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利用PCR?RFLP檢測(cè)綿羊PCNP基因單核苷酸多態(tài)性的方法及其應(yīng)用與流程

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利用PCR?RFLP檢測(cè)綿羊PCNP基因單核苷酸多態(tài)性的方法及其應(yīng)用與流程

本發(fā)明屬于分子遺傳學(xué)領(lǐng)域,涉及以綿羊的功能基因的單核苷酸多態(tài)性(SNP)作為分子遺傳標(biāo)記,特別涉及綿羊PCNP基因的單核苷酸多態(tài)性及其檢測(cè)方法。



背景技術(shù):

在綿羊育種中,人們期望通過(guò)對(duì)繁殖性狀密切相關(guān),并且與數(shù)量性狀緊密連鎖的DNA標(biāo)記的選擇,達(dá)到早期選種和提高育種值準(zhǔn)確性的目的,從而在畜禽育種中獲得更大的遺傳進(jìn)展。

分子育種,即分子標(biāo)記輔助選擇育種(Molecular Mark-Assist Selection,MAS),該技術(shù)是借助DNA分子標(biāo)記對(duì)遺傳資源或育種材料進(jìn)行選擇,對(duì)畜禽的綜合性狀進(jìn)行品種改良,它是利用現(xiàn)代分子生物學(xué)和傳統(tǒng)遺傳育種相結(jié)合的方法,進(jìn)行新品種選育。

基因多態(tài)性是指不同物種或者同一物種內(nèi)的不同個(gè)體間基因組序列的差異,這些差異是由于染色體中DNA等位基因中核苷酸改變引起,主要是包括堿基的替換、插入、缺失以及重復(fù)序列拷貝數(shù)的變化。

單核苷酸多態(tài)性(Single Nucleotide Polymorphism,SNP)是由美國(guó)麻省理工學(xué)院的人類基因組研究中心的學(xué)者Lander(1996)提出的一類遺傳標(biāo)記系統(tǒng),就是指基因組DNA序列中由于單個(gè)核苷酸(A/T/C/G)的替換而引起的多態(tài)性。SNP作為新的遺傳標(biāo)記已廣泛應(yīng)用于基因定位、克隆、遺傳育種及多樣性的研究。SNP是基因組中存在的一種數(shù)量非常豐富的變異形式,占人類基因組中遺傳多態(tài)性的90%以上。SNP與罕見(jiàn)的變異不同,通常在種群中頻率等于或小于1%的此種變異被稱為突變,而只有頻率大于1%時(shí)才被稱為單核苷酸多態(tài)性。它的變異形式有:顛換、轉(zhuǎn)換、插入和缺失等,主要由單個(gè)堿基的轉(zhuǎn)換或者顛換所引起。具有轉(zhuǎn)換型的堿基變異的SNPs約占2/3。

根據(jù)基因組中單核苷酸多態(tài)性產(chǎn)生的位置,可分為以下3類:基因編碼區(qū)單核苷酸多態(tài)性(Coding-region SNPs,cSNPs)、基因周邊單核苷酸多態(tài)性(Perigenic SNPs,pSNPs)以及基因間單核苷酸多態(tài)性(Intergenic SNPs,iSNPs)。

研究表明,位于編碼區(qū)內(nèi)的cSNP比較少。基因編碼區(qū)內(nèi)的cSNP又可分為2種:一種是編碼區(qū)內(nèi)的同義cSNP(Synonymous cSNP),即SNP所致編碼序列的改變并不會(huì)影響其所翻譯的蛋白質(zhì)中氨基酸序列的改變;另一種是編碼區(qū)內(nèi)的非同義cSNP(Non-Synonymous cSNP),即堿基序列的改變將導(dǎo)致編碼氨基酸的改變,從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)中氨基酸序列的改變,可能最終影響到蛋白質(zhì)的功能。

