添加有機(jī)溶劑來改善分離。加入有機(jī)溶劑往往可以使包合常數(shù)K增大,在低濃度的β_環(huán)糊精下達(dá)到分離。我們分別采用乙腈、乙醇等多種有機(jī)溶劑實(shí)驗(yàn),考察其對樣品PQQ分離效果的影響。結(jié)果表明,各種有機(jī)溶劑的加入,對峰的拖尾并無多大的改善。(7)三氟乙酸的影響PQQ的結(jié)構(gòu)式為弱酸 性,我們考慮是否可以添加三氟乙酸來改善峰的拖尾現(xiàn)象。我們在硼砂-β環(huán)糊精體系中,加入少量的三氟乙酸,并考察三氟乙酸濃度的影響,在緩沖體系中分別加入0.01%, 0.05%, 0.1%的三氟乙酸實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明,加入少量的三氟乙酸可以很好的改善峰形的拖尾現(xiàn)象,按濃度來看,選擇0.1%最為合適,能最有效的使峰形變得對稱,如圖3。(8)電壓的選擇溶質(zhì)的出峰時(shí)間對電場強(qiáng)度非常敏感,電場強(qiáng)度會(huì)影響溶質(zhì)在毛細(xì)管中的停留時(shí)間。被分析物與環(huán)糊精形成包合物后,若各組分平均遷移率相差較大,增加電場強(qiáng)度能提高分離度;反之,若平均遷移率相差較小,增加電場強(qiáng)度并不能有效改善分離。包合是一個(gè)快速可逆平衡過程,從動(dòng)力學(xué)角度講,高溫不利于包合,在高電場強(qiáng)度下,由于焦耳熱的產(chǎn)生,徑向溫度梯度增加,使包合常數(shù)K減小,分離度降低,因此,一味增加電場強(qiáng)度并不是一個(gè)良策,通常需要有一個(gè)平衡。在緩沖液為lOmmol/L硼砂-10mmol/Li3-環(huán)糊精混合液,pH=8.8,含有0.1%的三氟乙酸時(shí),考查樣品PQQ在10、15、20、22、25、27kV電壓下的分離情況,當(dāng)電壓大于25kV時(shí),分離時(shí)間縮短,分離度降低,且基線不穩(wěn)定。電壓低于20kv時(shí),分離時(shí)間較長,實(shí)驗(yàn)中選擇25kV最為理想。(9)線性關(guān)系與檢測限測定精密稱取PQQl.0mg,加ImL磷酸緩沖液(pH7.0),用運(yùn)行緩沖液稀釋成濃度為
0.025,0.05,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8、1.0μ g/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個(gè)樣品分別重復(fù)進(jìn)樣3次,
得峰面積取平均值,以平均峰面積為縱坐標(biāo),PQQ濃度C為橫坐標(biāo)作圖。得標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖4)。所得回歸方程為:y=553571x+5686.8(R2=0.9996)。在 0.025 1.0 μ g/mL 濃度范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。最低檢出濃度為0.05 0.1 μ M (S/N彡3)。(10)生物樣本中PQQ的檢測I) Fe3O4磁性納米粒子的制備:IOOmLl.25mM FeSO4.7Η2060Γ下攪拌,用 6Μ NaOH 調(diào) pH 至 10,Ih 后磁性沉淀物分離,用去離子水沖洗。60°C真空干燥6h。2)改性的混合極性功能納米粒子Fe3O4-SiO2-Pheny1-C8的制備:將制備得到的Fe3O4磁性納米粒子加入到含ImM四甲氧基硅燒(98%, tetramethy1rthosi Iicate TM0S),ImM 苯基三甲氧基娃燒(97%, pheny ltrimethoxy si lane, PTMS)和 ImM 辛基三甲氧基娃燒(98%,octy ltrimethoxy si lane, C8)混合物中(1:1:1, v/v/v),力口 5 OmL 含 0.01% 吐溫-100 (w/v),
