本發(fā)明涉及生物技術(shù)領(lǐng)域,更具體的說是涉及細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶的應(yīng)用。
背景技術(shù):
細(xì)粒棘球蚴病又稱囊性包蟲病,是由細(xì)粒棘球絳蟲(Echinococcus granulosus)的中絳期幼蟲引起的一種人獸共患病,主要寄生在人和家畜等多種哺乳動(dòng)物體內(nèi)。90%以上的細(xì)粒棘球蚴包囊生長(zhǎng)于宿主的肝臟、肺臟或者同時(shí)生長(zhǎng)于肝肺。細(xì)粒棘球蚴病呈世界性分布,引起一系列的經(jīng)濟(jì)和公共衛(wèi)生問題。在一些流行地區(qū),其感染率可高達(dá)5-10%,死亡率高達(dá)2-4%。據(jù)估計(jì),全球人囊性棘球蚴病每年至少損失1-3.6百萬傷殘調(diào)整生命年(DALYs),而動(dòng)物囊性棘球蚴病每年造成的經(jīng)濟(jì)損失至少為20億美元。因此,世界衛(wèi)生組織已經(jīng)把棘球蚴病列為《被忽視的熱帶疾病》,作為其2008-2015年重點(diǎn)防治計(jì)劃。
缺乏標(biāo)準(zhǔn)有效的特異性重組抗原是細(xì)粒棘球蚴病免疫診斷中的一個(gè)尚未解決的難題。目前,細(xì)粒棘球蚴病免疫診斷的研究主要集中在粗囊液抗原上,但是其成分復(fù)雜,具有難以大量提純、抗原來源不穩(wěn)定、成本高、診斷特異性低等缺陷。與囊液抗原相比,重組抗原具有特異性好以及來源穩(wěn)定等優(yōu)點(diǎn)。目前,動(dòng)物細(xì)粒棘球蚴病的重組診斷抗原的報(bào)道還很少,劉紅霞等用細(xì)粒棘球蚴CE18重組蛋白檢測(cè)綿羊細(xì)粒棘球蚴病,發(fā)現(xiàn)其他帶科絳蟲病陽性血清如羊腦多頭蚴病血清和羊細(xì)頸囊尾蚴病血清均存在交叉反應(yīng),特別是和羊細(xì)頸囊尾蚴病血清的交叉反應(yīng)概率較高,不能準(zhǔn)確診斷綿羊細(xì)粒棘球蚴病。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
有鑒于此,本發(fā)明的目的在于提供細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶的應(yīng)用,使其能夠能被自然感染細(xì)粒棘球蚴病的綿羊陽性血清識(shí)別,具有良好的免疫原性,并具有較高的特異性和靈敏度,減少與其他帶科絳蟲病陽性血清的交叉反應(yīng)。
二氫葉酸還原酶(DHFR)能催化二氫葉酸生成四氫葉酸,進(jìn)而合成四氫葉酸類輔酶,參與體內(nèi)核酸和氨基酸的合成,在生物體中發(fā)揮重要作用。二氫葉酸還原酶抑制劑能選擇性的與二氫葉酸還原酶結(jié)合,抑制其催化還原活性,使二氫葉酸不能順利轉(zhuǎn)變?yōu)樗臍淙~酸,阻礙葉酸代謝,干擾DNA和蛋白質(zhì)的合成,最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡,所以二氫葉酸還原酶抑制劑具有抗癌以及抗寄生蟲的作用。
DHFR在原蟲上研究的比較廣泛,如瘧原蟲、利什曼原蟲、錐蟲、弓形蟲等,但在蠕蟲上并未見相關(guān)研究,因此,本發(fā)明對(duì)細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶(Eg-DHFR)進(jìn)行了生物信息學(xué)分析,并通過反轉(zhuǎn)錄表達(dá)出rEg-DHFR蛋白,制備出抗rEg-DHFR的多克隆抗體,對(duì)該蛋白進(jìn)行免疫印跡分析表明其可被自然感染細(xì)粒棘球蚴病的綿羊陽性血清識(shí)別,具有良好的免疫原性,利用rEg-DHFR蛋白建立細(xì)粒棘球蚴病間接ELISA診斷方法,為細(xì)粒棘球蚴病的防控提供監(jiān)測(cè)手段。
因此,本發(fā)明提出了細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶在制備檢測(cè)細(xì)粒棘球蚴病的免疫抗原和/或試劑盒中的應(yīng)用。
其中,作為優(yōu)選,所述試劑盒為ELISA檢測(cè)試劑盒或免疫印跡檢測(cè)試劑盒。
同時(shí),本發(fā)明還提供了一種檢測(cè)細(xì)粒棘球蚴病的ELISA檢測(cè)試劑盒,包括細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶(作為抗原進(jìn)行包被)和ELISA檢測(cè)試劑盒常規(guī)組分。所述試劑盒依據(jù)間接ELISA檢測(cè)原理。