由于SNPs是二等位基因分子標(biāo)記,所以,理論上在一個(gè)二倍體生物群體中,SNPs可能是由2個(gè)、3個(gè)或4個(gè)等位基因構(gòu)成,但實(shí)際上3個(gè)或4個(gè)等位基因的SNPs很罕見(jiàn),故SNPs通常被簡(jiǎn)單地稱為二等位基因分子標(biāo)記。目前,主要采用幾種不同的路線來(lái)發(fā)現(xiàn)SNPs:即DNA序列測(cè)定方法、聚合酶鏈反應(yīng)—單鏈構(gòu)象多態(tài)(Polymerase Chain Reaction-Single Strand Conformation Polymorphism,PCR-SSCP)與DNA測(cè)序結(jié)合法、等位特異性PCR(Allele Specific PCR,AS-PCR)方法、引物延伸法和寡核苷酸連接反應(yīng)等。在這些SNP檢測(cè)技術(shù)中,DNA序列測(cè)定法是最為準(zhǔn)確的SNP檢測(cè)方法,但是,其檢測(cè)費(fèi)用昂貴,且需要有DNA測(cè)序儀等大型儀器,同時(shí),在測(cè)序過(guò)程中需要非常熟練的技術(shù)人員和經(jīng)驗(yàn),所以,DNA序列測(cè)定法不是一種應(yīng)用于生產(chǎn)實(shí)際的理想SNP檢測(cè)方法;當(dāng)然,利用PCR-SSCP與DNA測(cè)序結(jié)合法檢測(cè)SNP可以適當(dāng)降低檢測(cè)費(fèi)用,但是,PCR-SSCP的實(shí)驗(yàn)過(guò)程比較長(zhǎng),操作比較繁瑣,且實(shí)驗(yàn)過(guò)程中存在假陽(yáng)性問(wèn)題,所以,也并非理想的SNP檢測(cè)手段;AS-PCR方法作為一種新型的SNP檢測(cè)方法,在未來(lái)的應(yīng)用領(lǐng)域中具有非常廣闊的前景,但是,該方法需要設(shè)計(jì)特別的引物,且只能針對(duì)特定的基因位點(diǎn),同時(shí),檢測(cè)過(guò)程中還存在誤檢的概率,因此,目前不具有普遍應(yīng)用的特點(diǎn);而引物延伸法和寡核苷酸連接反應(yīng)技術(shù)檢測(cè)SNP位點(diǎn),需要平板讀數(shù)儀、基因芯片、微球陣列技術(shù)和質(zhì)譜儀等檢測(cè)平臺(tái),對(duì)于一般的分子實(shí)驗(yàn)室來(lái)說(shuō)可實(shí)施性不強(qiáng)。

限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性-聚合酶鏈反應(yīng)(Restriction Fragment Length Polymorphism-Polymerase Chain Reaction,RFLP-PCR)方法是一種檢測(cè)SNP的有效技術(shù),在發(fā)現(xiàn)SNP位點(diǎn)后設(shè)計(jì)上下游引物用限制性內(nèi)切酶進(jìn)行切割,然后進(jìn)行瓊脂糖、聚丙烯凝膠電泳分析,就能準(zhǔn)確地鑒別SNP位點(diǎn)。RFLP-PCR方法不僅具有DNA測(cè)序法的準(zhǔn)確性,又克服了費(fèi)用昂貴、繁瑣操作、假陽(yáng)性的缺點(diǎn),而且所檢測(cè)的序列位點(diǎn)無(wú)特殊性要求。

PCNP(PEST-containing nuclear protein)是一類定位于細(xì)胞核并含有PEST序列(即富含脯氨酸(P)、谷氨酸(E)、絲氨酸(S)和蘇氨酸(T)四種氨基酸的蛋白。