0.02%CTAB (w/v),12.5% 甲醇(v/v)和 0.3mL25%(w/v)NH3 作催化劑,120°C攪拌回流 16h。用水、丙酮和正己烷依次清洗多次,60°C真空干燥6h。3)牛奶樣品去除蛋白1mL牛奶加5mL甲醇,潤旋振蕩2min,離心4000rpml0min,上清液用50mLMcIlvaine buffer緩沖液(0.1M檸檬酸調(diào)0.2M磷酸氫二鈉pH7.0)稀釋,以備磁性固相萃取。4)磁性固相萃取稱取上述制備好的50mg磁性功能納米材料于安普瓶中,分別用ImL的甲醇和水活化;加入上述牛奶處理后的溶液IOmL,渦旋萃取lmin,甲醇解吸3min。解吸液經(jīng)氮?dú)獯蹈?,?00 μ L磷酸緩沖液(ρΗ7.0)稀釋,進(jìn)行毛細(xì)管電泳分析。如圖5。5)提取回收率與精密度測定稱取一定量的PQQ標(biāo)準(zhǔn)品適量,使其在牛奶中的濃度為20、60、100μ g/L,按上述方法進(jìn)行處理、萃取,經(jīng)毛細(xì)管電泳分析測定PQQ的濃度,測定值除以理論值得PQQ提取回收率。結(jié)果見表I。表I提取回收率測定
權(quán)利要求
1.一種磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法,其特征在于: (1)毛細(xì)管選擇及預(yù)處理: 選用未涂層的41.5cmX 50 μ m石英毛細(xì)管柱;新毛細(xì)管柱先依次用甲醇沖洗lOmin,蒸餾水沖洗5min,lmol/L NaOH溶液沖洗30min,蒸餾水沖洗5min,最后再用運(yùn)行緩沖液沖洗10-15min ;每次進(jìn)樣前,用蒸懼水及運(yùn)行緩沖液沖洗2min ; 運(yùn)行緩沖液及樣品溶液均用0.22 μ m微孔針頭過濾器過濾; (2)毛細(xì)管電泳分析條件: 檢測波長為249nm,進(jìn)樣方式為0.5psi壓力進(jìn)樣,進(jìn)樣時(shí)間10.0秒,分離電壓為25kV,毛細(xì)管柱溫25 °C ; 運(yùn)行緩沖液為:pH=8.8、10mmol/L硼砂-10mmol/L@ -環(huán)糊精-質(zhì)量濃度0.1%三氟乙酸的混合液; (3)生物樣本中吡咯并喹呤醌PQQ的檢測 選用牛奶作為生物樣本的典型 ①Fe3O4磁性納米粒子的制備 IOOmLl.25mM FeSO4.7H2060°C下攪拌,用6M NaOH調(diào)pH至10,Ih后磁性沉淀物分離,用去離子水沖洗,60°C真空干燥6h,得Fe3O4磁性納米粒子; ②改性的混合磁性功能納米粒子Fe3O4-SiO2-Pheny1-C8的制備 將制備得到的Fe3O4磁性納米粒子加入到含ImM四甲氧基硅烷、ImM苯基三甲氧基硅烷和ImM辛基三甲氧基硅烷混合液中,四甲氧基硅烷:苯基三甲氧基硅烷:辛基三甲氧基硅烷體積比1: 1: 1,加50mL含w/v0.01%吐溫-100、w/v0.02%十六烷基三甲基溴化銨的v/vl2.5%甲醇和0.3mL w/v25%NH3作催化劑,120°C攪拌回流12 16h,用水、丙酮、正己烷依次清洗多次,60°C真空干燥6h,得磁性功能納米粒子Fe304-Si02-Phenyl-C8 ; ③牛奶樣品去除蛋白 1mT,牛奶加5mL甲醇,潤旋振蕩2min,4000rpm離心IOmin,上清液用50mL McIlvainebuffer緩沖液稀釋,以備磁性固相萃??; McIlvaine buffer緩沖液為:pH7.0,0.1M檸檬酸調(diào)0.2M磷酸氫二鈉溶液; ④磁性固相萃取 稱取上述制備好的50mg磁性功能納米粒子Fe3O4-SiO2-Pheny1-C8于安普瓶中,分別用ImL的甲醇及水活化;加入步驟③處理后的牛奶樣品溶液10mL,渦旋萃取lmin,甲醇解吸3min,解吸液經(jīng)氮?dú)獯蹈桑胮H7.0、100 μ L磷酸緩沖液稀釋,進(jìn)行毛細(xì)管電泳分析。
全文摘要
磁性固相萃取-毛細(xì)管區(qū)帶電泳測定生物樣本中吡咯并喹呤醌含量的方法,屬于生命分析技術(shù)領(lǐng)域。本發(fā)明采用SiO2與不同極性的吸附劑混合組成,這些吸附劑對疏水性能不同的化合物具有不同的選擇性,從而能夠有效的進(jìn)行分離。本方法采用的毛細(xì)管電泳法加入了修飾劑β-環(huán)糊精,首次在毛細(xì)管電泳緩沖體系中加入三氟乙酸,解決了毛細(xì)管電泳圖中峰的拖尾問題,峰的對稱性明顯好于文獻(xiàn)報(bào)道。本方法快速、簡便,首次應(yīng)用磁固相萃取技術(shù)結(jié)合毛細(xì)管電泳測定牛奶中PQQ的含量。與文獻(xiàn)方法對比,分離效率提高了6倍。
文檔編號G01N27/447GK103196982SQ20131012113
公開日2013年7月10日 申請日期2013年4月9日 優(yōu)先權(quán)日2013年4月9日
發(fā)明者周杏琴, 毛師師, 張建康, 曹國憲, 欽曉峰 申請人:江蘇省原子醫(yī)學(xué)研究所
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