作為優(yōu)選,所述ELISA檢測(cè)試劑盒常規(guī)組分包括抗原包被液、酶標(biāo)板、封閉液、HRP標(biāo)記的二抗和TMB底物。
進(jìn)一步優(yōu)選地,所述封閉液為5%脫脂奶粉;所述HRP標(biāo)記的二抗為HRP標(biāo)記的山羊或綿羊抗兔二抗。
在具體的ELISA檢測(cè)過程中,抗原包被的最佳條件是4℃過夜,抗原最佳濃度為0.6μg/每孔,血清最佳稀釋濃度為1:320,最佳封閉液和封閉條件是5%脫脂奶粉37℃封閉1h,血清孵育最佳時(shí)間是37℃ 1.5h,二抗孵育最佳時(shí)間是37℃ 1h,二抗最佳稀釋濃度為1:3000時(shí),底物顯色的最佳條件是37℃15min。在以上條件下,測(cè)得陰陽性血清的P/N值為3.86。
作為優(yōu)選,所述ELISA檢測(cè)試劑盒常規(guī)組分還包括顯色反應(yīng)終止液H2SO4、洗滌液PBST和稀釋液PBS。
本發(fā)明先提取細(xì)粒棘球絳蟲總RNA,而后進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA,根據(jù)GeneDB(http://www.genedb.org/Homepage/Egranulosus)中公布的Eg-DHFR(EgrG_000572400)的基因序列,用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增目的片段,然后進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證,其與GeneDB中Eg-DHFR(EgrG_000572400)的序列同源性達(dá)到100%。最后連接至表達(dá)載體中,轉(zhuǎn)入大腸桿菌中表達(dá),獲得細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶的反轉(zhuǎn)錄重組蛋白rEg-DHFR。
免疫印跡顯示rEg-DHFR能被自然感染細(xì)粒棘球蚴病的綿羊陽性血清識(shí)別,具有良好的免疫原性。間接ELISA結(jié)果顯示,該方法的cut-off值為0.4014,特異性和靈敏度分別為85.7%(12/14)和1:6400,并且與綿羊腦包蟲血清無交叉反應(yīng)。
由以上技術(shù)方案可知,本發(fā)明提供了細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶在制備檢測(cè)細(xì)粒棘球蚴病的免疫抗原和/或試劑盒中的應(yīng)用,其作為免疫抗原能夠被自然感染細(xì)粒棘球蚴病的綿羊陽性血清識(shí)別,應(yīng)用于間接ELISA檢測(cè)時(shí),具備較高的特異性和靈敏度,臨床檢測(cè)符合率高達(dá)97.9%。以細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶為免疫抗原建立的檢測(cè)方法具有良好的診斷效果,可以用于疫區(qū)綿羊細(xì)粒棘球蚴病的初步篩選。
附圖說明
圖1所示為Eg-DHFR PCR擴(kuò)增凝膠圖;其中,M為DNA分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)DL2000;1為空白對(duì)照;2為Eg-DHFR cDNA PCR產(chǎn)物;
圖2所示為rEg-DHFR的western blot凝膠圖;其中,M為蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品;1為重組菌中rEg-DHFR的表達(dá);2為純化后的rEg-DHFR;3為兔抗rEg-DHFR-IgG識(shí)別rEg-DHFR;4為健康兔血清識(shí)別rEg-DHFR;5為自然感染細(xì)粒棘球蚴病的綿羊陽性血清識(shí)別rEg-DHFR;6為健康綿羊血清識(shí)別rEg-DHFR;7為兔抗rEg-DHFR-IgG識(shí)別原頭蚴粗提蛋白;8為健康兔血清識(shí)別原頭蚴粗提蛋白;
圖3所示為間接ELISA對(duì)rEg-DHFR的特異性分析圖;其中,橫坐標(biāo)從左至右依次為山羊抗細(xì)頸囊尾蚴陽性血清、綿羊抗腦多頭蚴陽性血清、綿羊抗細(xì)粒棘球蚴陽性血清;Cuto-off value表示臨界值;
圖4所示為間接ELISA的臨床試驗(yàn)結(jié)果圖;其中,橫坐標(biāo)從左至右依次為陽性血清和陰性血清;Cuto-off value表示臨界值。