通過(guò)比對(duì)多個(gè)物種的序列發(fā)現(xiàn),PCNP基因核酸序列的同源性較高,尤其在哺乳動(dòng)物中均達(dá)到94%以上,都比較保守,說(shuō)明在生物體中該蛋白應(yīng)具有重要的作用及功能。在人類基因組中PCNP基因被定位在3q12.3,編碼178個(gè)氨基,對(duì)其理化性質(zhì)進(jìn)行分析后顯示其是由18種氨基酸組成的一種半衰期較短且不穩(wěn)定的親水性蛋白。PCNP很可能在細(xì)胞周期調(diào)控與腫瘤發(fā)生過(guò)程中發(fā)揮作用,編碼PCNP的基因所在的3號(hào)染色體含有趨化因子受體(CKR)基因簇和多種人類癌癥相關(guān)基因位點(diǎn),關(guān)鍵腫瘤抑制基因如凋亡調(diào)控因子RASSF1、細(xì)胞移調(diào)控因子HYAL1、血管生成抑制因子SEMA3B也都在3號(hào)染色體,馬凡綜合征、卟啉癥、Von Hippel-Lindau綜合癥、成骨不全癥等遺傳病也與3號(hào)染色體相關(guān)。

國(guó)內(nèi)外目前關(guān)于PCNP的研究還比較少。朱江木研究發(fā)現(xiàn)PCNP的過(guò)表達(dá)能顯著促進(jìn)小鼠骨骼肌細(xì)胞C2C12細(xì)胞生長(zhǎng),PCNP可能參與了肌細(xì)胞的周期調(diào)控,對(duì)肌細(xì)胞生長(zhǎng)有調(diào)控作用,對(duì)肌細(xì)胞的功能也有影響。孫穎川研究發(fā)現(xiàn)在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎患者外周血中PCNP在基因水平和蛋白水平的表達(dá)增高,類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎病情的輕重與PCNP的表達(dá)量正相關(guān)。在類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的發(fā)病中,該基因的表達(dá)變化和病人的病情密切相關(guān),PCNP有可能成為臨床診斷類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的檢測(cè)指標(biāo),也可作為疾病病情發(fā)展、預(yù)后的參考指標(biāo),亦可能是潛在的分子治療靶點(diǎn)。通過(guò)mRNA差異顯示技術(shù)獲得屬于PCNP基因的表達(dá)量差異片段GW360093,在不同繁殖力山羊的卵巢組織中存在表達(dá)量差異,真正影響山羊繁殖性狀差異的是該基因表達(dá)產(chǎn)物的多少。

PCNP在綿羊上被準(zhǔn)確定位到1號(hào)染色體上,包括5個(gè)外顯子。Genomic的登錄號(hào)(NC_019458.1),predicted mRNA登錄號(hào)XM_012189341.1,mRNA全長(zhǎng)為712bp,該基因的CDS序列全長(zhǎng)為537bp(7-543),可以編碼179個(gè)氨基酸。針對(duì)綿羊PCNP的研究還很少,國(guó)內(nèi)外鮮見(jiàn)報(bào)道。2013年河北農(nóng)業(yè)大學(xué)邢增喜成功的克隆了山羊PCNP基因的啟動(dòng)子并預(yù)測(cè)了其核心調(diào)控區(qū),為研究PCNP基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

關(guān)于動(dòng)物PCNP基因遺傳變異的研究國(guó)內(nèi)外多見(jiàn)于人、鼠、豬等動(dòng)物,而未有綿羊PCNP基因遺傳變異或SNP研究的報(bào)道。由于目前中國(guó)湖羊、小尾寒羊PCNP基因遺傳變異領(lǐng)域的研究匱乏,使該基因位點(diǎn)的功能研究及該基因遺傳變異與經(jīng)濟(jì)性狀,如繁殖性狀關(guān)聯(lián)的研究成為空白。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的在于提供一種利用PCR-RFLP檢測(cè)綿羊PCNP基因單核苷酸多態(tài)性的方法及其應(yīng)用,利用PCR-RFLP方法針對(duì)其基因位點(diǎn)上的錯(cuò)義突變可能導(dǎo)致編碼蛋白構(gòu)象發(fā)生變化的單核苷酸多態(tài)性進(jìn)行檢測(cè),提前淘汰產(chǎn)生錯(cuò)義突變的個(gè)體,加快具有優(yōu)質(zhì)經(jīng)濟(jì)性狀綿羊種群的建立。

本發(fā)明通過(guò)以下技術(shù)方案來(lái)實(shí)現(xiàn):

