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一種適合于大豆蛋白磷含量的測(cè)定方法與流程

文檔序號(hào):12712715閱讀:673來(lái)源:國(guó)知局
本發(fā)明涉及食品
技術(shù)領(lǐng)域
,尤其涉及一種適合于大豆蛋白磷含量的測(cè)定方法。
背景技術(shù)
:按照國(guó)標(biāo)GB/T5009.87-2003食品中磷的測(cè)定用亞硫酸鈉、對(duì)苯二酚檢測(cè)磷,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,有異味,檢測(cè)人員頭痛、難受,必須戴上防毒面罩。為了保護(hù)檢驗(yàn)人員的身體健康,保護(hù)環(huán)境,不再使用亞硫酸鈉、對(duì)苯二酚有毒試劑,而使用抗壞血酸(維生素C)做還原劑,代替上述兩種試劑。技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:為了解決現(xiàn)有技術(shù)中的不足,本發(fā)明的目的在于提供一種適合于大豆蛋白磷含量的測(cè)定方法,測(cè)定過(guò)程不需要使用有毒試劑,保障了檢驗(yàn)人員的身體健康和工作環(huán)境。本發(fā)明解決其技術(shù)問(wèn)題所采用的技術(shù)方案是:一種適合于大豆蛋白磷含量的測(cè)定方法,其特征在于,包括了以下步驟:試樣消解:稱(chēng)取均勻大豆蛋白干樣0.1~0.5g或大豆蛋白濕樣2~5g并置于25ml消化管內(nèi),向消化管內(nèi)加10ml硝酸-高氯酸混合酸并加蓋小漏斗,放置30min;將消化管置于電熱板上低溫緩緩加熱,待樣品溶解后,再升溫繼續(xù)消化,如樣品未消化完全而硝酸-高氯酸混合酸過(guò)少,取下消化管,冷卻至室溫,再補(bǔ)加幾毫升硝酸-高氯酸混合酸消化液,繼續(xù)置于電熱板上加熱消化,直至無(wú)色透明為止方可取下消化管冷卻,冷卻至室溫后再向消化管內(nèi)加6ml水并通過(guò)電熱板進(jìn)行加熱趕酸;然后取下消化管冷卻至室溫,將消化管內(nèi)部溶液轉(zhuǎn)移至50ml容量瓶,用水多次洗滌消化管,洗液倒入容量瓶,加水至50ml刻度,混勻,獲得試樣消化液;同時(shí),取10ml硝酸-高氯酸混合酸,進(jìn)行消化,獲得空白溶液;試樣的測(cè)定:準(zhǔn)確吸取試樣消化液1~5ml及同量的空白溶液分別置于50ml容量瓶中,加入2ml鉬酸銨溶液,搖勻,加入1ml抗壞血酸溶液,搖勻,稀釋至50ml刻度,放置30min后,用1cm比色皿,以空白溶液調(diào)節(jié)零點(diǎn),于分光光度計(jì)660nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度;將測(cè)定獲得的樣品吸光度導(dǎo)入至磷含量與吸光度的直線回歸方程中獲得磷的含量。所述的硝酸-高氯酸混合酸按照硝酸與高氯酸的體積比為4:1的比例混合獲得。該方法的測(cè)定原理:大豆蛋白樣品經(jīng)酸消解,在酸性條件下,磷與鉬酸銨結(jié)合生成磷鉬酸銨,此化合物被抗壞血酸還原成藍(lán)色化合物—鉬藍(lán),用分光光度計(jì)在波長(zhǎng)660nm處測(cè)定鉬藍(lán)的吸光度,其吸光度與磷的含量成正比,與標(biāo)準(zhǔn)系列比較定量。本發(fā)明的有益效果是:通過(guò)該方法的測(cè)定過(guò)程不需要使用有毒試劑,保障了檢驗(yàn)人員的身體健康和工作環(huán)境。具體實(shí)施方式以下由特定的具體實(shí)施例說(shuō)明本發(fā)明的實(shí)施方式,熟悉此技術(shù)的人士可由本說(shuō)明書(shū)所揭露的內(nèi)容輕易地了解本發(fā)明的其他優(yōu)點(diǎn)及功效。