具體實(shí)施方式
本發(fā)明公開了細(xì)粒棘球絳蟲二氫葉酸還原酶的應(yīng)用,本領(lǐng)域技術(shù)人員可以借鑒本文內(nèi)容,適當(dāng)改進(jìn)工藝參數(shù)實(shí)現(xiàn)。特別需要指出的是,所有類似的替換和改動(dòng)對(duì)本領(lǐng)域技術(shù)人員來說是顯而易見的,它們都被視為包括在本發(fā)明。本發(fā)明所述應(yīng)用已經(jīng)通過較佳實(shí)施例進(jìn)行了描述,相關(guān)人員明顯能在不脫離本發(fā)明內(nèi)容、精神和范圍內(nèi)對(duì)本文所述的應(yīng)用進(jìn)行改動(dòng)或適當(dāng)變更與組合,來實(shí)現(xiàn)和應(yīng)用本發(fā)明技術(shù)。
在本發(fā)明具體實(shí)施方式中,各試驗(yàn)所涉及的材料和試劑如下:
1、主要試劑
動(dòng)物組織總RNA抽提試劑盒(TRIzol.R.Total RNA Isolation.Reagent)和反轉(zhuǎn)錄試劑盒(RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit),購自GIBCOBRL公司;DNA Marker、Protein Marker、限制性內(nèi)切酶(BamH I、Hind III、EcoRI、Xho I)、T4DNA連接酶,購自TaKaRa公司;瓊脂糖凝膠回收試劑盒、Ni-NTA Agarose,購自Qiagen公司;TaqPCR MasterMix、質(zhì)粒小量抽提試劑盒、HRP-DAB底物顯色試劑盒,購自北京天根生化科技有限公司;HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG抗體,HRP標(biāo)記的兔抗山羊IgG抗體,HRP標(biāo)記的兔抗綿羊IgG抗體,F(xiàn)ITC標(biāo)記的羊抗兔IgG抗體購自武漢博士德生物有限公司;IPTG,弗氏完全佐劑和弗氏不完全佐劑,購自Sigma公司;HiTrap Protein A HP,購自Bio-Rad公司,PCR引物合成和測(cè)序由上海英俊生物工程有限公司完成;其它試劑均為國產(chǎn)分析純。
2、菌株和質(zhì)粒載體
宿主菌大腸桿菌DH5α、大腸桿菌BL21(DE3)、pMD19-T Vector購自TaKaRa公司;pET32a(+)載體由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物寄生蟲病實(shí)驗(yàn)室提供。
3、常用緩沖溶液和培養(yǎng)基的配制
PBS Buffer①:分別稱取下列試劑于燒杯中:NaCl 8g,KCl 0.2g,Na2HPO41.42g,KH2PO4 0.27g。加入約500mL滅菌雙蒸水混勻溶解,加入濃HCl使pH達(dá)到7.4,定容到1L。高壓滅菌后室溫保存。
電泳緩沖液(50×TAE Buffer):稱取242g Tris和37.2g Na2EDTA·2H2O于燒杯中,加入500mL滅菌雙蒸水并混勻溶解,加58mL的CH3COOH再次充分?jǐn)嚢瑁ㄈ莸?L并室溫保存。
EB:將0.1gEB加入100mL的滅菌雙蒸水中,分裝后常溫保存。
LB培養(yǎng)基:液態(tài)培養(yǎng)基:分別稱取Triptone 10g,5g Yeast Extract,10g NaCl加入燒杯中溶于500mL滅菌H2O中并用燒堿調(diào)節(jié)pH至7.0,定容到1L后高壓滅菌,4℃保存。LB平板:每1L溶液中加15g瓊脂粉,高壓滅菌,4℃保存。
IPTG溶液:電子天平稱取2g的異丙基硫代半乳糖苷溶于8mL超純水中,充分?jǐn)嚢枞芙夂蠹铀?0mL,用0.45μm濾膜過濾后用EP管分裝貯存于-20℃。
30%聚丙烯酰胺溶液:稱取0.8g的Bis-acrylamide和29.2g的Acrylamide,加入50mL去離子水混勻溶解,加水到100mL,用0.22μm濾膜過濾。
1M Tris-HCl(pH 6.8):稱取12.11g的Tris于燒杯中,加80mL雙蒸水充分?jǐn)嚢枞芙?,加濃鹽酸并使用酸度計(jì)調(diào)整pH到6.8后加水到100mL,用0.22μm濾膜過濾。
1.5M Tris-HCl(pH 8.8):取19g的Tris于燒杯中,加50mL雙蒸水充分?jǐn)嚢枞芙?,加濃鹽酸并使用酸度計(jì)調(diào)整pH到8.8后加水到100mL,4℃保存。