綿羊PCNP基因第5019位為G或A的單核苷酸多態(tài)性的檢測(cè)方法為:以包含PCNP基因的待測(cè)綿羊(如湖羊、小尾寒羊等)全基因組DNA為模板,以引物對(duì)P為引物,PCR擴(kuò)增湖羊、小尾寒綿羊PCNP基因;用限制性內(nèi)切酶SPhI消化PCR擴(kuò)增產(chǎn)物之后,再對(duì)酶切后的擴(kuò)增片段進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳;根據(jù)電泳結(jié)果鑒定綿羊PCNP基因第5019位的單核苷酸多態(tài)性;

所述的引物對(duì)P為:

上游引物:5’-AGAATAGCATGGGCAGAA-3’ 18nt;

下游引物:5’-TCATTTCTGTGGGACACC-3’ 18nt。

所述的PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,55.3℃退火30s,72℃延伸50s,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10min。

所述的瓊脂糖凝膠電泳為質(zhì)量濃度為1%的瓊脂糖凝膠電泳。

根據(jù)瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果PCNP基因第5019位堿基多態(tài)性為:AA型表現(xiàn):377bp和309bp;GA型表現(xiàn):686bp、377bp和309bp;GG型表現(xiàn):686bp。

與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明具有以下有益的技術(shù)效果:

本發(fā)明利用RFLP-PCR方法對(duì)綿羊PCNP基因第5019位點(diǎn)上的突變可能產(chǎn)生編碼蛋白構(gòu)象發(fā)生變化的單核苷酸多態(tài)性進(jìn)行檢測(cè),當(dāng)位點(diǎn)由G突變?yōu)锳時(shí),為G→A的突變,該突變未引起氨基酸的改變,屬于同義突變,使具有重要生理功能的PCNP基因所編碼蛋白的空間二、三級(jí)構(gòu)型發(fā)生變化,以至影響蛋白的生物學(xué)功能。該核苷酸多態(tài)性能夠作為一個(gè)分子遺傳標(biāo)記,利用標(biāo)記位點(diǎn)信息和數(shù)量性狀的表型信息,更準(zhǔn)確估計(jì)動(dòng)物個(gè)體的育種值,提高選擇效率,加快育種進(jìn)展。

本發(fā)明通過(guò)設(shè)計(jì)特定的PCR引物擴(kuò)增片段,能夠用RFLP-PCR方法簡(jiǎn)單、快速、成本低、精確的檢測(cè)上述PCNP基因的單核苷酸的多態(tài)性。

本發(fā)明對(duì)PCNP基因的SNP進(jìn)行了基因分型和基因頻率分析,以及與湖羊、小尾寒羊生長(zhǎng)性狀之間進(jìn)行了關(guān)聯(lián)分析;結(jié)果顯示PCNP基因的核苷酸多態(tài)位點(diǎn)能夠成為分子遺傳輔助育種的標(biāo)記。

本發(fā)明提供的檢測(cè)方法為PCNP基因的SNP與生長(zhǎng)性狀關(guān)系的建立奠定了基礎(chǔ),以便用于中國(guó)湖羊、小尾寒羊等綿羊品種生長(zhǎng)性狀的標(biāo)記輔助選擇,快速建立遺傳資源優(yōu)良的綿羊種群。

附圖說(shuō)明

圖1為湖羊、小尾寒羊血樣基因組DNA電泳檢測(cè)圖;

圖2為湖羊、小尾寒羊PCNP基因PCR擴(kuò)增的686bp片段的電泳圖;

圖3為湖羊、小尾寒羊PCNP基因686bp PCR產(chǎn)物的SPhI酶切電泳檢測(cè)PCNP基因多態(tài)性的電泳結(jié)果圖;泳道1,2:GG基因型個(gè)體(686bp);泳道3,4:AA基因型個(gè)體(377bp,309bp);泳道5,6:GA基因型個(gè)體(686bp,377bp和309bp);M:Marker(2000bp,1000bp,750bp,250bp,100bp);