一種適合于大豆蛋白磷含量的測(cè)定方法,包括了以下步驟:首先對(duì)該測(cè)定方法中所使用的試劑進(jìn)行如下準(zhǔn)備:硝酸-高氯酸混合酸:硝酸-高氯酸混合酸按照硝酸與高氯酸的體積比為4:1的比例混合獲得;15%硫酸溶液:吸取15ml硫酸緩緩加入到80ml水中混勻,冷卻后用水稀釋至100ml;鉬酸銨溶液:稱(chēng)取5g鉬酸銨,用15%硫酸溶液稀釋至100ml;抗壞血酸溶液:稱(chēng)取5g抗壞血酸,加水溶解,稀釋至100ml,此溶液棕色瓶盛裝,4℃保存,如果變色則不得使用;磷標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液100ug/ml:準(zhǔn)確稱(chēng)取105℃下干燥至恒重的磷酸二氫鉀(基準(zhǔn))0.4394g,置于1000ml容量瓶中,加水溶解,稀釋至1000ml刻度,混勻;磷標(biāo)準(zhǔn)使用液10ug/ml:準(zhǔn)確吸取10ml磷標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液100ug/ml,置于100ml容量瓶中,加水,稀釋至100ml刻度,混勻;試樣消解:稱(chēng)取均勻大豆蛋白干樣0.1~0.5g或大豆蛋白濕樣2~5g并置于25ml消化管內(nèi),向消化管內(nèi)加10ml硝酸-高氯酸混合酸并加蓋小漏斗,放置30min;將消化管置于電熱板上低溫緩緩加熱,待樣品溶解后,再升溫繼續(xù)消化,如樣品未消化完全而硝酸-高氯酸混合酸過(guò)少,取下消化管,冷卻至室溫,再補(bǔ)加幾毫升硝酸-高氯酸混合酸消化液,繼續(xù)置于電熱板上加熱消化,直至無(wú)色透明為止方可取下消化管冷卻,冷卻至室溫后再向消化管內(nèi)加6ml水并通過(guò)電熱板進(jìn)行加熱趕酸;然后取下消化管冷卻至室溫,將消化管內(nèi)部溶液轉(zhuǎn)移至50ml容量瓶,用水多次洗滌消化管,洗液倒入容量瓶,加水至50ml刻度,混勻,獲得試樣消化液;同時(shí),取10ml硝酸-高氯酸混合酸,進(jìn)行消化,獲得空白溶液;試樣的測(cè)定:準(zhǔn)確吸取試樣消化液1~5ml及同量的空白溶液分別置于50ml容量瓶中,加入2ml鉬酸銨溶液,搖勻,加入1ml抗壞血酸溶液,搖勻,稀釋至50ml刻度,放置30min后,用1cm比色皿,以空白溶液調(diào)節(jié)零點(diǎn),于分光光度計(jì)660nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度;將測(cè)定獲得的試樣吸光度導(dǎo)入至磷含量與吸光度的直線回歸方程中獲得磷的含量。其中磷含量與吸光度的直線回歸方程通過(guò)以下方法獲?。簻?zhǔn)確吸取磷標(biāo)準(zhǔn)使用液0ml、1.0ml、2.0ml、5.0ml、8.0ml、10.0ml、15.0ml、20.0ml(相當(dāng)于含磷量0、10ug、20ug、50ug、80ug、100ug、150ug、200ug),置于50ml容量瓶中,加入2ml鉬酸銨溶液,搖勻,加入1ml抗壞血酸溶液,搖勻,用水稀釋至50ml刻度,搖勻。放置30min后,用1cm比色皿,以零管溶液調(diào)節(jié)零點(diǎn),于分光光度計(jì)660nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。以磷含量為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),計(jì)算直線回歸方程。含磷量與吸光度的測(cè)試結(jié)果:含磷量ug010205080100150200吸光度00.0340.0650.1790.2550.3340.4990.661結(jié)果計(jì)算:將測(cè)定方法中獲得的試樣磷含量導(dǎo)入以下公式獲得試樣中磷的百分比含量:式中:X——試樣中磷的含量,%;m1——根據(jù)直線回歸方程計(jì)算的試樣待測(cè)液中磷的含量,ug;V1——試樣消化液定容總體積,ml;V2——測(cè)定用試樣消化液的體積,ml;m——試樣的質(zhì)量,g。該測(cè)定方法和國(guó)標(biāo)方法的結(jié)果比較:分別取不同含磷量的兩種產(chǎn)品,通過(guò)以上測(cè)定方法進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如下:由此可以看出,本方法和國(guó)標(biāo)方法檢測(cè)結(jié)果基本一致。以上所述僅為本發(fā)明的優(yōu)先實(shí)施方式,只要以基本相同手段實(shí)現(xiàn)本發(fā)明的目的技術(shù)方案,都屬于本發(fā)明的保護(hù)范圍之內(nèi)。當(dāng)前第1頁(yè)1 2 3 
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