10%十二烷基硫酸鈉(SDS)溶液:稱取10g的SDS于燒杯中,加入80mL雙蒸水充分?jǐn)嚢枞芙夂蠖ㄈ葜?00mL,用0.45μm濾膜過濾后常溫保存。
10%過硫酸銨溶液:稱取0.1g的APS,加水定容到1mL,常溫保存。
考馬斯亮藍(lán)染色液:用電子天平稱取0.1g考馬斯亮藍(lán)粉末于20mL酒精中,取100mL濃磷酸到200mL,用0.45μm濾膜過濾后常溫保存。
氨芐西林鈉溶液(AMP):使用電子天平稱取1gAmpicilin粉末,吸取9mL超純水充分?jǐn)嚢枞芙夂蠖ㄈ葜?0mL,用0.22μm微孔濾膜過濾除菌,分裝EP管-20℃保存。
4、試驗(yàn)動(dòng)物
2只健康新西蘭兔,1.4~2.2kg,購自四川農(nóng)業(yè)大學(xué)試驗(yàn)動(dòng)物中心。
下面結(jié)合實(shí)施例,進(jìn)一步闡述本發(fā)明。
實(shí)施例1:細(xì)粒棘球蚴總RNA的提取
細(xì)粒棘球蚴包囊來自于自然感染的綿羊肝臟,樣本采自青海西寧或四川甘孜,保存于液氮中。
取出液氮保存的細(xì)粒棘球蚴,用研缽將其磨碎,隨后參照天根的動(dòng)物組織RNA提取試劑盒說明書提取總RNA。
(1)每10-20mg原頭蚴加300μL裂解液,使用研磨棒研磨;
(2)向勻漿液中加入Proteinase K(10μL)和RNase-Free ddH2O(590μL),混勻后反應(yīng)15min(56℃)。
(3)離心5min(12,000rpm),將上清轉(zhuǎn)移到干凈的管子中;在管子中加入0.5倍上清體積的無水乙醇,混勻后轉(zhuǎn)入吸附柱中,離心1min(12,000rpm)后棄廢液。
(4)在吸附柱中加去蛋白質(zhì)液RW1(350μL),離心1min(12,000rpm)后,棄廢液。
(5)將DNase I工作液(80μL)加入吸附柱,室溫放置反應(yīng)15min;隨后加去蛋白質(zhì)液RW1(350μL),離心1min(12,000rpm)后棄廢液。
(6)500μL漂洗液RW加入吸附柱中,放置2min(室溫),離心1min(12,000rpm)后棄廢液。
(7)重復(fù)(6)。
(8)空離,棄廢液,晾干殘余漂洗液。
(9)把吸附柱放入一個(gè)新的離心管中,用RNase-Free ddH2O(30-100μL)洗脫,靜置2min(室溫),離心2min(12,000rpm)后得到細(xì)粒棘球蚴總RNA提取液。
實(shí)施例2:第一鏈cDNA的合成
以抽提的細(xì)粒棘球蚴總RNA為模板,以O(shè)ligo dT(18)為反轉(zhuǎn)錄引物,參照Thermo公司反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行操作:
(1)冰上制備反應(yīng)混合物
Oligo dT18 1μL
模板RNA 1μL
DEPC ddH2O 1μL
(2)在70℃(5min)孵育后轉(zhuǎn)到冰上冷卻
(3)在冰上按照順序加入以下反應(yīng)物:
5reaction buffer 4μL
核糖核酸酶抑制劑 1μL
10dNTP混合物 2μL
(4)37℃(5min)孵育后加RevertAidTM反轉(zhuǎn)錄酶1μL。
(5)PCR程序:42℃,1h;70℃,10min。
(6)得到的cDNA于-80℃保存。
實(shí)施例3:Eg-DHFR基因的擴(kuò)增
根據(jù)GeneDB(http://www.genedb.org/Homepage/Egranulosus)中公布的Eg-DHFR(EgrG_000572400)的基因序列,用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)引物:
上游:5’-CGCGGATCCATGGGGCTGAAGCGTCT-3’下劃線為BamH I
下游:5’-CCGCTCGAGATGATCATTAAGGGGATGCG-3’下劃線Xho I
擴(kuò)增體系(25μL):DNA模板各1μL,上下游引物各1μL,PCR Mixture12.5μL,滅菌雙蒸水9.5μL。
擴(kuò)增條件:預(yù)變性:95℃5min;38個(gè)循環(huán)(變性:95℃,40s;退火:54℃,45s;延伸:72℃,45s);最后延伸:72℃,10min。
以細(xì)粒棘球絳蟲原頭蚴的cDNA為模板擴(kuò)增出一條576bp左右的條帶(圖1)。
實(shí)施例4:PCR產(chǎn)物的回收