圖4為湖羊、小尾寒羊PCNP基因5019位SNP的不同基因型測(cè)序峰圖,其中,a對(duì)應(yīng)GG基因型,b對(duì)應(yīng)AA基因型,c對(duì)應(yīng)GA基因型。

具體實(shí)施方式

下面結(jié)合附圖和實(shí)施例對(duì)本發(fā)明作進(jìn)一步詳細(xì)說(shuō)明,所述實(shí)施例是對(duì)本發(fā)明的解釋,而不是限定。

本發(fā)明以PCNP基因保守序列設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增PCNP基因第2外顯子686bp片段,以湖羊、小尾寒羊基因組為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)測(cè)序后尋找該擴(kuò)增片段的單核苷酸多態(tài);針對(duì)發(fā)現(xiàn)的單核苷酸多態(tài)進(jìn)行性狀關(guān)聯(lián)性分析,并提供其檢測(cè)方法,使得PCNP基因的核苷酸多態(tài)性成為一種能夠快速、方便檢測(cè)的分子遺傳標(biāo)記,為加快建立具有優(yōu)質(zhì)經(jīng)濟(jì)性狀的湖羊、小尾寒羊等綿羊種群提供依據(jù)。

a、綿羊PCNP基因多態(tài)性的檢測(cè)

1、綿羊血樣的采集及處理

取湖羊、小尾寒羊血樣10mL,加入0.5mol/L的EDTA 500μL抗凝,緩慢顛倒3次后放入冰盒,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

本發(fā)明采用湖羊、小尾寒羊品種,具體如表1所示。

表1 綿羊樣品來(lái)源表

2、血樣基因組DNA的提取

(1)冰凍的血樣在室溫水浴中融化;

(2)將1mL全血轉(zhuǎn)入一個(gè)無(wú)菌的2mL離心管中;

(3)加入等體積(1mL)的PBS緩沖液,溫和搖動(dòng)15-20min;

(4)4℃12000*g離心10min;

(5)用移液槍棄上清,重復(fù)步驟3、4至上清液透明,沉淀白色;

(6)離心管中加DNA提取液650-750μL,溫和搖動(dòng)使細(xì)胞沉淀懸浮;

(7)37℃水浴1h;(可省略)

(8)加入蛋白酶K 3μL(終濃度為60μg/mL),混勻;

(9)在恒溫水浴箱中55℃溫育過(guò)夜(16h左右),至細(xì)胞沉淀物被完全消化,溶液澄清;

(10)反應(yīng)液冷卻至室溫,加入1倍體積(800μL-1mL)的Tris飽和酚,放置冰上溫和搖動(dòng)15min;

(11)4℃,12000g離心10min;

(12)將上層水相用移液槍移到另一滅菌離心管中;

(13)加入0.5倍體積(0.5mL)的酚和0.5倍(0.5mL)的氯仿,放置冰上溫和搖動(dòng)15min;

(14)4℃,12000g離心10min;

(15)將上層水相用移液槍移到另一滅菌離心管中;

(16)加入1倍體積(1mL)的氯仿,放置冰上溫和搖動(dòng)15min;

(17)4℃,12000g離心10min;

(18)將上層水相用移液槍移到另一滅菌離心管中;

(19)加入2倍體積的預(yù)冷無(wú)水乙醇(-20℃),輕輕口底搖晃多次至DNA析出,然后-20℃放置30min;

(20)4℃,12000g離心10min;棄上清液;

(21)加入70%乙醇1mL,溫和搖動(dòng)10min;

(22)4℃,12000g離心10min,棄乙醇,重復(fù)漂洗一次;

(23)真空干燥或室溫下使乙醇揮發(fā)干凈;

(24)根據(jù)DNA的量,加入超純水100-300μL,4℃保存至DNA完全溶解,分光光度計(jì)測(cè)定濃度后,-80℃保存。

3、DNA池的構(gòu)建

(1)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)

選部分DNA樣品進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),選擇DNA樣品條帶均一、無(wú)拖尾、無(wú)降解的樣品進(jìn)行DNA池的構(gòu)建。