將含有目的條帶的凝膠切下,放入EP管中,稱重。采用凝膠DNA回收試劑盒回收目的片段。每100mg凝膠加入400μLPC Buffer后,55℃水浴溶膠。待凝膠完全溶解后,移入吸附柱中,離心60 sec(12000rpm),隨后加入Washing Buffer洗滌離心2次后,空離心2min(12000rpm)。晾干吸附柱內(nèi)乙醇?xì)馕?,向吸附柱中加?0μL Elution Buffer,離心2min(12000rpm),得到目的DNA片段。
實(shí)施例5:Eg-DHFR基因克隆測(cè)序和比對(duì)
(1)將下列試劑混合:4μL的Solution 1,3.5μL的模板DNA,0.5μL的pMD19-T vector,放入離心機(jī)瞬離后放于16℃恒溫水連接過夜。
(2)從-70℃出感受態(tài)細(xì)胞,室溫融化后取30μL放入空EP管中,將連接過夜的8μL產(chǎn)物加入EP管并用微量加樣槍輕輕吹打混勻,立刻放入冰水混合物冰浴30min。42℃水浴90s立即冰浴5min。每個(gè)EP管中加入600μL的LB溶液,37℃中180r/min培養(yǎng)1.5h。將混勻的溶液倒在到LB平板上,37℃冷卻1h使表面干燥,反倒平板過夜。
(3)挑取菌落到空EP管中,加入1mL LB溶液和1μLAMP溶液,160r/min震蕩培養(yǎng)6h至其渾濁。吸取1μL菌液擴(kuò)增并將產(chǎn)物跑電泳后觀察。選取電泳觀察陽性的菌液送至英濰捷基公司進(jìn)行測(cè)序。
把測(cè)序得到的目的片段序列放入GeneDB數(shù)據(jù)庫中比對(duì),經(jīng)測(cè)序得到的序列與GeneDB中Eg-DHFR(EgrG_000572400)的序列同源性達(dá)到100%。
實(shí)施例6:Eg-DHFR基因克隆、鑒定及轉(zhuǎn)化
1、質(zhì)粒提取
測(cè)序結(jié)果比對(duì)正確后,將菌株擴(kuò)大培養(yǎng),參照天根生化有限公司的質(zhì)粒小提試劑盒操作說明進(jìn)行:
(1)取3-5mL菌液,離心收集沉淀;
(2)加入懸浮液P1懸浮菌體,并加入裂解液P2對(duì)菌液進(jìn)行裂解;
(3)加入P3產(chǎn)生沉淀,翻轉(zhuǎn)混合,靜置10min后離心15min(12,000rpm);
(4)取上清至收集管中,加600μL漂洗溶液PW,靜置2min,離心1min(12,000rpm),棄廢液;
(5)重復(fù)(4);
(6)晾干漂洗液后用90μL洗脫液回收質(zhì)粒。
2、質(zhì)粒酶切回收
將提取的pMD19-T-Eg-DHFR用Takara BamH I和Xho I快切酶雙酶切,37℃酶切12min,體系總體積為10μL:T克隆質(zhì)粒8μL,10X QuickCut Green Buffer 1μL,QuickBamH I和Xho I 0.5μL。用微量加樣槍混勻后瞬離,37℃恒溫水浴15min后迅速取出點(diǎn)樣進(jìn)行1%的瓊脂糖凝膠電泳并膠回收。
3、目的片段連接表達(dá)載體
將雙酶切的Eg-DHFR目的片段和pET28a(+)載體22℃連接1.5h,隨后連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,并涂于氨芐青霉素抗性的LB培養(yǎng)基平板上,37℃培養(yǎng)12h。挑取單個(gè)菌落,進(jìn)行PCR鑒定。
4、pET28a-Eg-DHFR重組質(zhì)粒雙酶切鑒定
對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,方法參照“2、質(zhì)粒酶切回收”。
實(shí)施例7:重組Eg-DHFR在大腸桿菌中的表達(dá)
1、重組蛋白的表達(dá)
(1)將測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pET28a(+)-DHFR轉(zhuǎn)入BL21(DE3)表達(dá)菌。
(2)將表達(dá)菌接種于兩瓶含100mL的新鮮的LB(含AMP 100μg/mL)培養(yǎng)液中,37℃搖床培養(yǎng)3h(160r/min),至菌液OD590為0.6后加入誘導(dǎo)劑IPTG(1mmol/L),37℃誘導(dǎo)5h(160r/min),另一瓶不加IPTG做對(duì)照培養(yǎng)。
(3)分別取有到過后的菌液1.5mL于兩個(gè)新EP管中,4℃離心1min(12,000r/min)收集菌體,分別加入10μL 5×SDS上樣Buffer和40μL PBS溶液,充分混勻。
(4)沸水煮10min,以使菌體充分破裂,4℃離心10min(12,000r/min),取上清進(jìn)行SDS-PAGE。
(5)用考馬斯亮藍(lán)染色1h,脫色后觀察表達(dá)情況。
2、重組蛋白的可溶性分析
將含有重組質(zhì)粒Pet28a-Eg-DHFR的表達(dá)菌接種于500mL含氨芐的液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)(170rpm)至OD600=0.6左右,加入最佳IPTG濃度,誘導(dǎo)6h。把菌液離心10min(8000rpm),棄上清,沉淀用裂解液(20mM Tris-Cl,pH8.0)懸浮,超聲破碎菌體。將破碎后的菌體裂解液在4℃條件下離心10min(12,000rpm),分離沉淀與上清;沉淀加入適量的8M尿素溶解。上清和沉淀各取40μL,分別加10μL 5×SDS凝膠上樣緩沖液,煮沸10min,離心10min(12,000rpm),進(jìn)行SDS-PAGE電泳,分析rEg-DHFR是否為可溶性表達(dá)。
3、SDS-PAGE電泳檢測(cè)
按蛋白質(zhì)電泳儀(Bio-Rad)說明書,組裝電泳槽。配制12%的分離膠和5%的濃縮膠;把凝膠垂直置于電泳緩沖液中,將樣本和蛋白質(zhì)Marker加入樣品孔中;調(diào)節(jié)恒壓為80V,20min;隨后調(diào)整電壓為200V。電泳完畢后取出凝膠,用考馬斯亮藍(lán)染色1h,沸水浴脫色15min,最后在凝膠成像系統(tǒng)中照相觀察。
4、重組蛋白的純化
根據(jù)上述步驟對(duì)重組菌誘導(dǎo)表達(dá),獲得大量重組蛋白菌液。
(1)取1,000mL菌液,離心10min(8,000rpm),棄上清,收集菌體。
(2)在菌體中加入裂解液。
(3)超聲波破碎,直到菌液澄清。
(4)離心10min(12,000rpm),留上清。
(5)取鎳離子親和層析柱,用Banding Buffer平衡5-10個(gè)床體積;
(6)將樣品于0.22μm濾膜過濾后上樣;
(7)用Banding Buffer洗5-10個(gè)床體積;
(8)用含不同梯度的咪唑洗脫液進(jìn)行洗脫,并收集各洗脫峰;
(9)用400mM咪唑洗脫液清洗后,用20%的乙醇洗滌至離子濃度為0,將柱子于4℃保存。
(10)將蛋白用超濾管進(jìn)行超濾和濃縮,多次加入PBS進(jìn)行溶液的置換,以除去原有的咪唑;
(11)蛋白濃縮后,進(jìn)行SDS-PAGE檢查,并以BCA蛋白質(zhì)定量試劑盒測(cè)定蛋白質(zhì)濃度。
5、結(jié)果
Eg-DHFR片段成功連接在pET-28a載體上,轉(zhuǎn)化進(jìn)入BL21大腸桿菌中誘導(dǎo)表達(dá)。在37℃條件下,用1mM IPTG誘導(dǎo)5h時(shí)表達(dá)量最大。表達(dá)的重組蛋白大小為27kDa左右,符合預(yù)期大小??扇苄苑治鼋Y(jié)果顯示,rEg-DHFR表達(dá)為可溶性蛋白。純化后的重組蛋白為單一條帶(圖2)。
實(shí)施例8:免疫原性分析
1、兔抗rEg-DHFR-IgG的制備
將純化后的rEg-DHFR蛋白分別與弗氏完全佐劑和弗氏不完全佐劑按照1:1比例混合制備乳劑苗。對(duì)兩只新西蘭兔進(jìn)行皮下四次注射免疫,每次間隔兩個(gè)周免疫一次,第一次用弗氏完全佐劑和200μg重組蛋白皮下注射免疫,后三次均用弗氏不完全佐劑和200μg重組蛋白皮下注射免疫。
免疫結(jié)束后,使用HiTrap ProteinA 1mL預(yù)裝柱和HPLC純化系統(tǒng)(Bio-Rad)純化血清,將流速調(diào)為1.0mL/min,使用A2Buffer洗柱子10min。將0.45μm NC膜過濾過的血清放入柱子中,0.5mL/min。用10-20ml的B Buffer洗脫,收集洗脫下來的IgG,并用50mM的Tris調(diào)節(jié)洗脫下來的IgG溶液的PH。平衡后用20%的酒精洗滌柱子,直到離子濃度降為0。通過SDS-PAGE鑒定抗體純化情況。
2、免疫印跡
(1)按照上述方法制備蛋白質(zhì)電泳凝膠,對(duì)純化后的蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳。
(2)蛋白質(zhì)電泳結(jié)束后,取蛋白質(zhì)所在的相應(yīng)凝膠部位,放入轉(zhuǎn)膜緩沖液中進(jìn)行平衡,共3次,每次4min。
(3)將硝酸纖維素濾膜(NC膜)和24層濾紙置于轉(zhuǎn)移緩沖液中浸泡5min。
(4)按順序?qū)㈥帢O電極板、24層濾紙、凝膠、NC膜、24層濾紙置于Bio-Rad半干式轉(zhuǎn)印槽內(nèi),蓋上陽極電極板。