(2)OD值測(cè)定

用紫外光光度計(jì)測(cè)定DNA樣品在260nm、280nm處的OD值。計(jì)算DNA含量和OD260/OD280的比值。如OD260/OD280比值小于1.6,說(shuō)明樣品中含有較多的蛋白質(zhì)或酚,則應(yīng)進(jìn)行純化;若比值大于1.8,則應(yīng)該考慮去除RNA純化。

DNA濃度(ng/μL)=50×OD260值×稀釋倍數(shù)

(3)品種DNA池的構(gòu)建

DNA檢測(cè)完畢后,取出一定的量稀釋至50ng/μL,然后從湖羊、小尾寒羊50個(gè)濃度為50ng/μL DNA樣品中取10μL混合構(gòu)建成品種DNA池;

湖羊、小尾寒羊血樣基因組DNA的檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖1,從圖中可以看出湖羊、小尾寒羊基因組DNA的質(zhì)量非常高。

4、PCR擴(kuò)增

以綿羊DNA池為模版,用設(shè)計(jì)的引物對(duì)P進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR總反應(yīng)體系為25.3μL,見(jiàn)表2;PCR總反應(yīng)程序,見(jiàn)表3。

表2 PCR反應(yīng)體系

引物對(duì)P:

上游引物:5’-AGAATAGCATGGGCAGAA-3’ 18nt;

下游引物:5’-TCATTTCTGTGGGACACC-3’ 18nt

表3 引物最佳PCR反應(yīng)程序

5、PCR產(chǎn)物純化和測(cè)序

PCR擴(kuò)增完成之后進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,電泳結(jié)果如圖2所示,可以清楚看到686bp的條帶;然后進(jìn)行PCR產(chǎn)物的切膠回收及純化:在紫外燈下從瓊脂糖凝膠上切下含目的片段的凝膠,放入1.5mL離心管中,然后用PCR產(chǎn)物回收純化試劑盒(北京天根生物公司)純化PCR產(chǎn)物,按照試劑盒說(shuō)明書操作,具體步驟如下:

(1)首先向吸附柱中加入500μL平衡液BL,12000r/min離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。

(2)將單一的目的DNA條帶從瓊脂糖凝膠中切下放入干凈的離心管中,稱取重量。

(3)向膠塊中加入等體積溶液PC,60℃水浴放置10min左右,其間不斷溫和地上下翻轉(zhuǎn)離心管,以確保膠塊充分溶解。

(4)將上一步所得溶液加入一個(gè)吸附柱中,12000r/min離心1min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放入收集管中。

(5)向吸附柱中加入700μL漂洗液,12000r/min離心1min,倒掉廢液,將吸附柱重新放入收集管中。

(6)向吸附柱中加入500μL漂洗液,12000r/min離心1min,倒掉廢液,將離心吸附柱放入收集管中,12000r/min離心2min,盡量除去漂洗液。將吸附柱置于室溫或50℃溫箱數(shù)分鐘,徹底晾干。

(7)將吸附柱放到一個(gè)干凈的離心管中,向吸附膜中間位置懸空滴加適量的洗脫緩沖液,室溫放置2分鐘。12000r/min離心1min收集DNA溶液。

(8)為了提高DNA的回收量,可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中,重復(fù)步驟7。

把以湖羊、小尾寒羊DNA池為模板的PCR純化產(chǎn)物送上海生物工程有限公司進(jìn)行雙向測(cè)序。湖羊、小尾寒羊PCNP基因目的片段686bp的測(cè)序結(jié)果如圖4所示。

對(duì)測(cè)序峰圖進(jìn)行分析,其中在同一位點(diǎn)有兩個(gè)不同峰的是發(fā)生了單核苷酸突變;位于湖羊、小尾寒羊PCNP基因的第5019位出現(xiàn)了G、A兩種檢測(cè)結(jié)果,即為篩查到的湖羊、小尾寒羊PCNP基因的SNP多態(tài)性,該位點(diǎn)是為G或A的堿基多態(tài)性。

b、綿羊PCNP基因G>A突變多態(tài)性的RFLP-PCR檢測(cè)