(5)將電轉(zhuǎn)移裝置接到電轉(zhuǎn)儀上,并加入轉(zhuǎn)移緩沖液35mA轉(zhuǎn)移30min。
(6)轉(zhuǎn)移結(jié)束后,取出NC膜,浸泡在3%BSA的TBST中,4℃封閉過夜。
(7)封閉結(jié)束后,剪開NC膜,陰性和陽性分開放置,加入1:1000稀釋的一抗,室溫孵育2h后,倒掉一抗,用TBST快速洗膜3次,5min/次。
(8)將HRP標(biāo)記的Goat-anti-sheep IgG按1:1000稀釋后,加入NC膜,室溫孵育2h后,倒掉二抗,用TBST快速洗膜3次,5min/次。
(9)將NC膜置于平皿中,以新鮮底物顯色液沖洗直至顯色。
(10)顯色后,用雙蒸水沖洗NC膜終止顯色,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行拍照記錄。
3、結(jié)果
免疫印跡顯示,rEg-DHFR能被細(xì)粒棘球蚴病陽性綿羊血清識(shí)別,且為單一條帶(圖2),說明rEg-DHFR具有較好的免疫原性。以兔抗rEg-DHFR-IgG識(shí)別原頭蚴粗蛋白提取液,顯示只有單一條帶,大小與天然Eg-DHFR一致(21.9kDa),說明表達(dá)的重組蛋白確實(shí)為rEg-DHFR。
實(shí)施例9:間接ELISA方法的建立
1、間接ELISA操作步驟
(1)以抗原包被液按比列稀釋rEg-DHFR蛋白,每孔100μL加入96酶標(biāo)板中進(jìn)行包被;
(2)倒掉包被液,拍干孔內(nèi)液體,用PBST洗滌,重復(fù)四次;
(3)加入封閉液(5%的脫脂奶粉)封閉后,洗滌四次;
(4)用PBS按比例稀釋血清后,加入酶標(biāo)孔孵育,倒掉液體,洗滌四次;
(5)加入稀釋好的HRP標(biāo)記的山羊或綿羊抗兔二抗,孵育,洗滌四次;
(6)在避光條件下向孔中加入可溶性單組分底物TMB進(jìn)行顯色反應(yīng);
(7)在孔中加入100μL 2M H2SO4終止反應(yīng),在紫外吸光度為450nm時(shí)測(cè)定其OD值。
(8)倒掉液體,拍干后,按(2)所示洗滌四次,每次3min;
(9)倒掉液體,拍干后,在避光條件下進(jìn)行顏色反應(yīng),向孔中加入可溶性單組分底物TMB,每孔100μL,室溫孵育10~20min;
(10)再向孔中加入100μL 2M H2SO4終止反應(yīng),立即將96孔板置于酶標(biāo)儀上,在紫外吸光度為450nm時(shí)測(cè)定其OD值。
2、確定最佳條件
(1)用棋盤滴定法確定最佳抗原和血清稀釋濃度[100],設(shè)置6個(gè)抗原濃度梯度,分別為:0.075μg,0.15μg,0.3μg,0.6μg,1.2μg和2.4μg/每孔,血清從1:20到1:2560作倍比稀釋,以陽性血清OD450接近1,P/N最大的條件作為最佳。
(2)二抗作用的最佳濃度和時(shí)間,分別設(shè)1:1000,1:2000,1:3000,1:4000,1:5000五個(gè)稀釋濃度進(jìn)行摸索。二抗作用時(shí)間設(shè)置為37℃0.5小時(shí)、1小時(shí)、1.5小時(shí)、2小時(shí)四個(gè)組,以陽性血清OD450接近1,P/N最大的條件作為最佳。
(3)抗原包被時(shí)間確定,用包被液稀釋重組抗原,用最佳稀釋濃度進(jìn)行包被,包被時(shí)間分別為37℃1h、37℃2h及4℃過夜3個(gè)組,以陽性血清OD450接近1,P/N最大的條件作為最佳。
(4)封閉液以及封閉時(shí)間的確定,分別用1%BSA,3%BSA,5%BSA,1%脫脂牛奶,3%脫脂牛奶,5%脫脂牛奶封閉。用最佳的封閉液分別封閉37℃1小時(shí)、2小時(shí)、3小時(shí)及4℃過夜4個(gè),以陽性血清OD450接近1,P/N最大的條件作為最佳。
(5)陰、陽性血清反應(yīng)時(shí)間的確定,按照確定的條件來篩選陰、陽性血清的最佳孵育時(shí)間,設(shè)為37℃0.5小時(shí)、1小時(shí)、1.5小時(shí)、2小時(shí)4個(gè)組,以陽性血清OD450接近1,P/N最大的濃度作為最佳。
(6)底物顯色時(shí)間的確定,37℃條件下設(shè)5分鐘、10分鐘、15分鐘、20分鐘、25分鐘和30分鐘顯色時(shí)間,測(cè)定OD450值,以陽性血清OD450接近1,P/N最大時(shí)間作為最佳。