由于篩查到的堿基多態(tài)性為自然酶切位點(diǎn),能被常用的內(nèi)切酶進(jìn)行PCR-RFLP來(lái)鑒定。當(dāng)湖羊、小尾寒羊的PCNP基因第5019位未發(fā)生G>A突變時(shí),即為突變前G,利用引物對(duì)P擴(kuò)增的PCNP基因序列GCATGC,為SPhI的限制性內(nèi)切酶識(shí)別位點(diǎn);可直接通過(guò)SPhI對(duì)目的片段的酶切進(jìn)行基因分型。

1、RFLP-PCR引物設(shè)計(jì)

參照引物對(duì)P。

上述引物能夠擴(kuò)增湖羊、小尾寒羊PCNP基因2第外顯子686bp片段。

2、RFLP-PCR反應(yīng)條件

PCR產(chǎn)物擴(kuò)增體系和反應(yīng)條件分別如表2和表3所述,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的1%瓊脂糖凝膠電泳圖譜如圖2所示,可以看到設(shè)計(jì)的引物對(duì)P能夠擴(kuò)增686bp的片段。

3、PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的SPhI酶切

(1)酶切體系為:為sphI內(nèi)切酶0.5μL,Buffer B 2μL,ddH2O 13μL,4μL PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,總計(jì)20μL。

(2)酶切消化條件:37℃恒溫培養(yǎng)箱中消化12~16h。

(3)SPhI消化PCR產(chǎn)物后瓊脂糖凝膠電泳分析

用1.0%的瓊脂糖凝膠,200V電壓電泳18min,核酸染料染色檢測(cè)酶切結(jié)果,用UVP凝膠成像系統(tǒng)(GelDoc-It TS Imaging System)照相分析,并判型、記錄其基因型;

由于PCR-RFLP擴(kuò)增的686bp片段中不包含其它的SPhI酶切識(shí)別位點(diǎn),當(dāng)PCNP基因第5019位未發(fā)生G>A突變時(shí),PCR擴(kuò)增的PCNP基因產(chǎn)物被限制性內(nèi)切酶SPhI識(shí)別后,在GCATGC/CGTACG對(duì)擴(kuò)增片段酶切,將擴(kuò)增片段切為2段;而當(dāng)PCNP基因第5019位發(fā)生突變,不能形成新的限制性內(nèi)切酶SPhI酶切識(shí)別位點(diǎn),擴(kuò)增片段不能被酶切;

由于綿羊?yàn)?倍體動(dòng)物,所以當(dāng)發(fā)生G>A的突變時(shí),可形成3種不同的基因型,分別為GG、GA、AA,其PCR-RFLP檢測(cè)的凝膠結(jié)果如圖3所示:

其中,GG基因型為野生型,它的兩條DNA鏈的SNP位點(diǎn)均不能被酶切,表現(xiàn)為686bp條帶;發(fā)生突變后的AA基因型的兩條鏈的SNP位點(diǎn)均能被SPhI酶切,表現(xiàn)為377bp和309bp條帶;雜合子GA的兩條鏈中的一條的SNP位點(diǎn)能夠被識(shí)別而另一條不能被識(shí)別,表現(xiàn)為686bp,377bp和309bp條帶,根據(jù)條帶的個(gè)數(shù)和條帶的大小,能夠很清楚的判定是否發(fā)生了點(diǎn)突變,將三種基因型區(qū)分開(kāi),從而檢測(cè)其SNP多態(tài)性。

(4)不同基因型個(gè)體PCR產(chǎn)物的測(cè)序驗(yàn)證

利用ABI 5019和ABI 3730測(cè)序儀對(duì)不同基因型個(gè)體PCR產(chǎn)物分別進(jìn)行正反雙向測(cè)序;同時(shí),進(jìn)行SNP位置分析,結(jié)果表明包含686bp、377bp和309bp條帶的雜合子GA基因型個(gè)體其第5019位的測(cè)序圖的確表示為G或A,如圖4c所示,自左向右第5019位為兩個(gè)峰;而GG基因型、AA基因型分別為G、A,分別如圖4a、圖4b所示。

c、不同綿羊群體中PCNP基因第5019位的SNP作為分子標(biāo)記的應(yīng)用

1、群體單核苷酸多態(tài)性的檢測(cè)