間接ELISA結(jié)果顯示,P/N值達(dá)到最高的抗原包被的最佳條件是4℃過夜,抗原最佳濃度為0.6μg/每孔,血清最佳稀釋濃度為1:320,最佳封閉液和封閉條件是5%脫脂奶粉37℃封閉1h,血清孵育最佳時(shí)間是37℃ 1.5h,二抗孵育最佳時(shí)間是37℃ 1h,二抗最佳稀釋濃度為1:3000時(shí),底物顯色的最佳條件是37℃ 15min,在以上條件下,測(cè)得陰陽性血清的P/N值為3.86。
3、臨界值的確定
在最佳條件下,測(cè)定24份綿羊細(xì)粒棘球蚴病陰性血清的OD450。設(shè)置三個(gè)重復(fù)。按照臨界值=平均值+3倍標(biāo)準(zhǔn)差計(jì)算。
用24份綿羊陰性血清樣品的OD450值確定臨界值,通過統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)算出24份綿羊陰性血清樣品OD450值的平均值為0.255,標(biāo)準(zhǔn)差為0.0488。根據(jù)計(jì)算公式:臨界值=陰性樣本OD450平均值+3倍標(biāo)準(zhǔn)差,得出臨界值為0.4014,即OD450>0.4014時(shí),理論上可判定為陽性,OD450<0.4014可判定為陰性。
4、批內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn)
取同一批次包被的板子,檢測(cè)5份已知為細(xì)粒棘球蚴病陽性的綿羊血清,每份設(shè)置3個(gè)重復(fù)孔,按照已經(jīng)建立的ELISA方法,進(jìn)行批內(nèi)重復(fù)試驗(yàn),計(jì)算變異系數(shù),檢測(cè)該方法的批內(nèi)重復(fù)性。
批內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果顯示,板內(nèi)的變異系數(shù)在0.332%-0.944%之間,平均值為0.661%。
5、批間重復(fù)性試驗(yàn)
取3個(gè)批次包被的板子,在最佳條件下,檢測(cè)3份細(xì)粒棘球蚴病陽性的綿羊血清,每份設(shè)置3個(gè)重復(fù)孔,按照已經(jīng)建立的ELISA方法,進(jìn)行批間重復(fù)試驗(yàn),計(jì)算變異系數(shù),檢測(cè)該方法的批間重復(fù)性。
批間重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果顯示,板間變異系數(shù)在0.584%-1.21%之間,平均值為0.830%。
6、特異性試驗(yàn)
用建立的間接ELISA分別對(duì)山羊抗細(xì)頸囊尾蚴陽性血清、綿羊抗腦多頭蚴血清進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)其特異性。
用建立的間接ELISA分別對(duì)綿羊抗腦多頭蚴血清和山羊抗細(xì)頸囊尾蚴陽性血清進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示與綿羊腦包蟲血清無交叉反應(yīng),與細(xì)頸囊尾蚴有2個(gè)血清有交叉反應(yīng)(圖3),因此,其特異性為85.7%(12/14)。
7、靈敏度試驗(yàn)
將3份陽性血清作倍比稀釋,從1:100到1:201800,根據(jù)判定標(biāo)準(zhǔn),確定其靈敏度。
將3份陽性血清作倍比稀釋,結(jié)果顯示在稀釋6400倍時(shí),OD450平均值為0.527,仍屬于陽性,而在在稀釋12800倍時(shí),OD450平均值為0.334,小于臨界值,因此,確定其靈敏度為1:6400。
8、臨床試驗(yàn)
用建立的間接ELISA方法分別對(duì)24份細(xì)粒棘球蚴病陰性綿羊血清和24分細(xì)粒棘球蚴病陽性綿羊血清進(jìn)行檢測(cè),根據(jù)臨界值判斷該方法的可靠性。
用24份綿羊細(xì)粒棘球蚴病陽性血清和24份陰性血清對(duì)建立的間接ELISA方法進(jìn)行臨床檢測(cè)(見表1和圖4),結(jié)果顯示23份綿羊細(xì)粒棘球蚴病陽性血清的OD450均大于臨界值,24份陰性血清OD450均小于臨界值,檢測(cè)的符合率高達(dá)97.9%。
表1臨床血清樣本OD450
以上所述僅是本發(fā)明的優(yōu)選實(shí)施方式,應(yīng)當(dāng)指出,對(duì)于本技術(shù)領(lǐng)域的普通技術(shù)人員來說,在不脫離本發(fā)明原理的前提下,還可以做出若干改進(jìn)和潤飾,這些改進(jìn)和潤飾也應(yīng)視為本發(fā)明的保護(hù)范圍。