利用上述的SNP多態(tài)性檢測(cè)方法對(duì)湖羊、小尾寒羊共計(jì)604份DNA樣品,進(jìn)行SNP多態(tài)性的鑒定;統(tǒng)計(jì)其SNP位點(diǎn)的頻率分布情況。

2、SNP位點(diǎn)的頻率統(tǒng)計(jì)分析

基因型頻率是指一個(gè)群體中某一性狀的某種基因型個(gè)體數(shù)占總個(gè)體數(shù)的比率。PAA=NAA/N,其中PAA代表某一位點(diǎn)的AA基因型頻率;NAA表示群體中具有AA基因型的個(gè)體數(shù);N為檢測(cè)群體的總數(shù)量。

基因頻率是指一個(gè)群體中某一基因數(shù)對(duì)其等位基因總數(shù)的相對(duì)比率。計(jì)算的公式可以寫成:PA=(2NAA+NAa1+NAa2+……+NAan)/2N。式中,PA表示等位基因A頻率,NAA表示群體中具有AA基因型的個(gè)體數(shù)量,NAai表示群體中具有Aai基因型個(gè)體數(shù)量,a1-an為等位基因A的n個(gè)不同的復(fù)等位基因;統(tǒng)計(jì)結(jié)果見(jiàn)表4。

表4 湖羊、小尾寒羊PCNP基因第5019位SNP基因頻率分布表

3、基因效應(yīng)的關(guān)聯(lián)分析

基因型數(shù)據(jù):SPhI識(shí)別的基因型(GG、GA、GA)

繁殖性狀數(shù)據(jù):第一胎產(chǎn)羔數(shù)

關(guān)聯(lián)分析模型:

利用SAS(9.2)軟件分析基因位點(diǎn)與繁殖性狀(產(chǎn)羔數(shù))的相關(guān)性。先對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行描述性統(tǒng)計(jì)分析,確定是否存在離群值,根據(jù)數(shù)據(jù)特征,利用t分析、方差分析或是多元線性模型分析基因型效應(yīng)。在數(shù)據(jù)處理中,根據(jù)影響產(chǎn)羔數(shù)因素不同,考慮到環(huán)境效應(yīng)、年齡、基因型效應(yīng)及相關(guān)的互作效應(yīng),采用固定模型進(jìn)行分析,同時(shí),根據(jù)實(shí)際情況進(jìn)行取舍。完整的模型如下:

Yijk=μ+Gj+Eijk

其中:Yijk為個(gè)體表型記錄;μ為群體均值;Gj為各位點(diǎn)的基因型效應(yīng);Eijk為隨機(jī)誤差。

表5 PCNP基因單核苷酸多態(tài)性與綿羊繁殖性狀之間的方差分析

注:具有相同字母肩標(biāo)的平均值間差異不顯著(P>0.05),具有不同字母肩標(biāo)的平均值間差異顯著(P<0.05)

結(jié)果表明,在綿羊PCNP基因組序列的第5019位單核苷酸多態(tài)位點(diǎn)上的不同基因型與綿羊產(chǎn)羔數(shù)關(guān)聯(lián)分析表明,AA基因的個(gè)體的產(chǎn)羔數(shù)顯著高于GG基因型個(gè)體,見(jiàn)表5。根據(jù)這個(gè)研究結(jié)果,可以通過(guò)選擇,建立基因型為AA純合型綿羊群體,提高其產(chǎn)羔率。

核苷酸序列表

<110> 蘭州大學(xué)

<120> 利用PCR-RFLP檢測(cè)綿羊PCNP基因單核苷酸多態(tài)性的方法及其應(yīng)用

<160> 2

<210> 1

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 1

agaatagcat gggcagaa 18

<210> 2

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 2

tcatttctgt gggacacc 18

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